Acetolactate synthase (ALS) was partially purified from Escherichia coli MF2000/pTATX containing Arabidopsis thaliana ALS gene. The partially purified ALS was examined for its sensitivity toward various modifying reagents such as iodoacetic acid, iodoacetamide, N-ethylmaleimide (NEM), 5,5'-dithiobis(2-nitrobenzoic acid) (DTNB), p-chloromercuribenzoic acid (PCMB), and phenylglyoxal. It was found that PCMB inhibited the enzyme activity most strongly followed by DTNB and NEM. Since iodoacetic acid did not compete with substrate pyruvate, it appeared that cysteine is not involved in the substrate binding site. On the other hand, the substrate protected the enzyme partly from inactivation by phenylglyoxal, which might indicate interaction of arginine residue with the substrate. The partially purified enzyme was inhibited by end products, valine and isoleucine, but not by leucine. However, the ALS modified with PCMB led to potentiate the feedback inhibition of all end products. Additionally, derivatives of pyrimidyl sulfur benzoate, a candidate for a new herbicide for ALS, were examined for their inhibitory effects.
Time-dependent inactivation of E. coli GTP cyclohydrolase I with a 2',3'-dialdehyde derivative of GTP (oGTP) was directed to the active site of the enzyme, and was dependent on the concentration of oGTP. The kinetics of inactivation were biphasic with a rapid reaction occurring immediately upon exposure of the enzyme to oGTP followed by a slow rate of inactivation. The $K_i$ value of oGTP for the enzyme was 0.25 mM. Inactivation was prevented by preincubation of the enzyme with GTP, the substrate of the enzyme. At 100% inactivation, 2.3 mol of [8.5'-$^3H$]oGTP were bound per each enzyme subunit, which consists of two identical polypeptides. The active site residue which reacted with the affinity label was lysine. oGTP interacted selectively with the ${\varepsilon}$-amino group of lysine in the GTP-binding site to form a morpholine-like structure which was stable without sodium borohydride treatment. However, triphosphate group was eliminated during the hydrolysis step. To identify the active site of the enzyme, [8.5'-$^3H$]oGTP-labeled enzyme was cleaved by endoproteinase Lys-C, and the $^3H$-labeled peptide was purified by HPLC. The amino acid sequence of the active site peptide was Pro-Ser-Leu-Ser-Lys, which corresponds to the aminoterminal sequence of the enzyme.
RNA polymerase II carboxyl-terminal domain (RNAPII CTD) phosphatases are responsible for the dephosphorylation of the C-terminal domain of the small subunit of RNAPII in eukaryotes. Recently, we demonstrated the identification of several interacting partners with human small CTD phosphatase1 (hSCP1) and the substrate specificity to delineate an appearance of the dephosphorylation catalyzed by SCP1. In this study, using the established cells for inducibly expressing hSCP1 proteins, we monitored the modification of ${\beta}$-O-linked N-acetylglucosamine (O-GlcNAc). O-GlcNAcylation is one of the most common post-translational modifications (PTMs). To gain insight into the PTM of hSCP1, we used the Western blot, immunoprecipitation, succinylayed wheat germ agglutinin-precipitation, liquid chromatography-mass spectrometry analyses, and site-directed mutagenesis and identified the $Ser^{41}$ residue of hSCP1 as the O-GlcNAc modification site. These results suggest that hSCP1 may be an O-GlcNAcylated protein in vivo, and its N-terminus may function a possible role in the PTM, providing a scaffold for binding the protein(s).
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1995.04a
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pp.75-75
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1995
Succinic semialdehyde reductase, one of key enzyme of GABA shunt in CNS, is inactivated by o-phthalaldehyde, The inactivation followed pseudo first-order kinetics, and the second-order rate constant for the inactivation process was 28 M$\^$-1/s$\^$-1/ at pH 7.4 and 25$^{\circ}C$. The absorption spectrum(λ$\_$max/=377nm), fluorescence exitation(λ$\_$max/=340nm) and fluorescence emission spectra (λ$\_$max/=409nm) were consistent with the formation of an isoindole derivative in the catalytic site between a cysteine and a lysine residues about 3${\AA}$ apart. The substrate, succinic semialdehyde, did not protect the enzymatic activity against inactivation, whereas the coenzyme, NADPH, protected against o-phthalaldehyde induced inactivation of the enzyme. About 1 isoindole group per moi of the enzyme was formed following complete loss of the enzymatic activity. These results suggest that the amino acid residues of the enzyme participating in reaction with o-phthalaldehyde more likely residues at or near the coenzyme binding site.
Chitinolytic activity was enhanced by coexpression of endo-chitinase gene (chiA) and chitobiosidase gene (chiB) from Serratia marcescens KFRI314 using constitutive expression vector, pHCEIA, in E. coli. Coexpression vector was constructed by inserting ribosome binding site (RBS) into junction between two chitinase genes. SDS-PAGE analyses showed that two chitinase were constitutively expressed while E. coli clones expressing two chitinases simultaneously increased halo size on colloidal chitin plate. Furthermore, the chitinolytic activities were much enhanced in coexpressed clones when degradation patterns of substrate analogues such as 4-MU-(NAG), $4-MU-(NAG)_2$,$4-MU-(NAG)_3$ were used. Consequently, the combined use of endochitinase and chitobiosidase greatly increased overall chitinolytic activities on recombinant E. coli clones.
The tricarboxylate (or citrate) carrier was purified from eel liver mitochondria and functionally reconstituted into liposomes. Incubation of the proteoliposomes with various sulfhydryl reagents led to inhibition of the reconstituted citrate transport activity. Preincubation of the proteoliposomes with reversible SH reagents, such as mercurials and methanethiosulfonates, protected the eel liver tricarboxylate carrier against inactivation by the irreversible reagent N-(1-pyrenyl)maleimide (PM). Citrate and L-malate, two substrates of the tricarboxylate carrier, protected the protein against inactivation by sulfhydryl reagents and decreased the fluorescent PM bound to the purified protein. These results suggest that the eel liver tricarboxylate carrier requires a single population of free cysteine(s) in order to manifest catalytic activity. The reactive cysteine(s) is most probably located at or near the substrate binding site of the carrier protein.
Kim, Eun-Sook;Yoo, Sung-Eun;Yi, Kyu-Yang;Lee, Sun-Kyung;Noh, Jae-Sung;Jung, Yong-Sam;Kim, Eun-Hee;Jeong, Nak-Chul
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.23
no.7
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pp.1003-1010
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2002
Caspase 3, a member of cysteine protease family, is well known as a major apoptosis effector and is involved in cell death as a result of ischemic diseases such as stroke and myocardial infarction, therefore the inhibition of caspase 3 may protect those apoptotic cell damages. During the high-throughput screening of the compounds from the Korea Chemical Bank, berberine derivatives (A and B), an isoquinoline alkaloid, have been identified as potential inhibitors for caspase 3. Based on this finding we carried out molecular modeling study to identify the pharmacophoric elements of berberine structure which interact with a substrate-recognition binding site of caspase 3 and came up with several novel scaffolds. In this report, we will discuss the molecular modeling, syntheses and the enzyme inhibitory activities of these novel compounds.
Proceedings of the Korea Crystallographic Association Conference
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2003.05a
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pp.16-16
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2003
Mismatches in a DNA duplex are mainly due to DNA duplication errors that are generated by improper function of DNA polymerase. MutS, MutL and MutH are crucial proteins for the initiation of the methyl-directed mismatch repairing in bacteria. MutS has an ATPase activity md recognize the mismatched or unpaired bases on DNA. After binding to a mismatch, MutS recruits MutL to mediate the activation of MutH an endonuclease, which cleaves the 5' site of d(GATC) on the un-methylated strand. Both MutL and MutS also have essential roles in the subsequent removal and re-synthesis of the daughter strand. We have determined the crystal structures of either intact or active fragments of each of these proteins, both alone and complexed with ligands (DNA, ADP and ATP). The biochemical and mutagenesis studies based on the detailed 3-D structures led to new insights into the role of the ATPase activity of MutS in the mismatch recognition and directions for future investigation of mismatch repair.
In an effort to increase effective action of enkephalins, several peptide inhibitors of enkephalin aminopeptidase have been synthesized. The peptides contain 3-amino-2-hydroxy amino acid as a zinc binding site and side chains of substrate pattern. The peptides were synthesized in solution by chain elongation from C-terminal end using DCC/HOBt as coupling reagent. The peptides are shown to have very strong inhibitory activity against enkephalin aminopeptidase.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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