About 40 temperature-sensitive mutants have been isolated as a preliminary step to study the spore germination, the cell cycle, and the control of macromolecular synthesis in Aspergillus nidulans. To obtain temperature-sensitive mutants rapidly and effectively, the selective enrichment method using antifungal antibiotic nystatin was developed. Based on the data which had applied to the concentration of auxotrophic mutants by the earlier investigators, the optimal concentration and the time of treatment at the nonpermissive temeprature were determined as 50 to 100 units per ml and 4.5 hr., respectively. Out of 41 ts mutants assigned to the strain symbol PK, thirteen that seemed to be arrested at the earlystage of spore germination were subjected to the further cytological and genetic analysis. Elght of these mutants are able to form germ tube and five not. Staining with acid fuchsin for the 5PK strains shows that one irreversible mutant, PK6 strain able to form germ tube, accumulate mitotic spindle, being arrested in mitosis. Another PK15 and PK23 strain have more than one intact nucleolus without germ tube formation at the restrictive temperature. the temperature-senstive mutation in PK12 strain, the onlystrain which is able occurred in certain gene specific for the germination of spore. All of the ts markers are recessive and complement each other in heterokaryon between two different ts markers at the restrictive temperature.
A collection of 132 temperature sensitive (ts) mutants was generated by the chemical mutagenesis of Schizosaccharomyces pombe wild type strain and screened for tRNA splicing defects on Northern blots by hybridization with an oligonucleotide that recognizes the exon of the S. pombe tRNA^Val as a probe. We identidied 6 mutants which accumulate precursor $tRNA^{Val}$. Among them, 2 mutants exhibited remarkable morphological differences compared to wild type cells. One tRNA splicing mutant showed elongated cell shape in permissive as well as non-permissive cultures. The other mutant exhibited shortened cell morphology only in nonpermissive culture. The total RNA pattern in the splicing mutants appeared to be normal. Genetic analysis of four $tRNA^{Val}$ splicing mutants demonstrated that the mutation reside in different genes.
From FGSC 159 strain of Aspergillus nidulans, temperature sensitive mutants that are defective in growth and differentiation have been isolated by N-methyl-N'-nitroN-nitrosoguanidine (NTG) treatment. The optimum concentration of NTG and incubation time to get the highest mutation frequency was $100{\mu}g$ per ml and 1 hour, respectively. The survival frequency was 1%. Among the isolated mutants, five strains that were affected in early steps of differentiation were selected for further studies and named smK, smY, smB, smF, and smZ. The execution point of each mutant was determined and the growing pattern of each mutant at the restrictive temperature was observed under the microscope. Growth of mutant was arrested near at the execution point. From genetic analysis, each temperature-sensitive mutants was thought to have a single recessive gene. The genes of smK, smY, smB, smF, and smZ are linked to the chromosome VII, IV, VIII, I, and VI, respectively. It can be concluded that the genes controlling the differentiation are widely dispersed in the genome. From the results of mutant, smK, it is considered that a single gene can affect a function (functions) which act(s) at two different steps during differentiation.
Bacillus thuringiensis was mutagenized with UV light irradiation and nitrosoguanidine. Twenty-four tem perature-sensitive ts mutants were isolated at 42$^{\circ}C$ and classified into two groups by growth on nutrient agar at 42$^{\circ}C$. First is the lethal group, which did not grow at the nonpermissive temperature, the second is the reduced group whose growth was restricted from one-half to one-fourth, Thirteen ts mutants belong to the lethal group and eleven ts mutants belong to the reduced group. Auxotrophic mutant, A-N28 required five amino acids as growth factors, A-N65 also five amino acids, A-N92 seven, A-N115 four and A-N156 three. Bacillus thuringiensis wild type is resistant to penicillin, ampicillin, and cephalothin. The ts-Ul7l, A-N92 and A-Nl15 are sensitive to the three antibiotics. The ts -U601, -U603, -U604 and -Ul71 did not grow at the permissive temperature after temperature-shifting from 42$^{\circ}C$. Four auxotrophic mutants (A-N38, A-N65, A-N92 and A-Nl15) did not form spores in their cells.
The flagella antigenic variation of nine Bacillus thuringiensis serovar kurstaki temperature-sensitive mutants grown at the permissive temperature (3$0^{\circ}C$) was detected by a serological agglutination between H-antigen and antiserum. The flagella antigens were injected to rabbits to prepared their antisera, and then their homologous and heterologous titers of the antisera were measured. The homologous titers were ranged from 1:6,400 to 1:12,800, but the heterologous titers were very low. The H-antigen of the wild type strain was not agglutinated to 4 heterologous antisera, ts-U23 not to 7, ts-U3l not 5, ts-U32 not to 4, ts-U33 not to 7, ts-U7l not to 4, ts-U73 not to 6, ts-U74 not to 6, ts-U91 not to 4 and ts-U603 not to 4 antisera.
Partial characterization of B. thuringiensis var. kurstaki 3ab temperature-sensitive mutants was carried out through biochemical analyses, utilization tests of carbohydrate sources, antobiotic resistant test, hemolytic reaction test, growth measurement of Fructus gardenia sxtrant medium and toxicity test against mice. Six ts mutants, ts-U154, ts-U601, ts-U602, ts-U603, tsU-604, and ts-U788 could not produce urease, ts-U603 lost its motility, ts-U154 could not use salicin and cellobiose and ts-U603 not ribose. All ts mutants except ts-U154 and wild type strain were resistant to cephalothin, ampicillin, and penicillin. but ts-U154 was sensitive to the three. Four mutants, ts-U21, ts-U74, ts0U131 and ts-U154 did not form pigment colonies on the F. gardenia medium. All the mutants and wild type strain showed hemolysis reaction on the blood agar. The B. thuringiensis and mutants were not toxic to mice.
Stresses and nutritional starvation are two main external signals for the induction of sex pheromones in the fission yeast Schizosaccharomyces pombe. In an attempt to identify the components involved in transduction of starvation signals, we screened 135 temperature-sensitive (ts) mutants and isolated 6 mutants that induced the pheromone even in the presence of a nitrogen source. These mutants exhibited two distict induction phenotypes: pheromone induction at restrictive but not at permissive temperatures; and pheromone induction at both permissive and restrictive temperatures. The times required for the maximum pheromone induction at the restrictive temperature differed slightly in each mutant. In addition to the pheromone induction phenotype, the ts243 and ts304 mutants exhibited cell-division-cycle defects. The ts304 mutant cells showed an abnormal cytoplasmic DAPI staining pattern. The nucleolus of this mutant seemed to be fragmented, a phenomenon which is typically observed in aged yeast cells. The result of our genetic analysis indicated that the pheromone induction mutants belonged to 6 separate complementation groups. We designated these mutants pws1 to pws6.
Bacillus sphaericus was mutagenized with UV light irradiation and dimethyl sulfate. Thirty-five conditional lethal temperature-sensitive(ts) mutants were isolated at the nonpermissive temperature of $42^{\circ}C$ and classified into three groups by their growth characteristics on the nutrient broth, peptone glucose yeast extract agar and mineral salts agar. First was the lethal ts group, 24 mutants, which did not grow at the nonpermissive temperature, the second, 9 mutants, was the less growth is group whose growth was restricted to one-half, and the third, 2 mutants, was the cold lethal ts group whose growth was restricted at the permissive temperature($25^{\circ}C$and $30^{\circ}C$)
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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1979.10a
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pp.248.1-248
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1979
Sixteen temperature-sensitive mutants of Autographa californica nuclear polyhedrosis virus were isolated. Several interesting phenotypes were observed. A large proportion of the mutants were un-able to form polyhedral occlusion bodies at the nonpermissive temperature (32.5C). At 32.5C, one mutant formed plaques in which the cells lacked polyhedra. Another mutant type was defective in the production of progeny extracellular nonoccluded virus and produced a plaque consisting of only a single cell containing polyhedra at 32.5C. One mutant was defective in plaque formation, progeny nonocluded virus formation, and polyhedra formation at 32.5C. Several mutants produced nonocluded virus but failed to produce plaques or polyhedra at 32.5C. Other phenotypes were also distinguished. Complementation analyses, performed by either measuring the increase in extracellular non-ocludedvirus formation or by oberving polyhedra formation in mixed infections at 32.5C, indicated the presence of 15 complementation groups. A high frequency of recombination was observed. Four of the mutants were found to be host dependent in their temperature sensitivity for polyhedra formation.
In order to study the mechanism for the adaptation to salt stress, we mutagenized budding yeast Saccharomyces cerevisiae with Ethylmethane sulfonate, and isolated salt-tolerant mutants. Among the salt-tolerant mutants, two strains exhibit additional temperature sensitive phenotype. Here, we report that these two salt-tolerant mutants are specific to {TEX}$Na^{+}${/TEX} rather than general osmotic stress. These mutant strains may contain mutations in the genes involved in {TEX}$Na^{+}${/TEX} home-ostasis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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