To clarify the role of surface protective antigen A (SpaA) in the pathogenesis of Erysipelothrix rhusiopathiae C43065 (serotype 2), the spaA deletion mutant of E. rhusiopathiae ${\Delta}spaA$ was constructed by homologous recombination. The virulence of the ${\Delta}spaA$ mutant decreased more than 76-fold compared with that of the wild-type strain C43065 in mice. The mutant strain was sensitive to the bactericidal action of swine serum, whereas the wild-type strain was resistant. The adhesion of wild-type strain to MEF cells was inhibited significantly by treatment with rabbit antiserum against recombinant SpaA (rSpaA) as compared with the treatment with normal rabbit serum, but the mutant strain was not affected. The mutant strain was readily taken up by mouse peritoneal macrophages in the normal rabbit serum, whereas the wild-type strain was resistant. Whereas the rabbit antiserum against rSpaA promoted the phagocytosis of wild-type strain by macrophages, the mutant strain was not affected. In addition, mice vaccinated with the formalin-killed mutant strain were provided 40% protection against challenge by the homologous virulent strain as compared with those with wild-type strain, NaOH-extracted antigen, or rSpaA, which provided more than 80% protection against the same infection. These suggested that SpaA has an important role in the pathogenesis of E. rhusiopathiae infection and could be a target for vaccination against swine erysipelas.
Bacillus anthracis is a gram-positive spore-forming bacterium that causes the disease anthrax. The anthrax toxin contains three components, including the protective antigen (PA), which binds to eucaryotic cell surface receptors and mediates the transport of toxins into the cell. In this study, the entire 2,294-nucleotide protective antigen gene (pag) was sequenced from 4 of B. anthracis strains to identify potential variation in the toxin and to further our understanding of B. anthracis evolution in Korea. Sequence alignment of the entire PA gene from 30 strains representative of the four B. anthracis diversity groups revealed mutations. The mutation of B. anthracis BAK are located adjacent to a highly antigenic region crossing the junction between PA domains 3 and 4 shown to be critical to LF binding. The different mutational combinations observed in this study give rise to 11 PA genotypes and 4PA phenotypes. Three-dimensional analysis of all the amino acid changes (Ala to Val) observed in BAK indicated that these changes are not only close sequentially but also very close in three-dimensional space to the antigenic region importan tfor LF binding. Phylogenetic (cladistic) analysis of the pag corresponded with previous strain grouping based on chromosomal variation, suggesting that plasmid evolution in B. anthracis has occurred with little or no horizontal transfer between the different strains.
We previously reported that Streptococcus pneumoniae capsule attached to the surface protein (JY-Pol) was protective to systemic pneumococcal infection. The JY -Pol antigen induced IgM, IgG, and IgA in mice and provoked cell-mediated immunity. In this current study, we investigated the effect of anti JY-Pol antiserun and monoclonal antibody C2 (Mab C2) specific for the JY-Pol antigen against the pneumococcal disease. Mice that were given the antiserum survived longer than mice that received antiserum pre-absorbed with S.pneumoniae cells or DPBS as a negative control. Heat-treated anti JY-Pol antiserum resulted in survival rates similar to intact fresh JY-Pol antiserum. Mab C2 isolated from JY-Pol-immunized mice also enhanced resistance of naive mice against the pneumococcal diseaser. This protection by Mab C2 appeared to be mediated by opsonization as determined in a RAW 264.7 monocyte/macrophage cell line. Epitope analysis showed that Mab C2 epitope consisted of glucuronic acid and glucose that blocked the interaction of JY-Pol to the C2. Taken together, these data indicate that the antiserum induced by the JY-Pol, a naturally pneumococcal conjugate formula, mediated the protection by passive transfer, which was confirmed by protective effect of Mab C2.
The molecular weight 30 kDa membrane protein of Toxoplusma Sondii (Toxoplasma 30 kDa) apparently conserved in most strains of T. gondii and sera of infected hosts. The present study aimed to elucidate Toxoplasmc 30 kDa as a useful diagnotic antigen for serodiagnisis of toxoplasmosis by ELISA and for induction of protective immunity. Murine spleen cells immunized with the membrane antigen of T. gondii were fused with mouse Sp2/0-Ag 14 myeloma cells. Out of 8 clones selected, five were IgG2b, the others belonged to IgG 1 and IgG2a. The 30 kDa antigen was distributed mainly on the surface membrane of tachyzoites by indirect fluorescence method. Murine peritoneal macrophages which were activated by 30 kDa antigen produced more amounts of NO2 compared with crude antigen-treated group, however there were no significant differences in toxoplamacidal activity between the two groups. Higher specificity of Toxoplosma 30 kDa antigen was recognized for serodiagnosis of toxoplasmosis than the crude antigen. From these results, ToxopLasmo 30 kDa antigen enhances the cytotoxic effect of macrophages as well as a more reliable means for the serodiagnosis of toxoplasmosis by ELISA. Key words: Toxoplosma gondii, 30 kDa antigen (p30), mouse, serodiagnosis, macrophage, cytotoxicity.
Hwang, Yu Kyeong;Kim, Hyung-Il;Kim, Nam Kyung;Park, Jung Min;Cheong, Hong Seok
IMMUNE NETWORK
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v.2
no.1
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pp.41-48
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2002
Background: Viral antigens presented on the cell surface in association with MHC class I molecules are recognized by CD8+ T cells. MHC restricted peptides are important in eliciting cellular immune responses. As peptide antigens have a weak immunigenicity, pH-sensitive liposomes were used for peptide delivery to induce effective cytotoxic T lymphocyte (CTL) responses. In the previous study, as the HBx peptides could induce specific CTLs in vitro, we tested whether the HLA-A2/$K^b$ transgenic mice that were immunized by HBx-derived peptides could be protected from a viral challenge. Methods: HBx-peptides encapsulated by pH-sensitive liposomes were prepared. $A2K^b$ transgenic mice were immunized i.m. on days one and seven with the indicated concentrations of liposome-encapsulated peptides. Three weeks later, mice were infected with $1{\times}10^7pfu$/head of recombinant vaccinia virus (rVV)-HBx via i.p. administration. The ovaries were extracted from the mice, and the presence of rVV-HBx in the ovaries was analyzed using human TK-143B cells. IFN-${\gamma}$ secretion by these cells was directly assessed using a peptide-pulsed target cell stimulation assay with either peptide-pulsed antigen presenting cells (APCs), concanavalin A ($2{\mu}g/ml$), or a vehicle. To generate peptide-specific CTLs, splenocytes obtained from the immunized mice were stimulated with $20{\mu}g/ml$ of each peptide and restimulated with peptide-pulsed APC four times. The cytotoxic activity of the CTLs was assessed by standard $^{51}Cr$-release assay and intracellular IFN-${\gamma}$ assay. Results: Immunization of these peptides as a mixture in pH-sensitive liposomes to transgenic mice induced a good protective effect from a viral challenge by inducing the peptide-specific CD8+ T cells. Mice immunized with $50{\mu}g/head$ were much better protected against viral challenge compared to those immunized with $5{\mu}g$/head, whereas the mice immunized with empty liposomes were not protected at all. After in vitro CTL culture by peptide stimulation, however, specific cytotoxicity was much higher in the CTLs from mice immunized with $5{\mu}g/head$ than $50{\mu}g/head$ group. Increase of the number of cells that intracellular IFN-${\gamma}$ secreting cell among CD8+ T cells showed similar result. Conclusion: Mice immunized with XEPs within pH-sensitive liposome were protected against viral challenge. The protective effect depended on the amount of antigen used during immunization. XEP-3-specific CTLs could be induced by peptide stimulation in vitro from splenocytes obtained from immunized mice. The cytotoxic effect of CTLs was measured by $^{51}Cr$-release assay and the percentage of accumulated intracellular IFN-${\gamma}$ secreting cells after in vitro restimulation was measured by flow cytometric analysis. The result of $^{51}Cr$-release cytotoxicity test was well correlated with that of the flow cytometric analysis. Viral protection was effective in immunized group of $50{\mu}g/head$, while in the in vitro restimulation, it showed more spectific response in $5{\mu}g$/head group.
Pneumococcal surfacce protein A (PspA) is an important virulence factor and an antigenically variable surface protein of the pneumococci. To purify the PspA from S. pneumoniae KNIH1156 , a clinical isolate (type 19F), we have taken advantage of the fact that PspA is released from the surface of pneumococci into the medium by growing in a CDM-ET medium and PspA is capable of binding human lactoferrin, the iron carrier protein. PspA of S. pneumoniae KNIH1156 was purified from culture supernatant by human lactoferrin (hLf) affinity chromatography. The purified PspA was confirmed with anti-PspA antiserum and also had the binding capacity to hLf specifically. To determine whether the purified PspA could elicit protection in mice against pneumococcal inflection, we immunized the mice with purified PspA and subsequently challenged with S. pneumoniae KNIH1156. Immunization with purified PspA protected mice from 500 times the $LD^{50}$ of S. pneumoniae KNIH1156. Therefore, it has been shown that purified PspA fromS. pneumoniae KNIH1156 (type 19F) is a protective immunogen.
Lethal toxin is a critical virulence factor of anthrax. It is composed two protein: protective antigen (PA) and lethal factor (LF). PA binds to specific cell surface receptors and, forms a membrane channel that mediates entry of LF into the cell. LF is a zinc-dependent metalloprotease, which cleaves MKKs [MAPK (mitogen-activated protein kinase) kinases] at peptide bonds very close to their N-termini. In this study, we suggest application of cell-based assays in the early phase of drug discovery, with a particular focus on the use of yeast cells. We constructed MEK1 expression system in yeast to determine LF activity and approached cell-based assay system to screen inhibitors, in which the results covering the construction of LF-substrate in yeast expression vector, expression, and LF-mediated proteolysis of substrate were described. These results could provided the basic steps in design of cell-based assay system with the high efficiency, rapidly and easy way to screening of inhibitors.
We investigated the role of recombinant Toxoplasma gondii heat shock protein (rT.g.HSP) 70-full length, rT.g. HSP70-NH2-terminal region, or rT.g. HSP70-carboxy-terminal region in prophylactic immunity in C57BL/6 mice perorally infected with Fukaya cysts of T. gondii. At 3, 4, 5, and 6 weeks after infection, the number of T gondii in the brain tissue of each mouse was measured by quantitative competitive-polymerase chain reaction (QC-PCR) targeting the surface antigen (SAG) 1 gene. Immunization with rT.g.HSP70-full length or rT.g.HSP70-carboxy-terminal region increased the number of T. gondii in the brain tissue after T. gondii infection, whereas immunization with rT.g.HSP70-NHa-terminal region did not. These results suggest that T.g. HSP70-carboxy-terminal region as well as T.g.HSP70-full length may induce deleterious effects on the protective immunity of mice infected with a cyst-forming T. gondii strain, Fukaya.
Dendritic cells (DCs) are the only antigen presenting cells (APCs) capable of initiating immune responses, which is crucial for priming the specific cytotoxic T lymphocyte (CTL) response and tumor immunity. Upon activation by DCs, CD4+ helper T cells can cross-prime CD8+ CTLs via IL-12. However, recently activated DCs were described to prime in vitro strong T helper cell type 1 $(Th_1)$ responses, whereas at later time points, they preferentially prime $Th_2$ cells. Therfore, we examined in this study the optimum kinetic state of DCs activation impacted on in vivo priming of tumor-specific CTLs by using ovalbumin (OVA) tumor antigen model. Bone-marrow-derived DCs showed an appropriate expression of surface MHC and costimulatory molecules after 6 or 7-day differentiation. The 6-day differentiated DCs pulsed with OVA antigen for 8 h (8-h DC) and followed by restimulation with LPS for 24 h maintained high interleukin (IL)-12 production potential, accompanying the decreased level in their secretion by delayed re-exposure time to LPS. Furthermore, immunization with 8-h DC induced higher intracellular $interferon(IFN)-{\gamma}+/CD8+T$ cells and elicited more powerful cytotoxicity of splenocytes to EG7 cells, a clone of EL4 cells transfected with an OVA cDNA, than immunization with 24-h DC. In the animal study for the evaluation of therapeutic or protective antitumor immunity, immunization with 8-h DC induced an effective antitumor immunity against tumor of EG7 cells and completely protected mice from tumor formation and prolonged survival, respectively. The most commonly used and clinically applied DC-based vaccine is based on in vitro antigen loading for 24 h. However, our data indicated that antigen stimulation over 8 h decreased antitumor immunity with functional exhaustion of DCs, and that the 8-h DC would be an optimum activation state impacted on in vivo priming of tumor-specific CTLs and subsequently lead to induction of strong antitumor immunity.
In order to develop an oral vaccine to prevent H. pylori infection, we have expressed the hpaA gene of H. pylori K51 isolated from Korean patients, encoding 29-kDa HpaA that is known to be localized on the cell surface and flagella sheath, in a live delivery vector system, Lactococcus lactis. The hpaA gene, amplified by PCR using the genomic DNA of H. pylori K51, was cloned in the pGEX-2T vector, and the DNA sequence analysis revealed that the hpaA gene of H. pylori K51 had 99.7% and 94.8% identity with individual hpaA genes of the H. pylori 26695 strain (U.K) and the J99 strain (U.S.A). A polyclonal anti-HpaA antibody was raised in rats using GST-HpaA fusion protein as the antigen. The hpaA gene was inserted in an E. coli-L. lactis-shuttle vector (pMG36e) to express in L. lactis. Western blot analysis showed that the expression level of HpaA in the L. lactis transformant remained constant from the exponential phase to the stationary phase, without extracelluar secretion. These results indicate that the HpaA of H. pylori K51 was successfully expressed in L. lactis, and suggest that the recombinant L. lactis expressing HpaA may be applicable as an oral vaccine to induce a protective immune response against H. pylori.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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