In this study, in vitro maturation system using fetal bovine serum (FBS) or porcine follicular fluid (pFF) was investigated to produce comparable oocytes to those derived from in vivo. Control group of oocytes was cultured in TCM 199 supplemented with 0.1% polyvinyl alcohol (PVA). Other three groups of oocytes were cultured in TCM 199 supplemented with 10% FBS, 10% pFF or 5% FBS + 5% pFF, respectively. After 44 h maturation, oocytes with the first polar body were activated with two electric pulses (DC) of 1.2 kv/cm for 30 ${\mu}sec$. Also, matured oocytes of four groups were reconstructed and fused. Reconstructed embryos were cultured in PZM-3 under 5% $CO_2$ in air at $38.5^{\circ}C$ for 6 days. The oocytes matured in the medium supplemented with FBS or/and pFF showed significantly higher maturation rates (64.0 vs. 73.9 to 85.2%). In PA embryos, cleavage rates (89.7 vs. 77.1 to 86.6%) and blastocysts rates (30.0 vs. 16.2 to 26.2%) were significantly higher in pFF group (p<0.05). In NT embryos, there was no difference among treatments in cleavage rate, but the blastocyst rates (28.5 vs. 15.5 to 24.6%) were significantly higher in pFF group (p<0.05). The apoptosis rate was significantly higher (p<0.05) in the control than other groups (10.8 vs. 4.9 to 8.2% for PA, 3.1 vs. 0.5 to 1.3% for NT). In order to select the comparable oocyte to in vivo oocytes, each group of oocytes was stained with Brilliant cresyl blue (BCB) after 42h maturation. The matured oocytes were separated according to color of cytoplasm; stained group (BCB+) and unstained group (BCB-). The oocytes matured in the presence of FBS or/and pFF showed significantly higher staining rates (70.3 to 72.7 vs. 35.1%) (p<0.05). To verify the fact that the supplementation of FBS or/and pFF can increase the maturation rates, cdc2 kinase activity, the catalytic subunit of MPF, was determined. The cdc2 kinase activity of the oocytes matured in the medium supplemented with FBS or/and pFF was significantly higher than control group (6.7 to 9.3 vs. 3.8). In conclusion, the supplementation of FBS or/and pFF can support in vitro maturation rate of porcine oocytes through the increment of cdc2 kinase activity level in the cytoplasm.
Proceedings of the Korean Society of Embryo Transfer Conference
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2002.11a
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pp.115-115
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2002
To evaluate the correlations between the expression of cyclin B1 mRNA and protein after stimulation and oocyte activation and development of nuclear transferred mouse embryos, this study was performed. The oocyte activation was induced by 7% ethanol or 10$\mu\textrm{g}$/$m\ell$ Ca-ionophore without (single) or with (combined) 10$\mu\textrm{g}$/$m\ell$ cycloheximide (CH). Cyclin B1 mRNA and protein in mouse oocytes was evaluated by PCR and western blot. The activation and blastocyst development in both single (P<0.05) and combined (P<0.01) stimulation was higher than in non-activated group. The cyclin B1 mRNA and protein levels were significantly reduced in both single and combined stimulation groups (P<0.05), respectively. Cyclin B1 mRNA expression showed a negative correlation between activation and blastocyst development in both single and combined stimulation groups. And also the expression of cyclin B1 protein showed a negative correlation with between oocyte activation and blastocysts development in both single and combined stimulation groups. In conclusion, it may suggest that single and combined stimulation increases the oocyte activation and blastocyst development of nuclear transferred embryos, because it induces the degradation of cyclin B1 mRNA and protein after activation in enucleated mouse oocytes.
In general, cloned pigs have been produced using the somatic cell nuclear transfer (SCNT) technique with various types of somatic cells; however, the SCNT technique has disadvantages not only in its low efficiency but also in the development of abnormal clones. This study aimed to compare early embryonic development and quality of SCNT embryos with those of induced pluripotent stem cells (iPSCs) NT embryos (iPSC-NTs). Ear fibroblast cells were used as donor cells and iPSCs were generated from these cells by lentiviral transduction with human six factors (Oct4, Sox2, c-Myc, Nanog, Klf4 and Lin28). Blastocyst formation rate in iPSC-NT (23/258, 8.9%) was significantly lower than that in SCNT (46/175, 26.3%; p < 0.05). Total cell number in blastocysts was similar between two groups, but blastocysts in iPSC-NT had a lower number of apoptotic cells than in SCNT (2.0 ± 0.6 vs. 9.8 ± 2.9, p < 0.05). Quantitative PCR data showed that apoptosis-related genes (bax, caspase-3, and caspase-9) were highly expressed in SCNT than iPSC-NT (p < 0.05). Although an early development rate was low in iPSC-NT, the quality of cloned embryos from porcine iPSC was higher than that of embryos from somatic cells. Therefore, porcine iPSCs could be used as a preferable cell source to create a clone or transgenic animals by using the NT technique.
Experiments were conducted to evaluate the effect of blastomere diameters and cell cycle stages on the subsequent development of nuclear transplant rabbit embryos (NT-embryos) using nuclei derived from the 16- or 32-cell stage embryos. All blastomeres and NT-embryos were cultured individually in modified Ham's F-10 medium supplemented with 10% rabbit serum (RS) at $38^{\circ}C$ and 5% $CO_2$ in air. The diameter of blastomeres from 16-cell stage embryos was found twice of those from 32-cell stage (51 vs 27 ${\mu}m$). Significant differences were observed in cleavage rates ($\geq$3 divisions) in the isolated single blastomeres (54 vs 48 for 16-cell; 28 vs 14 for 32-cell, p<0.05), but the fusion rates of oocytes with transferred nuclei were similar between small and large single blastomeres derived from either 16-cell or 32-cell stage embryos. When 16-cell stage blastomeres were used as nuclear donors, cleavage rates ($\geq$3 divisions) of the NT-embryos were greater in the small nuclear donors than in the large donors (73 vs 55%, p<0.05). On the contrary, significantly higher cleavage (43 vs 6%, p<0.05) and developmental rates (14 vs 0%, p<0.05) were observed in the large blastomere nuclear donor group of the 32-cell stage embryos. When the cell cycle stages were controlled by a microtubule polymerization inhibitor (Demicolcine, DEM) or the combined treatment of DEM and Aphidicolin (APH), a DNA polymerase inhibitor, fusion rates were 88-96% for the 16-cell donor group (without DEM treatment), which were greater than the 32-cell donor group (54-58%). Cleavage rates were also greater in the transplants derived from G1 nuclear donor group (93-95%) than those from the DEM and APH combined treatment (73%) for the 16-cell donor group (p<0.05). No significant difference was detected in the morula/blastocyst rates in either donor cell stage (p>0.05). In conclusion, it appeared that no difference in the developmental competence between large and small isolated blastomeres was observed. When smaller 16-cell stage blastomeres were used as nuclear donor, the cleavage rate or development of NT-embryos was improved and was compromised when 32-cell stage blastomeres were used. Therefore, control nuclear stage of the donor cell at $G_1$ phase in preactivated nuclear recipients seemed to be beneficial for the cleavage rate of the reconstructed embryo in the 16-cell transplant, but not for subsequent morula or blastocyst development.
This study investigated the effect of variation in the number of somatic-cell-cloned embryos and their developmental stage at transfer on pregnancy, as well as the influence of the estrus status of recipient pigs on in vivo development of cloned porcine embryos after embryo transfer. For somatic cell nuclear transfer (SCNT), fibroblast cells were obtained from a male porcine fetus. Recipient oocytes were collected from prepubertal gilts at a local abattoir and then cultured. After SCNT, reconstructed embryos of different numbers and developmental stages were transferred into recipient pigs. The developmental stage of the cloned embryos and the number of transferred embryos per surrogate showed no significant differences in terms of the resulting cloning efficiency. However, the pregnancy rate improved gradually as the number of transferred cloned embryos was increased from 100-150 or 151-200 to 201-300 per recipient. In pre-, peri-, and post-ovulation stages, pregnancy rates of 28.6%, 41.8%, and 67.6% and 16, 52, and 74 offspring were recorded, respectively. The number of cloned embryos and estrus status of the recipient pig at the time of transfer of the cloned embryo affect the efficiency of pig production; therefore, these variables should be particularly considered in order to increase the efficiency of somatic cell pig cloning.
The faulty regulation of imprinting gene lead to the abnormal development of reconstructed embryo after nuclear transfer. However, the correlation between the imprinting status of donor cell and preimplantation stage of embryo development is not yet clear. In this study, to determine this correlation, we used the porcine spermatogonial stem cell (pSSC) and fetal fibroblast (pFF) as donor cells. As the results, the isolated cells with laminin matrix selection strongly expressed the GFR ${\alpha}$-1 and PLZF genes of SSCs specific markers. The pSSCs were maintained to 12 passages and positive for the pluripotent marker including OCT4, SSEA1 and NANOG. The methylation analysis of H19 DMR of pSSCs revealed that the zinc finger protein binding sites CTCF3 of H19 DMRs displayed an androgenic imprinting pattern (92.7%). Also, to investigate the reprogramming potential of pSSCs as donor cell, we compared the development rate and methylation status of H19 gene between the reconstructed embryos from pFF and pSSC. This result showed no significant differences of the development rate between the pFFs ($11.2{\pm}0.8%$) and SSCs ($13.3{\pm}1.1%$). However, interestingly, while the CTCF3 methylation status of pFF-NT blastocyst was decreased (36.3%), and the CTCF3 methylation status of pSSC-NT blastocyst was maintained. Therefore, this result suggested that the genomic imprinting status of pSSCs is more effective than that of normal somatic cells for the normal development because the maintenance of imprinting pattern is very important in early embryo stage.
Park, Jin-Ki;Jeon, Ik-Soo;Lee, Yun-Keun;Lee, Poongyeon;Kim, Sung-Woo;Kim, Jung-Ho;Han, Joo-Hee;Park, Chun-Gyu;Min, Kwan-Sik
Proceedings of the KSAR Conference
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2003.06a
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pp.43-43
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2003
This study was conducted to produce transgenic pig harboring human tissue plasminogene activator (tPA) gene. Two different tPA genes containing bovine $\beta$-casein promoter and mouse uroplakin promoter were prepared for microinjection and confirmed the expression level of tPA protein from the CHO (Chinese hamster ovary) cell lines by gene transfection. Concentration of tPA expression from the six cell lines (all of CHO cells) were average 212.4 ng/ml. Reconstructed DNA to used the CHO cell were microinjected into the pronuclei of in vivo embryos The total of 2,307 zygotes were collected from 95 donors and 1,851 embryos were in 1-cell stage which were visualized the pronuclei for DNA microinjection. The concentration of linear DNA was 2.0 ng per microliter and injected into zygotes with two pronuclei on an inverted Nikon microscope equipped with narishige micromanipulator and modulation contrast optics. The 541 embryos injected with bovine $\beta$-casein promoter-tPA were transferred to 22 recipients. The 1,154 embryos injected with mouse uroplakin promoter-tPA were transferred to 51 recipients. Sixty nine offspring from 9 delivered sows were produced. We analysed the transgenes with PCR methods from 69 offsprings, but could not detect the PCR product from piglet tails DNA.
Koo, Ok Jae;Park, Sol Ji;Lee, Choongil;Kang, Jung Taek;Kim, Sujin;Moon, Joon Ho;Choi, Ji Yei;Kim, Hyojin;Jang, Goo;Kim, Jin-Soo;Kim, Seokjoong;Lee, Byeong-Chun
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.27
no.3
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pp.324-329
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2014
To facilitate the construction of genetically-modified pigs, we produced cloned embryos derived from porcine fibroblasts transfected with a pair of engineered zinc finger nuclease (ZFN) plasmids to create targeted mutations and enriched using a reporter plasmid system. The reporter expresses RFP and eGFP simultaneously when ZFN-mediated site-specific mutations occur. Thus, double positive cells ($RFP^+/eGFP^+$) were selected and used for somatic cell nuclear transfer. Two types of reporter based enrichment systems were used in this study; the cloned embryos derived from cells enriched using a magnetic sorting-based system showed better developmental competence than did those derived from cells enriched by flow cytometry. Mutated sequences, such as insertions, deletions, or substitutions, together with the wild-type sequence, were found in the cloned porcine blastocysts. Therefore, genetic mutations can be achieved in cloned porcine embryos reconstructed with ZFN-treated cells that were enriched by a reporter-based system.
The development potential of bovine somatic cells was evaluated using nuclear transfer. A single donor cell derived from fetus of HanWoo(Korean Native Cattle) was selected and deposited into perivitelline space of each enucleated oocyte before electrical fusion and activation. Nuclei of donor cells starved for 7 days (37%) tended to support the development of reconstitute embryo the blastocyst stage better than those of donor cells starved 3, 14 and 30 days. The cleavage rate was significantly lower(P<0.05) in reconstitute embryos derived from large size donor cells(51.2%), than those from small medium size donor cells(76.6 and 73.5, respectively). The developmental rate to blastocyst of reconstructed embryos from medium size donor cells was higher than those from small and medium size donor cells. This study demonstrates that an appropriate culture period for induction into quiescent stage and the size of donor cells effect on the efficiency of nuclear transfer using cultured bovine cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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