The dinoflagellates have some primitive nuclear features and are evolutionarily intermediate between prokaryotes and eukaryotes. The small subunit ribosomal RAN gene, the 5.8S ribosomal RNA gene, and the internal transcribed spacer (ITS) of Gonyaulax polyedra were cloned, and their sequences were analyzed to better understand their evolutionary position. The small subunit ribosomal RNA gene was 1,794 nt long, the large subunit ribosomal RNA gene was approximately 3,500 nt long, and the 5.8S ribosomal RNA gene was 159 nt long. The first internal transcribed spacer (ITS1) was 191 nt long, and the second internal transcribed spacer (ITS2) was 185 nt long. The intergenic spacer of the ribosomal RNA gene (IGS) was about 2,200 nt long, indicating that 5,800 nt of transcribed sequences were separated by roughly 2,200 nt of intergenic spacer. The ribosomal RNA genes were repeated many times and arranged in a head-to-tail, tandemly repeated manner. The repeating unit of ribosomal RNA gene of G. polyedra was proposed to be 8,000 nt long. Based on the lengths of ribosomal RNA, sequence alignments with representative organisms, and phylogenetic analysis on ribosomal RNA, G. polyedra appears to be one of the alveolates branched from the eukaryotic crown and, among dinoflagellates, it seems to not have emerged early.
In order to study the effect of GA3 on the phosphorylation of ribosomal proteins during germination in Zea mays, ribosomal proteins were labelled with 32P, extracted, electrophoresed and autoradiographed. There are five phosphorylated ribosomal proteins. One of these is in 40S subunit and has molecular weight of 33,000 daltons. Others are in 60S subunit and have molecular weights of 37,000, 16,000, 15,200 and 13,500, respectively. Phosphorylation of ribosomal proteins was increased maximum 47.7% in shoots of Zea mays treated with GA3.
Genetic relatedness of medically important Exophiala species such as E. dermatitidis, E. mansonii, and three E. jeanselmei varieties: jeanselmei, lecanii-corni, and heteromorpha was examined using PCR-RFLP(restriction fragment length polymorphism) of ribosomal DNA, M-13, $(GTG)_5$ and nucleotide sequences of ribosomal ITS(internal transcribed space) II regions. Three E. jeanselmei varieties showing distinct band patterns for each DNA markers as well as different nucleotide sequences of ribosomal ITS II regions could be considered as a separate species. E. dermatitidis and E. mansonii demonstrated the identical band patterns of RFLP of ribosomal DNA, M-13, and $(GTG)_5$ markers. However, nucleotides sequences of ribosomal ITS II region were different between these two species.
In order to study subcellular locality and characteristics of ribonuclease in Saccharomyces uvarum, subcelllar fractions $45,000{\times}g$ pellet fraction, post ribosomal fraction and ribosome fraction were extracted during late log, stationary phase and sugar starvation conditions. Ribonuclease activity was significantly increased in ribosomal fraction under stationary and sugar starvation conditions. Ribosomal ribonuclease was extracted by EDTA plus streptomycin sulfate and ammonium sulfate precipitation. The amount of ribosome in stationary and sugar starvation condition was decreased three to six fold as compared to that in the early log phase. The end products of ribosomal ribonuclease were detected by thin layer chromatography. It is postulated that the increase of ribosomal ribonuclease activity under sugar starvation results from 5'-rRNase, while the increase of rRNase activity under stationary phase results from 3'-rRNase.
In Jun-Gyo;Lee Bum-Soo;Song Won-Seob;Bae Chang-Hyu;Choi Seong-Kyu;Yang Deok-Chun
Plant Resources
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v.8
no.2
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pp.110-115
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2005
Ribosomal protein complex with ribosomal RNA to form the subunits of the ribosome serve essential functions in protein synthesis. A full-length cDNA (PRPS4) encoding ribosomal protein S4 has been isolated and its nucleotide sequence determined in ginseng plant (Panax ginseng). A PRPS4 cDNA is 1105 nucleotides long and has an open reading frame of 792 bp with a deduced amino acid sequence of 264 residues (pI 10.67). The deduced amino acid sequence of PRPS4 matched to the previously reported ribosomal protein S4 genes. Their degree of amino acid identity ranged from 68 to $92\%$. Phylogenetic analysis based on the amino acid residues showed that the PRPS4 grouped with ribosomal protein S4 of S. tuberosum (CAA54095).
A cDNA clone encoding the ribosomal protein S20 has been isolated from the Schizosaccharomyces pombe cDNA library by colony hybridization. The insert contained in the original plasmid pYJ10 was transferred intro shuttle vector pRS316 generate plasmid pYJll. The dDNA insert of plasmid pYJll, contains 484 nucleotides and encodes a protein of 118 amino acids with a calculated mass of 13,544 daltons. The deduced amino acid sequence of S. pombe ribosomal protein S20 is very homologous with fruit fly, rat, and budding yeast counterparts. It is also homologous with Xenopus S22 ribosomal protein. S. pombe ribosomal protein S20 appears to be relatively hydruphobic except the C-terminal region. The 728 bp upstream region of the S20 gene was amplified from chromosomal DNA and transferred into the BamHI/EcoRI site of the promoterles $\beta$-galactosidase gene of the vector YEp357R, which resulted in fusion plasmid pYS20. The synthesis of $\beta$-galactosidase from the fusion plasmid appeared to be the highest in the mid-exponential phase. The S. pombe cells with the fusion plasmid grown at 35$\^{C}$ gave lower $\beta$-galactosidase activity than the cells grown at 30$\^{C}$. Computer analysis showed the consensus sequence CAGTCACA in the upstream regions of various ribosomal protein genes in S. pombe, which would be involved in the coordinated expression of small ribosomal proteins.
The sequence of ITS (partial 16S ribosomal DNA, complete ITS1, 5.8S ribosomal DNA and ITS2, and partial 28S ribosomal DNA) was analysed by PCR and autosequencing in Sarcodon aspratus. The ITS lenght of S. aspratus was 716 base pair. As this sequence compared with other reports on S. aspratus (ace No AF335110), the sequence variation based on nucleotide deletion and substitution was $1.8\%$. This nucleotide variation rate in same species was very higher than in other species. Also, the sequence varitation rates between this S. aspratus and S. imbricatus, and S. squamus were $8\%\;and\;10\%$, respectively. This results suggested that the high sequence variation of S. aspratus might be caused specific host and inhabitat environment which limited gene flow.
Goyder, Miriam S.;Willison, Keith R.;Klug, David R.;DeMello, Andrew J.;Ces, Oscar
BMB Reports
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v.45
no.4
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pp.233-238
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2012
We present a top down separation platform for yeast ribosomal proteins using affinity chromatography and capillary electrophoresis which is designed to allow deposition of proteins onto a substrate. FLAG tagged ribosomes were affinity purified, and rRNA acid precipitation was performed on the ribosomes followed by capillary electrophoresis to separate the ribosomal proteins. Over 26 peaks were detected with excellent reproducibility (<0.5% RSD migration time). This is the first reported separation of eukaryotic ribosomal proteins using capillary electrophoresis. The two stages in this workflow, affinity chromatography and capillary electrophoresis, share the advantages that they are fast, flexible and have small sample requirements in comparison to more commonly used techniques. This method is a remarkably quick route from cell to separation that has the potential to be coupled to high throughput readout platforms for studies of the ribosomal proteome.
The ribosome is a protein synthesizing machinery and a ribonucleoprotein complex that consists of three ribosomal RNAs (23S, 16S and 5S) and 54 ribosomal proteins in bacteria. In the course of ribosome assembly, ribosomal proteins (r-protein) and rRNAs are modified, the r-proteins bind to rRNAs to form ribonucleoprotein complexes which are folded into mature ribosomal subunits. In this process, a number of non-ribosomal trans-acting factors organize the assembly process of the components. Those factors include GTP- and ATP-binding proteins, rRNA and r-protein modification enzymes, chaperones, and RNA helicases. During ribosome biogenesis, they participate in the modifications of ribosomal proteins and RNAs, and the assemblies of ribosomal proteins with rRNAs. Ribosomes can be assembled from a discrete set of components in vitro, and it is notable that in vivo ribosome assembly is much faster than in vitro ribosome assembly. This suggests that non-ribosomal ribosome assembly factors help to overcome several kinetic traps in ribosome biogenesis process. In spite of accumulation of genetic, structural, and biochemical data, not only the entire procedure of bacterial ribosome synthesis but also most of roles of ribosome assembly factors remain elusive. Here, we review ribosome assembly factors involved in the ribosome maturation of Escherichia coli, and summarize the contributions of several ribosome assembly factors which associate with 50S and 30S ribosomal subunits, respectively.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.1
no.2
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pp.171-175
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2000
Determined sequences of 384 randomly selected clones in a PCR-based cDNA library of Antheraea yamamai could identify expressed sequence tags (ESTs) of highly expressed gene. One EST (fibroin) appeared 15 times, one EST (40S ribosomal protein S18) twelve times, one EST (ribosomal protein S24a) eleven times, ten times (ribosomal protein S8), nine times (60S ribosomal protein L10A), seven times (60S ribosomal protein S15A, S17, S17 and seroin), six times (ribosomal protein S8), five times (ribosomal protein S24, mariner transposase and P8 protein), four times (serpin 2), three times (heat shock protein 70 and poly A binding protein), and the remaining 6 ESTs twice (amylase, KIAA1006, elongation factor-1, transposon mag, translation initiation factor 4C, QM protein, transposase). Therefore, the 94 EST make it possible to identify 24 redundant clones that are candidates for highly expressed genes in posterior silk gland of this insect. The 24 redundant EST clones were identified in GenBank, but none of them was related to A. yamamai, suggesting that there are many unidentified genes which are highly expressed in the A. yamamai genome.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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