The Fukushima Daiichi Nuclear Power Plant accident in March 2011 caused severe radioactive contamination in the surrounding environment. Since the accident, much attention has been paid to the biological and genetic consequences of organism inhabiting the contaminated area. The effect of radiation exposure on genetic mutation rates is little known, especially for low doses and in situ conditions. Evaluating DNA mutation by low levels of radiation dose is difficult due to the rare mutation event and lack of sequence information before the accident. In this study, correlations with air dose levels and somatic DNA mutation rates were evaluated using Next Generation Sequencer for the clonal plant, Phyllostachys edulis. This bamboo is known to spread an identical clone throughout Japan, and it has the advantage that we can compare genetic mutation rate among identical clone growing different air dose levels. We collected 94 samples of P. edulis from 14 sites with air dose rates from $0.04{\sim}7.80{\mu}Gy/h$. Their clonal identity was confirmed by analysis using 24 microsatellite markers, and then, sequences among samples were compared by MIG sequence. The sequence data were obtained from 2,718 loci. About ~200,000 bp sequence (80 bp X 2,718 loci) were obtained for each sample, and this corresponds to about 0.01% of the genome sequence of P. edulis. In these sequences, 442 loci showed polymorphism patterns including recent origin mutation, old mutation, and sequence errors. The number of mutations per sample ranged from 0 to 13, and did not correlate with air dose levels. This result indicated that DNA mutations have not accumulated in P. edulis living in the air doses levels less than $10{\mu}Gy/h$. Our study also suggests that mutation rates can be assessed by selecting an appropriate experimental approach and analyzing with next generation sequencer.
Background: Epidermal growth factor receptor (EGFR) tyrosine kinase inhibitors, gefitinib and erlotinib, are effective therapies for non-small cell lung cancer (NSCLC) patients whose tumors harbor somatic mutations in EGFR. The mutations are, however, only found in about 30% of Asian NSCLC patients and all patients ultimately develop resistance to these agents. Ionizing radiation has been shown to induce autophosphorylation of EGFR and activate its downstream signaling pathways. In the present study, we have tested whether the effect of gefitinib treatment can be enhanced after ionizing radiation. Methods: We compared the PC-9 and A549 cell line with its radiation-resistant derivatives after gefitinib treatment with cell proliferation and apoptosis assay. We also analyzed the effect of gefitinib after ionizing radiation in PC-9, A549, and NCI-H460 cells. Cell proliferation was determined by MTT assay and induction of apoptosis was evaluated by flow cytometry. Caspase 3 activation and PARP cleavage were evaluated by western blot analysis. Results: PC-9 cells having mutated EGFR and their radiation-resistant cells showed no significant difference in cell viability. However, radiation-resistant A549 cells were more sensitive to gefitinib than were their parental cells. This was attributable to an increased induction of apoptosis. Gefitinib-induced apoptosis increased significantly after radiation in cells with wild type EGFR including A549 and NCI-H460, but not in PC-9 cells with mutated EGFR. Caspase 3 activation and PARP cleavage accompanied these findings. Conclusion: The data suggest that gefitinib-induced apoptosis could increase after radiation in cells with wild type EGFR, but not in cells with mutated EGFR.
Mutation signatures represent unique sequence footprints of somatic mutations resulting from specific DNA mutagenic and repair processes. However, their causal associations and the potential utility for genome research remain largely unknown. In this study, we performed PanCancer-scale correlative analyses to identify the genomic features associated with tumor mutation burdens (TMB) and individual mutation signatures. We observed that TMB was correlated with tumor purity, ploidy, and the level of aneuploidy, as well as with the expression of cell proliferation-related genes representing genomic covariates in evaluating TMB. Correlative analyses of mutation signature levels with genes belonging to specific DNA damage-repair processes revealed that deficiencies of NHEJ1 and ALKBH3 may contribute to mutations in the settings of APOBEC cytidine deaminase activation and DNA mismatch repair deficiency, respectively. We further employed a strategy to identify feature-driven, de novo mutation signatures and demonstrated that mutation signatures can be reconstructed using known causal features. Using the strategy, we further identified tumor hypoxia-related mutation signatures similar to the APOBEC-related mutation signatures, suggesting that APOBEC activity mediates hypoxia-related mutational consequences in cancer genomes. Our study advances the mechanistic insights into the TMB and signature-based DNA mutagenic and repair processes in cancer genomes. We also propose that feature-driven mutation signature analysis can further extend the categories of cancer-relevant mutation signatures and their causal relationships.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제26권4호
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pp.337-344
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2000
본 연구에서는 MSI와 구강암과의 상관관계를 규명하기 위하여 17례의 구강암에 대하여 12종류의 marker를 이용하여 MSI 빈도를 조사하였으며, 동시에 p53단백의 과발현과 유전자 돌연변이 양상에 대해서도 알아보았다. 그 결과 4종류 이상의 marker에 대해서 MSI가 나타나는 widespread MSI의 경우 임상병리학적으로 뚜렷한 특징이 없었다. 또한 흡연과 MSI 빈도간에도 연관성이 없었으나 흡연은 p53 유전자의 돌연변이를 증가시켜 암화과정을 촉진하는 작용을 하는 것으로 나타났다.
Myostatin (MSTN) can negatively regulate the growth and development of skeletal muscle, and natural mutations can cause "double-muscling" trait in animals. In order to block the inhibiting effect of MSTN on muscle growth, we transferred zinc-finger nucleases (ZFN) which targeted sheep MSTN gene into cultured fibroblasts. Gene targeted colonies were isolated from transfected fibroblasts by serial dilution culture and screened by sequencing. Two colonies were identified with mono-allele mutation and one colony with bi-allelic deletion. Further, we introduced the MSTN-ZFN mRNA into sheep embryos by microinjection. Thirteen of thirty-seven parthenogenetic embryos were targeted by ZFN, with the efficiency of 35%. Our work established the technical foundation for generation of MSTN gene editing sheep by somatic cloning and microinjection ZFN into embryos.
-4-Quinolone antibiotics (pefloxacin, ciprofloxacin, norfoxacin, ofloxacin and enoxacin) were tested for mutagenicity in Salmonella typhimurium TA98, TA100, TA1535, TA1537, TA1538 and TA102, for chromosomal aberrations in cultured Chinese hamster lung (CHL) cells, and for wing somatic mutations and recombinations (wing spot) in Drosophila. Five 4-quinolones did not show any mutagenicity in Salmonella typhimurium TA98, TA100, TA1535, TA1537 and TA1538. However, they were mutagenic inSalmonella typhimurium TA102 with and without metabolic activation in both plate incorporation method and preincubation method. Ciprofloxacin induced structural chromosome aberrations in CHL cells both with and without metabolic activation, and the frequencies were 6% and up to 28%, respectively. Pefloxacin showed equivocal evidence, however, norfloxacin, ofloxacin and enoxacin did not induce the structural chromosome aberrations both in the presence and absence of metabolic activation. In the wing spot assay in Drosophila, ofloxacin increased the frequency of small single spots significantly in a dose-dependent manner but there was no dose-dependent increase of single or twin spots in the others.
In embryonic stem cells (ESCs), cell cycle regulation is deeply connected to pluripotency. Especially, core transcription factors (CTFs) which are essential to maintaining the pluripotency transcription programs should be reset during M/G1 transition. However, it remains unknown about how CTFs are governed during cell cycle progression. Here, we describe that the regulation of Oct4 by Aurora kinase b (Aurkb)/protein phosphatase 1 (PP1) axis during the cell cycle is important for resetting Oct4 to pluripotency and cell cycle related target genes in determining the identity of ESCs. Aurkb starts to phosphorylate Oct4(S229) at the onset of G2/M phase, inducing the dissociation of Oct4 from chromatin, whereas PP1 binds Oct4 and dephosphorylates Oct4(S229) during M/G1 transition, which resets Oct4-driven transcription for pluripotency and the cell cycle. Furthermore, Aurkb phosphormimetic and PP1 binding-deficient mutations in Oct4 disrupt the pluripotent cell cycle, lead to the loss of pluripotency in ESCs, and decrease the efficiency of somatic cell reprogramming. Based on our findings, we suggest that the cell cycle is directly linked to pluripotency programs in ESCs.
Higher plants can be valuable genetic assay systems for monitoring environmental pollutants and evaluating their biological toxicity. Two assays are considered ideal for in situ monitoring and testing of soil, airborne and aqueous mutagenic agents; the Tradescantia stamen hair assay for somatic cell mutations and the Tradescantia micronucleus assay for chromosome aberrations. Both assays can be used for in vivo and in vitro testing of mutagens. Since higher plant systems are now recognized as excellent indicators and have unique advantages over in situ monitoring and screening, higher plant systems could be accepted by regulatory authorities as an alternative first-tier assay system for the detection of possible genetic damages resulting from the pollutants or chemicals used and produced by industrial sectors. It has been concluded that potential mutagen and carcinogen such as the heavy metals among indoor air particulates, volatile compounds in the working places, soil, and water pollutants contribute to the overall health risk. This contribution can be considerable under certain circumstances. It is therefore important to identify the level of genotoxic activity in the environment and to relate it to the biomarkers of a health risk in humans. The results from the higher plant bioassays could make a significant contribution to assessing the risks of pollutants and protecting the public from agents that can cause mutation and/or cancer. The plant bioassays, which are relatively inexpensive and easy to handle, are recommended for the scientists who are interested in monitoring pollutants and evaluating their environmental toxicity to living organisms.
Higher plants can be valuable genetic assay systems for monitoring environmental pollutants and evaluating their biological toxicity. Two assays are considered ideal for in situ monitoring and testing of soil, airborne and aqueous mutagenic agents; the Tradescantia stamen hair assay for somatic cell mutations and the Tradescantia micronucleus assay for chromosome aberrations. Both assays can be used for in vivo and in vitro testing of mutagens. Since higher plant systems are now recognized as excellent indicators and have unique advantages over in situ monitoring and screening, higher plant systems could be accepted by regulatory authorities as an alternative first-tier assay system for the detection of possible genetic damages resulting from the pollutants or chemicals used and produced by industrial sectors. It has been concluded that potential mutagen and carcinogen such as the heavy metals among indoor air particulates, volatile compounds in the working places, soil, and water pollutants contribute to the overall health risk. This contribution can be considerable under certain circumstances. It is therefore important to identify the level of genotoxic activity in the environment and to relate it to the biomarkers of a health risk in humans. The results from the higher plant bioassays could make a significant contribution to assessing the risks of pollutants and protecting the public firom agents that can cause mutation anuor cancer. The plant bioassays, which are relatively inexpensive and easy to handle, are recommended for the scientists who are interested in monitoring pollutants and evaluating their environmental toxicity to living organisms.
Park, Jong-Lyul;Kim, Seon-Kyu;Kim, Jeong-Hwan;Yun, Seok Joong;Kim, Wun-Jae;Kim, Won Tae;Jeong, Pildu;Kang, Ho Won;Kim, Seon-Young
Genomics & Informatics
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제16권3호
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pp.71-74
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2018
Because castration-resistant prostate cancer (CRPC) does not respond to androgen deprivation therapy and has a very poor prognosis, it is critical to identify a prognostic indicator for predicting high-risk patients who will develop CRPC. Here, we report a dataset of whole genomes from four pairs of primary prostate cancer (PC) and CRPC samples. The analysis of the paired PC and CRPC samples in the whole-genome data showed that the average number of somatic mutations per patients was 7,927 in CRPC tissues compared with primary PC tissues (range, 1,691 to 21,705). Our whole-genome sequencing data of primary PC and CRPC may be useful for understanding the genomic changes and molecular mechanisms that occur during the progression from PC to CRPC.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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