This experiment was carried out to establish micropropagation system in Fritillaria thunbergii Miq. Through the culture of bulblet scales, stems, node-buds and shoot tips with special reference to the effect of physiological age of explant and plant growth regulators on bulblet formation. Number of formed bulblets was significantly increased in node-bud or stem tissue compared to scals segments and on the medium supplemented with kinetin than BA containing medium. Optimum levels of kinetin for bulblet formation from node-bud taken from above 3 cm shoot length and stem segments excised from below 3 cm shoot length were 5.0 mg /L and $1.0{\sim}3.0\;mg$ /L kinetin, respectively. Interesting phenomenon was observed, the direct formation of bulblets from the axilliary bud of cultured explants. Bulblet forming capacity in stem tissue was depended on stem age, young stem had high regeneration ability compared to old stem taken from above 10 cm shoot length. 1.0 mg /L kinetin was optimum concentration for the formation of bulblets from old stem segments. Stem tissue taken from underground growing plant was promoted coampare to shoot tips or bulb scale segments. Optimum concentration of sucrose was $5{\sim}7%$. Summariged above results revealed that effective explant for micropropagation was stem and /or node-bud tissue excised from less than 3 cm plant height compared to those of bulb scale segments which showed high contamination after culture. Maximum multiplication rate of young stem and /or node-bud segment was about 20 times. Kinetin requirement for stimulation of bulblet formation from cultured explant depended on source of explants but favorable levels of kinetin for organogenesis ranged from 1.0 mg /L to 5.0 mg /L.
To investigate the cucumber regeneration from embryogenic calli, shoot tips of aseptically-grown cucumber seedlings were used as explants for establishing tissue cultures. Growth and differentiation of callus were studied by using Murashige and Skoog's (MS) medium containing 0.5 to 2 mg/L 2,4-D. Plantlets were induced from shoot tip culture on the plant growth regulators-free MS medium. Non-embryogenic calli and viscous calli were induced on the medium supplemented with 0.5 to 2 mg/L 2,4-D, but embryogenic callus was not induced on the same medium. Segments (ca. 5∼10 mm) of aseptically-grown hypocotyl from five to seven days old seedlings after germination were placed on MS medium supplemented with 1 mg/L 2,4-D for 50 days. Embryogenic calli and embryoids were induced only from the seedlings grown in dark condition, and hypocotyl was placed on the media explanted in light condition. Foully-five point one percent of white fragile calli and 0.6% yellowish compact calli formed roots. Yellowish callus lines were investigated to have a considerably higher concentration of crude proteins than white callus lines. Plantlets derived from embryogenic calli or embryoids have been transferred to pots containing sterile vermiculite and perlite. Normal fruits were harvested from nutrient culture on aggregated hydroponics in the F-clean house.
This study was carried out to investigate the effect of thidiazuron(TDZ) on callus and shoot primordia formation, to determine the most optimum multiple shoot induction medium, and to obtain the plantlets on solid medium via shoot organogenesis. TDZ 0.01 mg/L in MS medium was most effective on callus formation, and BA 0.1 mg/L was most effective on shoot growth, while TDZ 0.01 mg/L was most effective on callus formation. TDZ 0.001 mg/L was most effective in shoot primordia formation. Shoot tips were cultured with TDZ 0.01 mg/L for 8 weeks and induced callus was transferred to regeneration medium containing TDZ 0.001 mg/L. After 4 weeks induced shoot primordia were resubcultured at growth regulator-free medium for 4 weeks. The induced multiple shoots rooted more efficiently at NAA 1.0, 5.0 mg/L, or IBA 5.0 mg/L.
Proceedings of the Plant Resources Society of Korea Conference
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2021.04a
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pp.36-36
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2021
Cryopreservation has been broadly used as an efficient method for a long-term conservation for many types of plants especially vegetatively propagated plants. Among several cryopreservation methods, a droplet-vitrification was the most widely applicable and efficient method. Studies have developed protocols for strawberry using droplet-vitrification method and suggested the practical use of the protocol for large number of germplasm with a little modification. In this study, the droplet vitrification method of shoot tip has been tested on 31 accessions provided around the world. Shoot tips were precultured on Murashige and Skoog (MS) liquid medium supplemented with 0.3~0.5M sucrose. Precultured explants were osmoprotected with loading solution, 35% of PVS3 (C4, 17.5% glycerol and 17.5% sucrose) for 40 min and exposed to dehydration solution, PVS3 (B1, 50% glycerol and 50% sucrose) for 60 min. Then, the explants were transferred onto droplets containing 2.5 uL PVS3 on sterilized aluminum foils prior to direct immersion in liquid nitrogen (LN) for 1hr. The cryopreserved shoot tips were rapidly warmed in a water bath at 40C and then unloaded in MS with 0.8M sucrose for 40 min. The shoot tips were cultured in NH4NO3-free MS post culture medium for 2 weeks. Subsequently, the explants were moved to the MS medium for 6 weeks and evaluated the regrowth rate. By this droplet-vitrification protocol, twenty-four accessions showed at least 40% regrowth rate. Out of 24 accessions, 'Nonsan1ho' had the highest regeneration rate of 85.8% and 'Jumbo pureberry' had the lowest with 42.1%.
In vitro grown microtubers of potato (cv Jaju) were used for introduction of herbicide resistance gene using bombardment with DNA-coated particles. The apical shoot-tip area of newly sprouted microtubers were intensively bombarded. After bombardment, microtubers were germinated and transplanted in a greenhouse. Northern blot analysis indicated that bar gene was expressed in two plantlets. After 5 weeks of growing, commercial herbicide Basta was sprayed to screen the resistant plants. All untransformed potato plants died after 7 days while two transgenic plants survived.
Proceedings of the Korean Society of Plant Biotechnology Conference
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2005.11a
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pp.88-94
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2005
Plant tissue culture studies have been done for the preservation of medicinal plant resources and efficient production of pharmaceutically important secondary metabolites. Micropropagation methods for Cephaelis ipecacuanha have been established and these methods enabled much more efficient propagation of the plants than the conventional methods using seedling or layering. The C. ipecacuanha plants derived from tissue culture grew uniformly in the field and they showed higher alkaloid contents compared to the plants grown from seedlings. Hairy root cultures of C. ipecacuanha and Panax ginseng have been established by infection with Agrobacterium rhizogenes, and the production of important pharmaceuticals by these cultures have been successfully demonstrated. In the case of C. ipecacuanha, the highest alkaloid yields from the hairy roots cultured for 8 weeks were 2.75-fold cephaeline (5.5 mg) and one third emetine (0.7 mg) compared with those from the roots of one-year old plant propagated through shoot-tip culture and cultivated in a greenhouse (2.0 mg cephaeline and 2.0 mg emetine). In the case of P. ginseng, ginsenoside contents in the hairy roots optimally cultured for 4 weeks were much higher than those in the roots of 4-year old field-grown plant. Thus our medicinal plant tissue cultures demonstrate desirable properties. However, they are always exposed to danger of microbial contamination or unexpected trouble of culture facilities. Cryopreservation of plant tissue cultures is a reliable method for long-term preservation. Cryopreservation studies on these cultures are also presented.
To establish the mass propagation system of Lavandula spica cv. Marino, shoot tip, node, internode and leaf segment cultures were carried out. RAPD was applied to detect the somaclonal variation. Callus induction was very high in the medium supplemented with 1 mg/l 2.4-D, 2 mg/l NAA. especially and combined with 0.05 mg/l BAP from leaves. Shoot formation was high with $2{\sim}4\;mg/l$ BAP or 4 mg/l BAP + 0.2 mg/l NAA from shoot tip. Shoot proliferation was 9.1 times in the $B_{5}$ medium with 0.5 mg/l BAP and 0.01 mg/l NAA. Root formation was improved in NAA, which was the concentration of 0.1 to 1 mg/l and 1 mg/l IAA. Nursery survival rate was enhanced over 90% and growth was looked good in the acclimation soil consisting of peatmoss : vermiculite : perlite (1:1:1, v:v:v). Randomly amplified polymorphic DNA banding patterns based on polymerase chain reaction (PCR) were used to assess the genetic variation in plants regenerated from in vitro culture.
Cho, Kang Hee;Shin, Juhee;Kim, Dae-Hyun;Park, Seo Jun;Kim, Se Hee;Chun, Jae An;Kim, Mi Young;Han, Jeom Hwa;Lee, Han Chan
Journal of Plant Biotechnology
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v.43
no.3
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pp.391-396
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2016
In this study, in vitro-cultured 'Mansoo' pear (Pyrus pyrifolia L.) plants infected with Apple stem grooving virus (ASGV) were used for testing the efficiency of the virus elimination methods. The shoot tips cut from infected plants were treated by thermotherapy ($37^{\circ}C$), cold therapy ($4^{\circ}C$), chemotherapy with ribavirin, and combination of these methods. Treatment periods were 2, 4, and 8 weeks, and concentrations of ribavirin were 20 and $40mg{\cdot}L^{-1}$. The efficiency of ASGV elimination was evaluated by reverse transcription polymerase chain reaction. The shoot survival rate was the highest at 100% after cold therapy, chemotherapy, and combination of two methods, while the rate was the lowest at 33.3% after thermotherapy for 2 weeks. The shoot survival rate after chemotherapy decreased gradually as the treatment period was prolonged. The ASGV elimination rate was the highest at 100% after ribavirin treatment at a concentration of $40mg{\cdot}L^{-1}$ and combination of ribavirin treatment and thermotherapy for 2 weeks, whereas the ASGV elimination rate after cold therapy was the lowest at 16.7%. However, the efficiency of ASGV elimination was enhanced up to 43.3% by the combination of cold therapy and ribavirin treatment. The efficiency of ASGV elimination for all treatments was increased as the treatment period was prolonged. Based on these results, we suggest that ribavirin treatment at a concentration of $20mg{\cdot}L^{-1}$ for 4 weeks or at a concentration of $40mg{\cdot}L^{-1}$ for 2 weeks combined with shoot tip culture was efficient for the elimination of ASGV from pear.
This experiment was conducted to propagate Zantedeschia spp. in vitro. The frequency of adventitious bud clusters (ABC) formation from shoot tips in Z. 'Best Gold' was high at more than 65% on media with 2.0∼5.0 mg/L BA or 0.1∼1.0 mg/L thidiazuron. The highest formation rate of ABC (75%) was obtained on medium containing 2.0 mg/L BA. Comparing to treatment of BA alone, combined one of BA and NAA did not stimulate the formation of ABC and the shoot regeneration from shoot tips. The proliferation of ABC from sections (0.7∼1.0 cm) of ABC occurred effective on medium with 2.0 mg/L BA. Shoots developed from the sections (0.7∼1.0 cm) of ABC grew and rooted favorably on media containing 1.0∼2,0 mg/L IBA. The shoots were multiplicated effectively on medium with 0.5 mg/L thidiazuron in Z. 'Childsiana', on medium with 3.0 mg/L BA in 2. 'Golden Affair', and on medium with 5.0∼10.0 mg/L BA in Z. 'Pacific Pink'.
Experiments were conducted to find out the optimum condition for in vitro proliferation using shoot tip of Gypsophila paniculata. Formation and fresh weight of adventitious shoots were promoted by shoot culture with $0.2mg{\cdot}L^{-1}$ BA and $0.2mg{\cdot}L^{-1}$ NAA in 'Bristol Fairy', while were promoted with $0.2mg{\cdot}L^{-1}$ BA and $0.1mg{\cdot}L^{-1}$ NAA in 'Red Sea'. Vitrification was suppressed by using $7{\times}13cm $$(diameter{\times}height)$ vessel. Aeration treatment on cap and agar concentration did not affect vitrification, but promoted the elongation of adventitious shoots. Formation of adventitious shoot was inhibited by increasing agar concentration in the medium.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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