Hur, On Sook;Ro, Na Young;Ko, Ho Cheol;Kim, Sang Gyu;Rhee, Ju Hee;Gwag, Jae Gyun;Oh, Se Jong
Research in Plant Disease
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v.18
no.4
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pp.304-309
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2012
Fusarium wilt, caused by three races of Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici, is one of the most important disease of tomato (Solanum lycopersicum) worldwide. A total of 1,906 tomato accessions were screened for the resistance to Fusarium wilt using I-3 SNP marker and high resolution melting analysis. Results showed that 97 accessions were homozygous resistant, 8 accessions were heterozygous resistant and 1,801 were homozygous susceptible. Accessions containing resistance were identified in 65 accessions of S. lycopersicum var. lycopersicum, 13 accessions of S. lycopericum var. cerasiform, 8 accessions of S. pimpinellifolium, 3 accessions of S. habrochaites, 3 accessions of S. corneliomulleri, 1 accession of S. galapagense, 3 accessions of S. peruvianum, 1 accession of S. chilense. For accurate evaluation of the Fusarium wilt resistance, however, screening to race 1 and race 2 and bio-assay still remain to be evaluated.
Park, Myung Soo;Jang, Kyoung Soo;Choi, Yong Ho;Kim, Jin-Cheol;Choi, Gyung Ja
Horticultural Science & Technology
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v.31
no.1
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pp.110-116
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2013
This study was carried out to establish the simple mass-screening methods for resistant tomato to Fusarium wilt caused by Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici (FOL). Root dip inoculation method has been used in many studies on the resistance of tomato to disease. On the other hand, in mass-screening for resistant tomato to Fusarium wilt, the inoculation method is time-consuming and laborious procedure. Disease development of two FOL isolates on two cultivars of tomato according to inoculation method including root dip, tip and scalpel methods were investigated. In compatible interaction, tomato seedlings of each cultivar inoculated by tip method showed the lower and more variable disease severities than by root dip method. Whereas the seedlings by scalpel method represented clear resistant and susceptible responses to Fusarium wilt as root dip method. The resistance degree of each cultivar inoculated with FOL isolates by scalpel method was hardly affected by the tested incubation temperature and inoculum concentration. On the basis of the results, we suggest scalpel inoculation method as an efficient mass-screening method for resistant of tomato cultivars to Fusarium wilt. Roots of tomato seedlings at two-leaf stage grown in plastic cell tray were injured with scalpel and then spore suspension (more than $1{\times}10^7\;conidia{\cdot}mL^{-1}$) of FOL was poured directly on the roots. The infected plants were cultivated in a growth room at $25-30^{\circ}C$ for 4 weeks with 12-hours light a day.
Crops lack genetic resistance to most necrotrophic soil-borne pathogens and parasitic nematodes that are ubiquitous in agroecosystems worldwide. To overcome this disadvantage, plants recruit and nurture specific group of antagonistic microorganisms from the soil microbiome to defend their roots against pathogens and other pests. The best example of this microbe-based defense of roots is observed in disease-suppressive soils in which the suppressiveness is induced by continuously growing crops that are susceptible to a pathogen. Suppressive soils occur globally yet the microbial basis of most is still poorly described. Fusarium wilt, caused by Fusarium oxysporum f. sp. fragariae is a major disease of strawberry and is naturally suppressed in Korean fields that have undergone continuous strawberry monoculture. Here we show that members of the genus Streptomyces are the specific bacterial components of the microbiome responsible for the suppressiveness that controls Fusarium wilt of strawberry. Furthermore, genome sequencing revealed that Streptomyces griseus, which produces a novel thiopetide antibiotic, is the principal species involved in the suppressiveness. Finally, chemical-genetic studies demonstrated that S. griseus antagonizes F. oxysporum by interfering with fungal cell wall synthesis. An attack by F. oxysporum initiates a defensive "cry for help" by strawberry root and the mustering of microbial defenses led by Streptomyces. These results provide a model for future studies to elucidate the basis of microbially-based defense systems and soil suppressiveness from the field to the molecular level.
Lee, Won Jeong;Jang, Kyoung Soo;Choi, Yong Ho;Kim, Heung Tae;Kim, Jin-Cheol;Choi, Gyung Ja
Research in Plant Disease
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v.21
no.3
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pp.201-207
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2015
This study was conducted to establish a simple mass-screening method for resistant melon to Fusarium wilt caused by Fusarium oxysporum f. sp. melonis (FOM). Root-dipping inoculation method has been used to investigate resistance of melon plants to Fusarium wilt. However, the inoculation method requires a lot of labor and time because of complicate procedure. To develop a simple screening method on melon Fusarium wilt, occurrence of Fusarium wilt on susceptible and resistant cultivars of melon according to inoculation method including root-dipping, soil-drenching, tip, and scalpel methods was investigated. Scalpel and tip methods showed more clear resistant and susceptible responses in the melon cultivars than root-dipping inoculation method, but tip method represented slightly variable disease severity. In contrast, in the case of soil-drenching inoculation method, disease severity of the susceptible cultivars was very low. Thus we selected scalpel method as inoculation method of a simple screening method for melon Fusarium wilt. By using the scalpel inoculation method, resistance degrees of the cultivars according to incubation temperature after inoculation (25 and $30^{\circ}C$) and inoculum concentration ($1{\times}10^6$ and $1{\times}10^7conidia/ml$) were measured. The resistance or susceptibility of the cultivars was hardly affected by all the tested conditions. To look into the effectiveness of scalpel inoculation methods, resistance of 22 commercial melon cultivars to FOM was compare with root-dipping inoculation method. When the melon cultivars were inoculated by scalpel method, resistance responses of all the tested cultivars were clearly distinguished as by root-dipping method. Taken together, we suggest that an efficient simple mass-screening method for resistant melon plant to Fusarium wilt is to sow the seeds of melon in a pot (70 ml of soil) and to grow the seedlings in a greenhouse ($25{\pm}5^{\circ}C$) for 7 days, to cut the root of seedlings with a scalpel and then pour a 10 ml-aliquot of the spore suspension of $1{\times}10^6conidia/ml$ on soil. The infected plants were cultivated in a growth room at 25 to $30^{\circ}C$ for about 3 weeks with 12-hr light a day.
In the course of a developing screening method for resistant radish to Fusarium oxysporum f. sp. raphani, we found that the fungus produces phytotoxic compound against Raphanus sativus. The culture filtrate of F. oxysporum f. sp. raphani KR1 represented the strongest phytotoxicity when the fungus was incubated in the malt extract broth with 150 rpm at $25^{\circ}C$ for 14 days. Under bioassay-guided purification, we isolated a substance from liquid culture of F. oxysporum f. sp. raphani KR1, with phytotoxic effect against R. sativus. The compound was identified as fusaric acid by mass and nuclear magnetic resonance spectral analyses. Phytotoxicity of the compound against cruciferous vegetable crops, including radish, cabbage, and broccoli, was investigated. Fusaric acid represented phytotoxicity on radish seedlings by concentration dependant manner. And the phytotoxin demonstrated strong phytotoxicity on the resistant cultivars as well as susceptible cultivars of radish to F. oxysporum f. sp. raphani. In addition, fusaric acid isolated from the fungus also showed a potent phytotoxic efficacy against non-host Brassicaceae crops of the fungus such as cabbage and broccoli. The results demonstrate that fusaric acid produced by F. oxysporum f. sp. raphani is non-host-specific toxin and for screening of resistant radish to the fungal pathogen, spore suspension of the fungus without the phytotoxin has to be used.
To establish the efficient screening method for resistance of radish to F. oxysporum f. sp. raphani, we investigated the development of Fusarium wilt of two radish cultivars, 'Songbaek' (susceptible) and 'Tokwang' (moderately resistant), according to several conditions such as inoculation methods, inoculum concentrations, and dipping periods of radish roots in spore suspension. By infected soil and soil-drenching inoculation methods, Fusarium wilt did not occur on the seedlings of both cultivars. In root dipping inoculation method using cut or non-cut roots of radish plants, the cut roots were easily infected by the pathogen than non-cut roots. And the disease development of two cultivars represented significant difference in non-cut root method. On the other hand, disease severity of Fusarium wilt on radish seedlings according to inoculum concentration increased in a dose-dependant manner, regardless of dipping periods. Using screening method established from the results, the 41 commercial radish cultivars were evaluated the degree of resistance to F. oxysporum f. sp. raphani. Among them, 6 radish cultivars were resistant, 22 cultivars were moderately resistant, and 13 cultivars were susceptible to Fusarium wilt.
This is the first study reporting the evaluation of transgenic lines of tomato harboring rice chitinase (RCG3) gene for resistance to two important fungal pathogens Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici (Fol) causing fusarium wilt and Alternaria solani causing early blight (EB). In this study, three transgenic lines TL1, TL2 and TL3 of tomato Solanum lycopersicum Mill. cv. Riogrande genetically engineered with rice chitinase (RCG 3) gene and their R1 progeny was tested for resistance to Fol by root dip method and A. solani by detached leaf assay. All the R0 transgenic lines were highly resistant to these fungal pathogens compared to nontransgenic control plants. The pattern of segregation of three independent transformant for Fol and A. solani was also studied. Mendelian segregation was observed in transgenic lines 2 and 3 while it was not observed in transgenic line 1. It was concluded that introduction of chitinase gene in susceptible cultivar of tomato not only enhanced the resistance but was stably inherited in transgenic lines 2 and 3.
This study was conducted to establish the efficient screening system for resistant radish to Fusarium oxysporum f. sp. raphani. Five radish cultivars ('Myoungsan', 'Chungdu', 'Jangsaeng', 'Hannongyeorm', and 'Chungsukungjung') showing different degree of resistance to the fungus were selected. And the development of Fusarium wilt of the cultivars according to several conditions such as root wounding, dipping period of roots in spore suspension, inoculum concentration, and incubation temperature to develop the disease was tested. In distinguishing the resistance degree of the radish cultivars to the disease, non-cut roots were more effective than cut roots. And occurrence of Fusarium wilt of the radish plants increased in the proportion to increase of root-dipping period and spore concentration of the fungus. Thus, optimum conditions to differentiate susceptible and resistant cultivars to the disease were root-dipping period of 0.5 hour and spore concentration of $1{\times}10^7\;conidia{\cdot}mL^{-1}$. Disease severity of Fusarium wilt on the cultivars was changed with incubation temperature and the radish seedlings incubated at $25^{\circ}C$ represented the most difference of resistance and susceptibility to Fusarium wilt. From the above results, we suggest that the efficient screening method for resistant radish to Fusarium oxysporum f. sp. raphani would be to dip non-cut roots of fourteen-day-old radish seedlings in spore suspension of $1{\times}10^7\;conidia{\cdot}mL^{-1}$ for 0.5 hour and to transplant the inoculated plants to plastic pots with fertilized soil, and then to incubate the radish plants at a temperature of $25^{\circ}C$ for development of Fusarium wilt.
Background: Plant health is directly related to the change in native microbial diversity and changes in soil health have been implicated as one of the main cause of root rot. However, scarce information is present regarding allelopathic relationship of Panax notoginseng root exudates and pathogenic fungi Fusarium oxysporum in a continuous cropping system. Methods: We analyzed P. notoginseng root exudate in the planting soil for three successive years to determine phenolic acid concentration using GC-MS and HPLC followed by effect on the microbial community assembly. Antioxidant enzymes were checked in the roots to confirm possible resistance in P. notoginseng. Results: Total 29 allelochemicals in the planting soil extract was found with highest concentration (10.54 %) of p-hydroxybenzoic acid. The HPLC showing a year-by-year decrease in p-hydroxybenzoic acid content in soil of different planting years, and an increase in population of F. oxysporum. Moreover, community analysis displayed negative correlation with 2.22 mmol. L-1 of p-hydroxybenzoic acid correspond to an 18.1 % population of F. oxysporum. Furthermore, in vitro plate assay indicates that medium dose of p-hydroxybenzoic acid (2.5-5 mmol. L-1) can stimulate the growth of F. oxysporum colonies and the production of macroconidia, as well as cell wall-degrading enzymes. We found that 2-3 mmol. L-1 of p-hydroxybenzoic acid significantly increased the population of F. oxysporum. Conclusion: In conclusion, our study suggested that p-hydroxybenzoic acid have negative effect on the root system and modified the rhizosphere microbiome so that the host plant became more susceptible to root rot disease.
Lee, Ji Hyun;Jo, Eun Ju;Jang, Kyoung Soo;Choi, Yong Ho;Kim, Jin-Cheol;Choi, Gyung Ja
Research in Plant Disease
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v.20
no.4
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pp.235-244
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2014
Clubroot and Fusarium wilt of cole crops (Brassica oleracea L.) are destructive diseases which for many years has brought a decline in quality and large losses in yields all over the world. The breeding of resistant cultivars is an effective approach to reduce the use of chemical fungicides and minimize crop losses. This study was conducted to evaluate the resistance of 60 cabbage (B. oleracea var. capitata) and 6 broccoli (B. oleracea var. italica) lines provided by The RDA-Genebank Information Center to clubroot and Fusarium wilt. To investigate resistance to clubroot, seedlings of the genetic resources were inoculated with Plasmodiophora brassicae by drenching the roots with a mixed spore suspension (1 : 1) of two isolates. Of the tested genetic resources, four cabbage lines were moderately resistant and 'K166220' represented the highest resistance to P. brassicae. The others were susceptible to clubroot. On the other hand, to select resistant plants to Fusarium wilt, the genetic resources were inoculated with Fusarium oxysporum f. sp. conglutinans by dipping the roots in spore suspension of the fungus. Among them, 17 cabbage and 5 broccoli lines were resistant, 16 cabbage lines were moderately resistant, and the others were susceptible to Fusarium wilt. Especially, three cabbage ('IT227115', 'K161791', 'K173350') and two broccoli ('IT227100', 'IT227099') lines were highly resistant to the fungus. We suggest that the resistant genetic resources can be used as a basic material for resistant B. oleracea breeding system against clubroot and Fusarium wilt.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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