생쥐의 정자가 부정소에서 성숙하는 동안 Phosphatase 활성도의 변화를 알아보기 위하여 본 연구를 실시하였다. 효소의 활성도는 Ernst(1975)의 방법을 변용하여 측정하였으며 그 결과를 요약하면 다음과 같다. 부정소으 두부내 정자와 미부내 정자으 단백질 함량은 각각 59.1 $\pm$8.4(mg/10 9 sperm), 14.0$\pm$12.3(mg/10 9 sperm)으로 나타났다. 기본 반응액에서 나타난 두부내 정자의 효소 활성도를 100%로 할 때, 미부내 정자의 활성도는 ALPase가 29.2%, ALPase가 44.9% 그리고 ALPase가 53.8%였으며, 초음파로 정자를 분쇄하였을 경우에 ALPase는 16.5%, ALPase는 33.3% 그리고 ALPase는 38.7%였다. 따라서 미부내 정자의 phoshatase 활성도는 두부내 정자에 비하여 현저히 감소하였다. 그리고 부정소의 미부내 정자에서 K+ -dependent ALPase와 ALPase의 활성도는 두부내 정자에 비하여 유의하게 감소하였으며, 초음파로 정자를 분쇄하였을 때 $Ca^2$+ -dependent phoshatase의 활성도는 유의하게 증가하였다. 이상의 결과로 보아 생쥐의 정자가 부정소에서 성숙하는 동안 phoshatase의 활성도가 감소하는 것은 성숙과정에서 정자가 수정능력을 획득하는 데 어떤 중요한 역할을 할 것으로 사료된다.
A viable spermatozoon is a prerequisite for fertilization in intracytoplasmic sperm injection (ICSI). Thus, it is crucial to select viable but immotile spermatozoa on the day of ICSI. We report conflicting results in the identification of viable but immotile spermatozoa between the eosin-nigrosin staining and the laser test, which resulted in confusion for embryologists during assisted reproductive technology (ART). Three patients' semen samples that showed no motile spermatozoa are described in this report. To identify viable spermatozoa, we used both the eosin-nigrosin test and the laser test for each sample, and repeated the semen analysis twice in each patient. Viable but immotile spermatozoa selected by the laser test were used for ICSI. Viable spermatozoa were detected by both the eosin-nigrosin and laser tests in two patients (case 1, 95.00% vs. 24.21% and 92.68% vs. 22.22%; case 2, 41.18% vs. 23.48% and 39.81% vs. 22.52%), indicating consistent results between the two methods. In the third patient, the eosin-nigrosin test yielded viability rates of 20.75% and 19.14%, while the result of the laser test was 0%. Thus, testicular aspiration was performed to collect viable sperm from this patient. Normal fertilization was achieved after the injection of viable but immotile spermatozoa selected from these patients by the laser test, resulting in the birth of two healthy babies. Our study documents a case where the eosin-nigrosin test showed a limitation in identifying viable but immotile spermatozoa for ART, while the laser test may overcome this limitation. Larger samples may be required to corroborate the clinical value of the laser test.
This study evaluated the effect of fertilization-promoting peptide (FPP) on fertilizing ability and glycosidase activity in vitro of spermatozoa frozen-thawed in pig, Using chlortetracycline fluorescence analysis, the various glycosidase analyses and the oocyte penetration test, we have obtained evidence that FPP can promote the fertilizing ability and glycosidase activity of frozen-thawed spermatozoa in vitro. When frozen-thawed spermatozoa was washed with different concentrations of FPP, there were significantly (P<0.05) more acrosome-reacted in medium with 100 nM than 0, 50, 200 and 400 nM. The penetration rates were also highest in medium containing with 100 nM FPP (P<0.05). On the other hand, the $\beta$-N-acetylglucosaminidase activity was at least twofold higher than other glycosidase. In same glycosidase, however, there were no difference in medium with different concentrations of FPP In another experiment, spermatozoa preincubated in medium with or without FPP for 0, 1, 2, 3 and 4 h were inseminated with oocytes matured in vitro. The percentages of spermatozoa that reached acrosome reaction were affected by preincubation and were higher in medium with that than without FPP. When oocytes were inseminated with spermatozoa preincubated in medium with and without FPP during the different periods, however, penetration rates were decreased with preincubation periods of spermatozoa. On the other hand, when the sperm-oocyte were cultured for 4, 8, 12, 16, 20 and 24 h, the penetration rates were higher in spermatozoa preincubated with that than without FPP and had a tendency to increase as time of culture periods. However, The activities of $\alpha$-fucosidase, $\alpha$ -mannosidase, $\beta$-galactosidase and N-acetyl- $\beta$-D-glucosaminidase were higher in medium with that than without FPP regardless of periods of sperm preincubation and sperm-oocyte culture. These results suggest that FPP may play a positive role in promoting of sperm function and glycosidase activity in vitro in pig.
Objective: The sperm acrosome reaction is a $Ca^{2+}$-dependent exocytotic event that is triggered by adhesion to the mammalian egg's zona pellucida. Previous studies suggested a role of $Ca^{2+}$ channels in acrosome reactions. This study was conducted to investigate the T-type calcium channel is operated in acrosome reaction of human spermatozoa. Method: Human semen samples were obtained from healthy donors with normal criteria. The spermatozoa were divided into five groups: Group 1 were non-treated as a control; Group 2 where spermatozoa were exposed to 5 ${\mu}M$$Ca^{2+}$ A23187 $(Ca^{2+}i)$; Group 3 where spermatozoa were exposed 5 ${\mu}M$$Ca^{2+}i$ and mibefradil; Group 4 where spermatozoa were exposed 5 ${\mu}M$$Ca^{2+}i$ and nifedipine, and Group 5 where spermatozoa were treated with 5 ${\mu}M$$Ca^{2+}i$ and both of mibefradil and nifedipine. Spermatozoa in all groups were retrieved after incubation for 15 and 30 minutes at $37^{\circ}C$. After staining with PSA-FITC, fluorescence was observed under a fluorescence microscope, and AR was evaluated on a total>100 spermatozoa/side. Result and Conclusion: We observed on acrosome reaction inhibition rate in human spermatozoa the various of concentration of mibefradil, nifedipine. Maximum response was noted with 1.0 ${\mu}M$ mibefradil and the decrease of acrosome reaction inhibition rate 45%. Nifedipine in acrosome reaction inhibition rate was only about 25%. The $Ca^{2+}i$-induced AR of spermatozoa was significantly suppressed by mibefradil. Incidence of the suppression was depending on concentration of mibefradil. Results from the present study suggest that the human spermatozoa possess T-type channel. The observation that reversible inhibitor of T channels in male germ cells provides a new mechanism of contraceptive action.
Dehghanpour, Fatemeh;Tabibnejad, Nasim;Fesahat, Farzaneh;Yazdinejad, Fatemeh;Talebi, Ali Reza
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제44권2호
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pp.73-78
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2017
Objective: Sperm morphology plays an important role in infertility, especially in cases of defects in the heads of spermatozoa. Tapered-head or elongated-head spermatozoa are examples of morphological abnormalities. The aim of this study was to compare the semen parameters, levels of protamine deficiency, and frequency of apoptosis between patients with normozoospermia and those with teratozoospermia with tapered-head spermatozoa. Methods: Fifty-two semen samples (27 patients with tapered-head sperm and 25 fertile men) were collected and semen analysis was performed according to the World Health Organization criteria for each sample. Protamine deficiency and the percentage of apoptotic spermatozoa were evaluated using chromomycin A3 (CMA3) staining and terminal deoxynucleotidyl transferase dUTP nick-end labelling (TUNEL) assays, respectively. Results: Sperm concentration, motility, and normal morphology in the tapered-head spermatozoa (cases) were significantly lower than in the normozoospermic samples (controls). CMA3-reactive spermatozoa (CMA3+) in the case group were more common than in the controls. Apoptotic spermatozoa (TUNEL-positive) were significantly more common in the cases than in the controls. Conclusion: This analysis showed that tapered-head spermatozoa contained abnormal chromatin packaging and exhibited a high rate of apoptosis, which can be considered to be an important reason for the impaired fertility potential in teratozoospermic patients with tapered-head spermatozoa.
It is generally accepted that spermatozoa capacitation is associated with protein kinase A-mediated tyrosine phosphorylation. In our previous study, we identified the fibrous sheath CABYR binding protein (FSCB), which was phosphorylated by PKA. However, the phosphorylation status of FSCB protein during spermatozoa capacitation should be further investigated. To this aim, in this study, we found that phosphorylation of this 270-kDa protein occurred as early as 1 min after mouse spermatozoa capacitation, which increased over time and remained stable after 60 min. Immunoprecipitation assays demonstrated that the tyrosine and Ser/Thr phosphorylation of FSCB occurred during spermatozoa capacitation. The extent of phosphorylation and was closely associated with the PKA activity and spermatozoa motility characteristics. FSCB phosphorylation could be induced by PKA agonist DB-cAMP, but was blocked by PKA antagonist H-89.Therefore, FSCB contributes to spermatozoa capacitation in a tyrosine-phosphorylated format, which may help in further elucidating the molecular mechanism of spermatozoa capacitation.
Dhar, Ajoy Chandra;Talukder, Anup Kumar;Rahman, Mohammad Bozlur;Al-Mamun, Abdullah;Shamsuddin, Mohammed
한국수정란이식학회지
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제25권4호
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pp.237-245
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2010
Only an optimum number of viable spermatozoa in a frozen-thawed insemination dose can ensure conception at artificial insemination (AI). We report here the percentages of normal, abnormal and viable spermatozoa present in the frozen-thawed semen of 20 Black Bengal bucks used for commercial AI. Bucks in this experiment were of 19.3~46.1 months old and 25~42 kg body weight. Four semen straws (0.25 ml) from each buck were collected for evaluation of their kinetic parameters. Scrotal circumference was measured by using a scrotal tape, sperm motility was estimated on eye estimation and sperm concentration was determined by using a haemocytometer. Sperm morphology was studied in paraformaldehyde fixed spermatozoa under differential interference contrast (DIC) microscope. To determine the proportion of live (plasma membrane intact) spermatozoa, semen was stained with SYBR-14 and propidium iodide and examined under fluorescent microscope. Scrotal circumference, post-thaw sperm motility, sperm concentration per insemination dose and proportion of normal spermatozoa were $21.5{\pm}0.7\;cm$, $43.5 {\pm}5.4%$, $83.5{\pm}6.7$ million and $88.3{\pm}4.1%$, respectively. The percentages of spermatozoa with head shape and acrosome abnormalities were lower ($2.7{\pm}1.1$ and $1.4{\pm}1.3$, respectively), whereas higher percentages of abnormalities ($7.0{\pm}1.8$) were observed in mid piece and tail portion. The proportion of live spermatozoa was $28.5{\pm}5.4$. It is concluded that although a good number of morphologically normal spermatozoa are present in the insemination dose, the proportion of live spermatozoa is low, which warrants further improvements of buck semen freezing procedures to ensure good quality at AI.
Spermatozoa viability can be assessed by microscopy, flow cytometry, and other methods using fluorescent stain. Flow cytometry can be used to examine the morphological and functional characteristics of spermatozoa in a short time. The purpose of this study was to compare the viability of cryopreserved spermatozoa in Jeju black cattle by two dual fluorescent stain methods. Semen of Jeju black cattle raised in Subtropical Livestock Research Institute, National Institute of Animal Science, RDA were collected with artificial vaginal technique. Sperm was diluted with $Triladyl^{(R)}$-egg yolk diluent and then was performed cryopreservation. There was no significant difference in viability of spermatozoa according to the two dual fluorescent stain methods. However, when the distribution of spermatozoa according to the staining method was compared, the spermatozoa group stained with 6-CFDA/PI was more clearly distinguished than the spermatozoa group stained with calcein AM/PI.
Kim, Tae-Shin;Yang, Cao;Cheong, Hee-Tae;Yang, Boo-Keun;Lee, Sang-Young;Park, Choon-Keun
Reproductive and Developmental Biology
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제30권3호
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pp.189-194
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2006
Sperm-mediated gene transfer(SMGT) can be used to transfer exogenous DNA into the oocyte at fertilization. The main objective of this study was to assess efficiency of transferring mitochondrial DNA(mtDNA) fragment into boar spermatozoa in either presence or absence of liposome and quality of transfected spermatozoa. The mtDNA of chicken liver was isolated and purified by phenol and alkaline lysis extraction, and it was inserted to plasmid. The genome of transfected spermatozoa treated with DNase I was purified by alkaline lysis, and then amplified by the PCR analysis. After electrophoresis, DNA quantitation of each well was calculated by comparison of the band intensity with standard. As a result, exogenous DNA was composed of mtDNA fragment(1.2 kb) and plasmid(2.7 kb). On the other hand, efficiency of transfection by liposome($9.0{\pm}0.34ng/{\mu}l$) in SMGT was higher than that by DNA solution($6.9{\pm}0.53ng/{\mu}l$). However, there was no significant difference. Transfering exogenous DNA into spermatozoa was completed within 90 min of incubation. In another experiment, there were significant (p<0.05) differences between transfected spermatozoa using both DNA solution and DNA/liposome completes with unheated spermatozoa for viability ($70.8{\pm}1.80$ and $68.0{\pm}2.16%$ vs. $83.3{\pm}1.69%$, respectively) and motility($78.7{\pm}1.59$ and $79.3{\pm}2.14%$ vs. $86.7{\pm}1.59%$, respectively). This study indicates that exogenous mtDNA can be efficiently transferred into boar spermatozoa regardless of the presence of liposome, and transfected spermatozoa can also use insemination and in vitro fertilization to generate transgenic pig.
A simplified dilutor for cock spermatozoa at ambient temperature was achieved by adjusting the 5% concentration of fructose in isotonic saline. Motility of cock spermatozoa was arrested completely for maximum 6 hrs without affection the survivability of spermatozoa by employing this sugar. To study the effect of high concentration of fructose on fertility, sperm were inseminated with or without fructose at different hrs. Fructose from semen samples was removed by centrifugation. High fertility obtained in the hens inseminated with fructose free sperm (washed). In addition, washed sperm maintained the 85.00% fertility for 6 hrs in winter season ($17-21^{\circ}C$) and 82.67% fertility for 3 hrs in summer season ($31-35^{\circ}C$). Whereas control groups showed 47.33 and 25.33% fertility in winter and summer season respectively. No significant difference was found in percent motility and live counts between the control and washed experimental groups during winter season. However, these measures differed significantly in summer. Washing of cock spermatozoa more than once, high speed centrifugation and more duration for centrifugation proved harmful to fertility. It may be concluded that fructose (5%) can be used as a motility or metabolic inhibitor of spermatozoa for short-term storage of cock semen at ambient temperatures.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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