Ganglioside GM3 and sialidase activities in human fetal liver have been investigated. Gangliosides were extracted from fetal livers by the Folch-Suzuki method and analyzed by high-performance thin layer chromatography (HPTLC). GM3 increased, but lactosylceramide (LacCer) decreased predominantly over the developmental stages. Sialidase in human fetal liver was mainly localized in the lysosomal fraction and its activity was high in the earlier stages of development. The optimum pH for this enzyme was 4.3~4.4. Sialidase was more active with the ganglioside mixture than with GM3, sialyllactose or fetuin. Fetal liver sialidase was still active (20% activity) in the presence of 25% methanol. These results suggested that the changes of the ganglioside GM3 and sialidase activity may be involved in the regulation of cell growth in human fetal liver during development.
Sialytrisaccharides based on $\beta$-galactosyldisaccharides were synthesized using $\beta$-galactosidase and trans-sialidase in one pot. Using $\beta$-galactosidase from Bacillus Ciculans and trans-sialidase from Trypanosoma cruzi simulaneously, 6mM sialyltrisaccharides composed of about 95% NeuAc$\alpha$(2,3)Gal$\beta$(1,4)GlcNAc and 5% NeuAc$\alpha$(2,3)Gal$\beta$(1,6)GlcNAc were produced from a reaction mixture containing 25mM o-nitropheny1-$\beta$-D-galsctolneuraminic acid. One beauty of this reaction was that a secondary hydrolysis of the disaccharide intermediate occurring between the activated galactopyranoside and N-acetylgucosamine was prevented. Using $\beta$-galactosidase from Escherichia cloi and the same trans-sialidase, 15mM sialyltrisaccharides composed of about 90% NeuAc$\alpha$(2,3)Gal$\beta$(1,6)GlcNac and 10% NeuAc$\alpha$(2,3)Gal$\beta$(1,4)GlcNAc were produced from a reaction misture containing 400nM galactose, 800nM N-acetylglucosylation rection between galactose and N-actylgucosamine was diminant since the disaccharide intermediate mainly resulted sreulted in the silylated product.
HA KI-TAE;CHO SEUNG-HAK;KANG SUNG-KOO;KIM YEON-KYE;KIM JUNE-KI;KIM CHEORL-HO
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.15
no.4
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pp.722-727
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2005
Cytosolic sialidase (Neu2), a member of the sialidase family that is responsible for hydrolysis of sialic acid from the terminal position of sialoglycoconjugates, is poorly expressed in skeletal muscle and not detected in any other adult tissues. Thus, we isolated Neu2 cDNA using splicing by overlap extension (SOEing). In order to further characterize this enzyme, a His-tagged derivative was expressed in the bacterial expression system and purified by $Ni^{2+}$-affinity chromatography. A recombinant product of approximately 42 kDa had sialidase activity toward 4-methyl-umbelliferyl-$\alpha$-D-N-acetylneuraminic acid (4MU-NeuAc). The optimal pH and temperature of the recombinant Neu2 for 4MU-NeuAc was 6.0 and $37.5^{\circ}C$, respectively. The metal ions, such as $Cu^{2+}\;and\;Cd^{2+}$, showed strong inhibitory effect on the activity of the enzyme. The enzyme efficiently hydrolyzed the gangliosides GM3 and GD3 and had relatively low activities on ganglioside GD1a and GD1b, $\alpha$2-3 sialyllactose, and sialylated glycoproteins such as fetuin, transferrin, and orsomucoid, but had hardly any activities on $\alpha$2-6 sialyllactose and ganglioside GM1 and GM2. We concluded that the recombinant Neu2 has a sialidase activity toward glycoproteins as well as gangliosides.
In glycoprotein, Terminal sialic acid residues of N-linked glycan are imperative things because they prevent the recognition from asialoglycoprotein-receptor that affect the half-life of glycoproteins. So establishment of culture process for enhancing sialic acid is important to maximize sialic acid contents of glycoprotein. In this study, we investigated effects of biphasic culture of Chinese hamster ovary (CHO) cells producing albumin-erythropoietin to increase sialylation. Biphasic cultures were performed with shift of $CO_2$ concentrations and temperatures at day 5 when viable cell density was decreased and sialidase was started to be released by cell lysis. The examined temperature set points were 33, 35 and $37^{\circ}C$ respectively and the $CO_2$ concentration was 1, 5, 10 and 15%. We confirmed that sialidase activity was the lowest in biphasic culture that was shifted from normal culture condition to 1% of $CO_2$ and $33^{\circ}C$ on day 5. However, the temperature and concentration of $CO_2$ have little effect on activity of ${\alpha}2,3$-sialyltransferase. Also, sialic acid contents were enhanced 1.13-fold higher than that in control culture. In conclusion, Biphasic cultivation in CHO cells led to inhibition of sialidase activity and increases of sialylated glycan.
The infection of pandemic influenza viruses such as swine flu (H1N1) and avian flu viruses to the host cells is related to the following two factors: First, the surface protein such as HA (hemagglutinin) and NA (neuraminidase) of the influenza virus. Second, the specific structure of the oligosaccharide [sialic acid(${\alpha}2$-6) galactose(${\beta}1$-4)glucose or sialic acid(${\alpha}2$-3)galactose(${\beta}1$-4)glucose] on the host cell. After recognizing the specific structure of the oligosaccharide on the surface of host cells by the surface protein of the influenza virus, the influenza virus can secrete sialidase and cleave the sialic acid attached on the final position of the specific structure of the oligosaccharide on the surface of host cells. Tamiflu (oseltamivir), known as a remedy of swine flu, has a saccharide analog structure, especially the sialic acid analog. Tamiflu can inhibit the invasion of influenza viruses (swine flu and avian flu viruses) into the host cells by competition with sialic acid on the terminal position of the specific oligosaccharide on the surface of the host cell. Because of the emergence of Tamiflu resistance, the development of new potent anti-influenza inhibitors is needed. The inhibitors with positive-charge groups have potential as antiviral therapeutics, and the strain specificity must also be resolved.
The cDNA encoding human NeuAc ${\alpha}$2,3Gal$\beta$ 1,3GalNAc GalNac ${\alpha}$2,6-Sialyltransferase (hST6GalNac IV) was isolated by screening of human fetal liver cDNA library with a DNA probe generated from the cDNA sequence of mouse ST6Gal NAc IV (mkST6GalNAc IV). The cDNA sequence included an open reading frame coding for 302 amino acids, and comparative analysis of this cDNA with mST6GalNAc IV showed that each sequence of the predicted coding region contains 88% and 85% identifies in nucleotide and amino acid levels, respecively. The primary structure of this enzyme suggested a putative domain structure, like that in other glycosyltransferases, consisting of a short N-terminal cytoplamic domain, a transmembrane domain and a large C-terminal active domain. This enzyme expressed in COS-7 cells echibited transferase activity toward NeuAc ${\alpha}$2,3Gal$\beta$ 1,3GalNAc, fetuin and GM1b, although the activity toward the later is very low, no significant activity being detected toward Gal${\beta}$ 1,3Gal NAc or asialofetuin, the other glycoprotein substrates tested. The $^{14}$ C-sialylated residue of fetuin sialylated by this enzyem with CMP-[$^{14}$C]NeuAc was sensitive to treatment with ${\alpha}$2,8-specific sialidase of Vibrio cholerae but resistant to treatment with ${\alpha}$2,3-specific sialidase (NaNase I), and ${\alpha}$2,3- and ${\alpha}$2,8-specific sialidase of Newcastle disease virus. These results clearly indicated that the expressed enzyme is a type of GalNAc ${\alpha}$2,6-sialyltransferase like mST6GalNAc IV, which requires sialic acid residues linked to Gal${\beta}$1,3GalNAc-residues for its activity.
A library of unlimited number of novel lectins with diverse specificities has been previously generated by randomly mutating the carbohydrate-recognition domain of Maackia amurensis hemagglutinin (MAH). To establish the experimental environment capable of selecting high affinity mutant lectins in E. coli, phage display system was adapted. Carbohydrate binding capacity of two phagemid vectors, pComb3 and pComb8 displaying wild-type MAH lectin was assessed. Specific bindings of pComb3 and pComb8 phages expressing w.t. MAH to affinity-purified polyclonal anti-MAH antibody and to glycophorin was demonstrated. Both phages also showed strong hemagglutinating activity to intact but not sialidase-treated human erythrocytes, which is consistent to the specificity of native MAH. Taken together, two different phage display vectors successfully allowed the expression of active MAH as a fusion protein on the surface of bacteriophage, which will lead to preparation of unique plant lectins with high affinity toward a variety of carbohydrate chains.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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