Rangga Setiawan;Raden Febrianto Christi;Ken Ratu Gharizah Alhuur;Rini Widyastuti;Nurcholidah Solihati;Siti Darodjah Rasad;Kundrat Hidajat;Duy Ngoc Do
Animal Bioscience
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v.37
no.4
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pp.631-639
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2024
Objective: This study evaluates goat sperm motility in response to metabolic substrates and various inhibitors, aiming to assess the relative contribution of glycolysis and mitochondrial oxidation for sperm movement and adenosine triphosphate (ATP) production. Methods: In the present study, two main metabolic substrates; 0 to 0.5 mM glucose and 0 to 30 mM pyruvate were used to evaluate their contribution to sperm movements of goats. Using a 3-chloro-1,2-propanediol (3-MCPD), a specific inhibitor for glycolysis, and carbonyl cyanide 3-chlorophenylhydrazone as an inhibitor for oxidative phosphorylation, cellular mechanisms into ATP-generating pathways in relation to sperm movements and ATP production were observed. Data were analysed using one-way analysis of variance for multiple comparisons. Results: Sperm motility analysis showed that either glucose or pyruvate supported sperm movement during 0 to 30 min incubation. However, the supporting effects were abolished by the addition of a glycolysis inhibitor or mitochondrial uncoupler, concomitant with a significant decrease in ATP production. Although oxidative phosphorylation produces larger ATP concentrations than those from glycolysis, sperm progressivity in relation to these two metabolic pathways is comparable. Conclusion: Based on the present study, we suggest that goat sperm use glucose and pyruvate to generate cellular energy through glycolysis and mitochondrial respiration pathways to maintain sperm movement.
The objective of this study was to elucidate the basis for the difference in sperm production of broiler breeders. Nine sexually mature Hubbard broiler breeder males, 35 weeks of age, were trained for two weeks for semen collection on alternate days by abdominal massage technique. Following the training, the breeder males were collected daily for five successive days. The males were then classified as low or high sperm producers. The mean body weights of individual males were also recorded on the basis of body weight at the start and end of the experiment. Immediately after last collection the males were slaughtered and testes biometry was determined. Daily sperm output of individual males varied from $0.21{\times}10^9\;to\;2.64{\times}10^9$ sperm. The daily sperm production of low sperm producer males was lower ($0.47{\pm}0.13\;vs.\;2.06{\pm}0.20{\times}10^9$; P<0.05) than high sperm producer males. Testes weight of low sperm producer males was lower ($6.32{\pm}1.6\;vs.\;20.33{\pm}4.76\;gm$; P<0.05) than high sperm producer males. Moreover the testis weight of high sperm producer males was 3.22 times higher than low sperm producer males. The average body weight of high sperm producer males was higher ($4,389{\pm}116.3\;vs.\;3,960{\pm}131.77\;gm$; P>0.05) than low sperm producer males. The correlation coefficients indicate significantly positive correlation of body weight (P<0.05) and testes weight (P<0.01) on semen volume, sperm concentration and daily sperm production.
Chun Young-Jin;Lee Hyun Min;Han Jee Hye;Oh Young Kun
Toxicological Research
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v.21
no.2
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pp.129-134
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2005
Styrene is a commercially important chemical used mainly in the production of plastics. A toxic effect exerted by styrene exposure may cause infertility, congenital anomalies or death in offspring. Treatment with styrene for 0, 50, 100, and 500 mg/kg for 5 days in Sprague-Dawley rats significantly decreased sperm motilities and sperm counts while sperm abnormalities were significantly increased. To determine the relationship between changes in sperm motilities and roles of reactive oxygen species (ROS), we determined the effect of styrene on ROS production and mRNA expression of antioxidant enzymes in rats. ROS production was enhanced by styrene treatment in a dose-dependent manner. The mRNA expression of catalase and superoxide dismutase (SOD) 2 was strongly suppressed by styrene treatment although SOD1 or glutathione peroxidase (GPX) 4 expressions were not significantly changed. Taken together, these results indicate that styrene may cause toxic effect in rat sperm cells by enhancing oxidative stresses.
Objective: Sperm vitrification leads to the production of reactive oxygen species (ROS) that can damage the functional parameters of sperm. The present study aimed to investigate the antioxidant effect of Nigella sativa extract on motility, plasma membrane function, mitochondrial membrane potential (MMP), DNA damage, and intracellular ROS production. Methods: A total of 20 sperm samples were used. Samples were divided into six experimental groups, including groups with aqueous extract from N. sativa seeds at concentrations of 1% to 6%, a cryopreserved control group, and a fresh control group. Results: Statistical analysis showed significantly higher total sperm motility at concentrations of 3% to 6% than in the vitrified semen control group. Additionally, progressive motility and all motion characteristics at all concentrations were significantly higher than in the vitrified semen control group. The presence of N. sativa seed extract also improved the quality of the sperm parameters assayed in all experimental groups (1%-6%; intracellular ROS production, DNA damage, MMP, and sperm membrane function) compared to the control group. Conclusion: Higher concentrations of N. sativa led to improvements in all sperm parameters and sperm quality. These findings indicate that N. sativa seed extract is effective for improving the quality of sperm after vitrification.
Ahmad Yar Qamar;Muhammad Ilyas Naveed;Sanan Raza;Xun Fang;Pantu Kumar Roy;Seonggyu Bang;Bereket Molla Tanga;Islam M. Saadeldin;Sanghoon Lee;Jongki Cho
Animal Bioscience
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v.36
no.3
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pp.385-403
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2023
Male fertility is affected by multiple endogenous stressors, including reactive oxygen species (ROS), which greatly deteriorate the fertility. However, physiological levels of ROS are required by sperm for the proper accomplishment of different cellular functions including proliferation, maturation, capacitation, acrosomal reaction, and fertilization. Excessive ROS production creates an imbalance between ROS production and neutralization resulting in oxidative stress (OS). OS causes male infertility by impairing sperm functions including reduced motility, deoxyribonucleic acid damage, morphological defects, and enhanced apoptosis. Several in-vivo and in-vitro studies have reported improvement in quality-related parameters of sperm following the use of different natural and synthetic antioxidants. In this review, we focus on the causes of OS, ROS production sources, mechanisms responsible for sperm damage, and the role of antioxidants in preserving sperm fertility.
Streptozotocin (STZ), bisphenol A (BPA), and diethylstilbestrol (DES) are known as endocrine disruptors, occurs oxidative stress in animal cells. Generally, oxidative stress induces reactive oxygen species (ROS) and lipid peroxidation of sperm and lead to decreased viability and fertility in pigs. Therefore, we investigated the influence of STZ, BPA and DES on ROS production and lipid peroxidation on boar sperm. Collected sperm were incubated with semen extender containing $10{\mu}M\;STZ$, $10{\mu}M\;BPA$ and $20{\mu}M\;DES$ for 3, 6 and 9 hours. Intracellular ROS and lipid peroxidation of sperm were analyzed by 2', 7'-dichlorofluorescein diacetate and malondialdehyde methods. The results show that, intracellular ROS was not significantly different among the all treatments, but lipid peroxidation was significantly increased in STZ group at 3 hour after incubation with boar sperm (P<0.05). These results suggest that STZ stimulates lipid peroxidation more than ROS production and may exert a negative effect on sperm fertility.
Proceedings of the Korean Aquaculture Society Conference
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2003.10a
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pp.40-40
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2003
DNA content of the sperm of tetraploid mud loach (Misgurnus mizolepis) males and the ploidy status of progenies generated by crossing tetraploid males with diploid females are described. Reproductive performance of the induced adult tetraploid males ranged from sterility to fertility. Of 48 tetraploid males tested, 12 were sterile but the other 36 produced functional sperm. Of these 36, 26 produced haploid sperm, which on fertilizing the haploid eggs, generated diploid progenies. Seven tetraploid males were mosaics in their sperm, as indicated by the production of diploid, aneuploid and/or triploid offspring. Only 3 males produced diploid sperm rendering the production of all-triploid progenies. The DNA content of sperm of a tested tetraploid male was consistent throughout the 3 progeny tests, i.e. the haploid sperm-producing 4n males persisted to produce the haploid sperm only likewise the diploid sperm producing4n males consistently produced the diploid sperm only, when progeny testing was extended to 3 successive but alternate years. Hence, a careful and direct examination of the DNA profile of sperm from tetraploid males is a pre-requisite for reproductive containment of genetically modified fish.
Techniques for manipulation of spermatozoa and oocytes have been widely used for in vitro production(IVP) of Hanwoo. This study was conducted to examine the effects of theophylline and heparin on frozen-thawed Hanwoo sperm for enhancing the efficiency of IVP technique. Oocytes were inseminated with forzen bull semen treated with either theophylline or heparin for examining the effect of each substance on fertilization and subsequent development. More (P<0.05) oocytes formed pronucleus and develop to the morula and blastocyst stages after inseminated with sperm treated with heparin than after inseminated with sperm treated with theophylline. The pregnancy rate after embryo transfer was higher after heparin treatment than after theophylline treatment, but did not differ significantly. There was no significant difference of offspring delivery between two groups. In conculsion, theophylline and heparin can be used for enhancing the efficiency of IVP system for Hanwoo. Considering characteristics of these substance, theophylline may be useful in the artificial insemination system, which requires vigorous sperm motility. While, heparin supporting sperm viability in vitro can be effectively used for improving in vitro-fertilization system.
The objective of this study were to investigate the effect of ejaculation frequency on semen characteristics and to establish a method for quick assessment of sperm concentration in TCC using packed cell volume (PCV) as the parameter (Trial 1). Eighty senior roosters, averaging 61 wk-old, were used and the sperm concentrations were determined using a hemacytometer. The PCV value was measured in a capillary (0.75 mm in inner diameter) by centrifugation. A simple linear regression analysis suggested that the sperm concentrations were significantly correlated with PCV values (r=0.62, p<0.001). Trial 2 was conducted to determine the optimal ejaculation frequency of TCC roosters in a weekly semen collection program. The male birds were subjected to 1, 2, 3 or 6 ejaculations per week for four consecutive weeks and semen characteristics including ejaculation volume (EV, mL), sperm motility (%), PCV (%), sperm concentration (ESC, $\times$10$^{9}$/mL), weekly sperm production (WSP, $\times$10$^{9}$/wk) and average motile sperm numbers (AMSN, $\times$10$^{9}$/ejac) were determined. Average EV was greater in the group with 3 ejac/wk than with only 1 ejac/wk in weeks 1 and 3 of the collection period. WSP increased with ejaculation frequency during the first 3 weeks of collection (p<0.05). Sperm motility was better in the birds with 6 ejac/wk than in single ejaculation group for the first 2 wk and no significant differences were found for the last 2 wk of study. In contrast, the PCV value showed a trend of reduction for the first 2 wks in the 6 ejac/wk group. Surprisingly, no significant differences were detected in the AMSN among treatment groups. The weekly motile sperm production (WMSP) increased with ejaculation frequency. Based on our observation, PCV values could be used for a quick estimation of sperm concentration and an intensive semen collection program enhanced weekly sperm production in TCC roosters.
The present study was carried out to establish several spermatotoxicity test methods. For this purpose we investigated following parameters in the fertility study of DA-125, a new anticancer agent, in rats: testicular spermatid counts, epididymal sperm counts, daily sperm production rate, sperm morphology, and serum testosterone concentration. Motility and velocity of sperms were also measured using non-treated rats. At 0.3 mg DA-125/kg, spermatids per 1g testis and daily sperm production rate per 1g testis were significantly decreased, when compared with those of control group. Several types of abnormal sperms, such as no head, pin head, double head, hook at wrong angle, no tail, and small sperm, were found in both treated and control groups at a low frequency. Serum testosterone concentration at 0.3 mg DA-125/kg was close to the control value. Sperm motility and velocity measured with non-treated rats were in a good agreement with the results of other investigators. In our study established spermatotoxicity test methods can be used as a tool not only for the close examination of the cause of drug- or chemical-induced infertility, but also for the effective evaluation of reproductive toxicity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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