Park, Yeo-Reum;Park, Hye-Bin;Kim, Mi-Jeong;Jung, Bae-Dong;Lee, Seunghyung;Park, Choon-Keun;Cheong, Hee-Tae
Development and Reproduction
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v.23
no.1
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pp.43-54
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2019
We examined the effects of endoplasmic reticulum (ER) stress inhibitor treatment during the micromanipulation of porcine somatic cell nuclear transfer (SCNT) on the in vitro development of SCNT embryos. ER stress inhibitors such as salubrinal (200 nM) and tauroursodeoxycholic acid (TUDCA; $100{\mu}M$) were added to the micromanipulation medium and holding medium. The expression of X-box binding protein 1 (Xbp1), ER-stress-associated genes, and apoptotic genes in SCNT embryos was confirmed at the one-cell and blastocyst stages. Levels of Xbp1 splicing and expression of ER-stress-associated genes in SCNT embryos at the one-cell stage decreased significantly with TUDCA treatment (p<0.05). The expression of ER-stress-associated genes also decreased slightly with the addition of both salubrinal and TUDCA (Sal+TUD). The expression levels of caspase-3 and Bcl2-associated X protein (Bax) mRNA were also significantly lower in the TUDCA and Sal+TUD treatments (p<0.05). At the blastocyst stage, there were no differences in levels of Xbp1 splicing, and transcription of ER-stress-associated genes and apoptosis genes between control and treatment groups. However, the blastocyst formation rate (20.2%) and mean blastocyst cell number ($63.0{\pm}7.2$) were significantly higher (p<0.05) for embryos in the TUDCA treatment compared with those for control (12.6% and $41.7{\pm}3.1$, respectively). These results indicate that the addition of ER-stress inhibitors, especially TUDCA, during micromanipulation can inhibit cellular damage and enhance in vitro development of SCNT embryos by reducing stress levels in the ER.
The objective of this study was to examine the reproductive characteristics of cloned miniature piglets produced from surrogate domestic pigs. Somatic cell nuclear transfer (SCNT) miniature pig embryos were transferred into domestic pigs. As controls, domestic pigs of the same breed with surrogates for SCNT embryos and miniature pigs of the same breed with the somatic cell donor were bred by artificial insemination and natural mating, respectively. Surrogate domestic pigs that farrowed cloned miniature piglets had a significantly longer gestation length (118.1 days) than conventionally bred domestic (115.4 days) and miniature (115.5 days) pigs. Furthermore, the birth weight of cloned miniature piglets produced from domestic pigs (743 g) was significantly greater than that of miniature piglets produced by natural breeding (623 g). Also, cloned miniature piglets had a significantly lower weaning rate (49.7%) than conventionally produced domestic (91.5%) and miniature (100%) piglets. No differences were observed between female and male cloned piglets in gestation length, litter size, birth weight, or weaning rate. Our results demonstrate that gestation length is extended in domestic pigs that are transferred with SCNT miniature pig embryos and that cloned miniature piglets have increased birth weight and high pre-weaning mortality.
This study was carried out to investigate effective condition for producing somatic cell nuclear transfer (SCNT) embryos of Jeju native cattle. As donor cells for SCNT, ear skin cells from Jeju native cattle were used. In experiment 1, the effect of recipient oocyte sources on the development of Jeju native cattle SCNT embryos were examined. Fusion rate of recipient oocyte and donor cell was not different between the Hanwoo and Holstein recipient oocytes (86.0% vs 89.9%). The rate of embryos developing to the blastocyst stage was significantly (p<0.05) higher in Hanwoo recipient oocytes than in Holstein recipient ones (28.2% vs 14.7%). Blastocysts derived from Hanwoo recipient oocytes contained higher numbers of total cells than those derived from Holstein ones ($115.1{\pm}40.8$ vs $101.4{\pm}33.3$), although there were no significant difference. The mean proportion of apoptotic cells in blastocyst was not different between the sources of recipient oocytes. In experiment 2, the development of Jeju native cattle and Hanwoo SCNT embryos were compared. Hanwoo oocytes were used as the recipient oocytes. Fusion rate was not different between the Jeju native cattle and Hanwoo SCNT embryos (92.1% vs 92.9%). The blastocyst rate of SCNT embryos was significantly (p<0.05) lower in Jeju native cattle than in Hanwoo (16.9% vs 31.0%). Blastocysts derived from Jeju native cattle SCNT embryos contained smaller numbers of total cells than those derived from Hanwoo ones ($136.6{\pm}33.7$ vs $149.9{\pm}39.7$), but there were no significant difference. The mean proportion of apoptotic cells in blastocyst was not different between the Jeju native cattle and Hanwoo SCNT embryos. The present study demonstrated that Hanwoo recipient oocytes were more effective in supporting production of Jeju native cattle SCNT embryos, although Jeju native cattle SCNT embryos showed reduced developmental capacity when compared to Hanwoo SCNT embryos.
Background: Compared to medium containing 108 mM sodium chloride (NaCl), in vitro maturation (IVM) using a simple medium with reduced (61.6 mM) NaCl increases the cytoplasmic maturation and embryonic development of pig oocytes. Objectives: This study determines the effect of a complex medium containing reduced NaCl on the IVM and embryonic development of pig oocytes. Methods: Pig oocytes were matured in Minimum Essential Medium Eagle-alpha modification (αMEM) supplemented with 61.6 (61αMEM) or 108 (108αMEM) mM NaCl, and containing polyvinyl alcohol (PVA) (αMEMP) or pig follicular fluid (PFF) (αMEMF). Medium-199 (M199) served as the control for conventional IVM. Cumulus cell expansion, nuclear maturation, intra-oocyte glutathione (GSH) contents, size of perivitelline space (PVS), and embryonic development after parthenogenesis (PA) and somatic cell nuclear transfer (SCNT) were evaluated after IVM. Results: Regardless of PVA or PFF supplementation, oocytes matured in 61αMEM showed increased intra-oocyte GSH contents and width of PVS (p < 0.05), as well as increased blastocyst formation (p < 0.05) after PA and SCNT, as compared to oocytes matured in 108αMEMP and M199. Under conditions of PFF-enriched αMEM, SCNT oocytes matured in 61αMEMF showed higher blastocyst formation (p < 0.05), compared to maturation in 108αMEMF and M199, whereas PA cultured oocytes showed no significant difference. Conclusions: IVM in αMEM supplemented with reduced NaCl (61.6 mM) enhances the embryonic developmental competence subsequent to PA and SCNT, which attributes toward improved oocyte maturation.
Jin Saem Lee;Jeoung Eun Lee;Shin-Hye Yu;Taehoon Chun;Mi-Yoon Chang;Dong Ryul Lee;Chang-Hwan Park
International Journal of Stem Cells
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v.17
no.1
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pp.59-69
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2024
Human pluripotent stem cells (hPSCs) such as human embryonic stem cells (hESCs), induced pluripotent stem cells, and somatic cell nuclear transfer (SCNT)-hESCs can permanently self-renew while maintaining their capacity to differentiate into any type of somatic cells, thereby serving as an important cell source for cell therapy. However, there are persistent challenges in the application of hPSCs in clinical trials, where one of the most significant is graft rejection by the patient immune system in response to human leukocyte antigen (HLA) mismatch when transplants are obtained from an allogeneic (non-self) cell source. Homozygous SCNT-hESCs (homo-SCNT-hESCs) were used to simplify the clinical application and to reduce HLA mismatch. Here, we present a xeno-free protocol that confirms the efficient generation of neural precursor cells in hPSCs and also the differentiation of dopaminergic neurons. Additionally, there was no difference when comparing the HLA expression patterns of hESC, homo-SCNT-hESCs and hetero-SCNT-hESCs. We propose that there are no differences in the differentiation capacity and HLA expression among hPSCs that can be cultured in vitro. Thus, it is expected that homo-SCNT-hESCs will possess a wider range of applications when transplanted with neural precursor cells in the context of clinical trials.
In general, cloned pigs have been produced using the somatic cell nuclear transfer (SCNT) technique with various types of somatic cells; however, the SCNT technique has disadvantages not only in its low efficiency but also in the development of abnormal clones. This study aimed to compare early embryonic development and quality of SCNT embryos with those of induced pluripotent stem cells (iPSCs) NT embryos (iPSC-NTs). Ear fibroblast cells were used as donor cells and iPSCs were generated from these cells by lentiviral transduction with human six factors (Oct4, Sox2, c-Myc, Nanog, Klf4 and Lin28). Blastocyst formation rate in iPSC-NT (23/258, 8.9%) was significantly lower than that in SCNT (46/175, 26.3%; p < 0.05). Total cell number in blastocysts was similar between two groups, but blastocysts in iPSC-NT had a lower number of apoptotic cells than in SCNT (2.0 ± 0.6 vs. 9.8 ± 2.9, p < 0.05). Quantitative PCR data showed that apoptosis-related genes (bax, caspase-3, and caspase-9) were highly expressed in SCNT than iPSC-NT (p < 0.05). Although an early development rate was low in iPSC-NT, the quality of cloned embryos from porcine iPSC was higher than that of embryos from somatic cells. Therefore, porcine iPSCs could be used as a preferable cell source to create a clone or transgenic animals by using the NT technique.
We investigate the effect of L-glutathione (GSH), an antioxidant, treatment during the somatic cell nuclear transfer (SCNT) procedures on the in vitro development and DNA methylation status of bovine SCNT embryos. Bovine in vitro matured (IVM) oocytes were enucleated and electrofused with a donor cell, then activated by a combination of Ca-ionophore and 6-dimethylaminopurine. The recipient oocytes or reconstituted oocytes were treated with $50{\mu}M$ GSH during these SCNT procedures from enucleation to activation treatment. The SCNT embryos were cultured for 7 days to evaluate the in vitro development, apoptosis and DNA methylation in blastocysts. The apoptosis was measured by TUNEL assay and caspase-3 activity assay. Methylated DNA of SCNT embryos at the blastocyst stages was detected using a 5-methylcytidine (5-MeC) antibody. The developmental rate to the blastocyst stage was significantly higher (P<0.05) in GSH treatment group ($32.5{\pm}1.2%$, 78/235) than that of non-treated control SCNT embryos ($22.3{\pm}1.8%$, 50/224). TUNEL assay revealed that the numbers of apoptotic cells in GSH treatment group ($2.3{\pm}0.4%$) were significantly lower (P<0.05) than that of control ($3.8{\pm}0.6%$). Relative caspase-3 activity of GSH treated group was $0.8{\pm}0.06$ fold compared to that of control. DNA methylation status of blastocysts in GSH treatment group ($13.1{\pm}0.5$, pixels/embryo) was significantly lower (P<0.05) than that of control ($17.4{\pm}0.9$, pixels/embryo). These results suggest that antioxidant GSH treatment during SCNT procedures can improve the embryonic development and reduce the apoptosis and DNA methylation level of bovine SCNT embryos, which may enhance the nuclear reprogramming of bovine SCNT embryos.
Our goal was to examine the effects of early denudation on the enucleation efficiency and developmental competence of embryos following somatic cell nuclear transfer (SCNT) and parthenogenetic activation (PA). Oocytes were denuded following 30 h of in vitro maturation (IVM) and then cultured with (D+) or without (D-) their detached cumulus cells for additional $10{\sim}14$ h. Control oocytes were denuded after $40{\sim}44$ h of IVM. The size of the perivitelline space was larger at 40 h of IVM ($11.7{\sim}11.8{\mu}m$) than at 30 h ($8.9{\mu}m;$ p<0.01). The distances between the metaphase II (M II) plates and the polar bodies (PBs) were shorter in D+ ($19.4{\mu}m$) and D- oocytes ($18.9{\mu}m$) than in control oocytes ($25.5{\mu}m;$ p<0.01). Enucleation rates following blind aspiration at 40 h of IVM were higher (p<0.01) in D+ (92%) and D- oocytes (93%) compared to controls (82%). Early denudation did not affect oocyte maturation or the in vitro development of SCNT and PA embryos. When SCNT embryos from D+ oocytes were transferred to four gilts, pregnancy was established in two pigs, and one of them farrowed three live piglets. In conclusion, early denudation of oocytes at 30 h of IVM could improve the enucleation efficiency by maintaining the M II plate and the PB within close proximity and support the in vivo development of SCNT embryos to term.
Mesenchymal stem cells (MSCs) have been widely used as donor cells for somatic cell nuclear transfer (SCNT) to increase the efficiency of embryo cloning. Since replicative senescence reduces the efficiency of embryo cloning in MSCs during in vitro expansion, transfection of telomerase reverse transcriptase (TERT) into MSCs has been used to suppress the replicative senescence. Here, TERT-transfected MSCs in comparison with early passage MSCs (eMSCs) and sham-transfected MSCs (sMSCs) were used to evaluate the effects of embryo cloning with SCNT in a porcine model. Cloned embryos from tMSC, eMSC, and sMSC groups were indistinguishable in their fusion rate, cleavage rate, total cell number, and gene expression levels of OCT4, SOX2 and NANOG during the blastocyst stage. The blastocyst formation rates of tMSC and sMSC groups were comparable but significantly lower than that of the eMSC group (p < 0.05). In contrast, tMSC and eMSC groups demonstrated significantly reduced apoptotic incidence (p < 0.05), and decreased BAX but increased BCL2 expression in the blastocyst stage compared to the sMSC group (p < 0.05). Therefore, MSCs transfected with telomerase reverse transcriptase do not affect the overall development of the cloned embryos in porcine SCNT, but enables to maintain embryo quality, similar to apoptotic events in SCNT embryos typically achieved by an early passage MSC. This finding offers a bioengineering strategy in improving the porcine cloned embryo quality.
Lee, Eun Ji;Ji, Kuk Bin;Lee, Ji Hye;Oh, Hyun Ju;Kil, Tae Young;Kim, Min Kyu
Journal of Animal Science and Technology
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v.63
no.2
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pp.281-294
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2021
Although somatic cell nuclear transfer (SCNT) is frequently employed to produce cloned animals in laboratories, this technique is expensive and inefficient. Therefore, the handmade cloning (HMC) technique has been suggested to simplify and advance the cloning process, however, HMC wastes many oocytes and leads to mitochondrial heteroplasmy. To solve these problems, we propose a modified handmade cloning (mHMC) technique that uses simple laboratory equipment, i.e., a Pasteur pipette and an alcohol lamp, applying it to porcine embryo cloning. To validate the application of mHMC to pig cloning, embryos produced through SCNT and mHMC are compared using multiple methods, such as enucleation efficiency, oxidative stress, embryo developmental competence, and gene expression. The results show no significant differences between techniques except in the enucleation efficiency. The 8-cell and 16-cell embryo developmental competence and Oct4 expression levels exhibit significant differences. However, the blastocyst rate is not significantly different between mHMC and SCNT. This study verifies that cloned embryos derived from the two techniques exhibit similar generation and developmental competence. Thus, we suggest that mHMC could replace SCNT for simpler and cheaper porcine cloning.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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