We are trying to develop a transgenic carrot with aims of production and delivery of oral vaccine against microbial enteropathogen using a K88ac pilin gene. A K88ac antigen (pilin) gene was isolated by PCR from the K88ac genomic DNA. The pilin gene was constructed in pGA748 and introduced via Agrobacterium tumefaciens to the explants of carrot hypocotyl and then 494 transgenic lines were established. The amounts of the K88ac antigen produced in each of the cell lines were determined by western and two elite cell lines (M1-17, Y14-1) were selected based on higher levels of expression of the antigens as well as rate of cell growth and efficiency of embryogenesis. In order to test an immunization induced by oral administration of the transgenic carrot, serum of the mice fed with the carrot vaccine were tested in ELISA. It tumed out that the mice fed with 3 g of transgenic carrot showed a similar level of antibody compared to those applied with 10 $\mu\textrm{g}$ of the purified recombinant pilin protein. Besides, various clinical responses were measured after challenging with ETEC K88ac strain to the piglets experiencing an oral immunization with the transgenic carrot. The piglets fed with carrot vaccine showed a lower level of diarrhea in fecal score compared to those fed with non-transgenic carrot. A higher level of increase in weight of the piglets fed with the transgenic carrot vaccine was observed comparing to those fed with non-transgenic carrot as control.
Journal of the korean academy of Pediatric Dentistry
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v.33
no.3
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pp.401-410
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2006
Dental caries results from localized demineralization of tooth enamel by acids of bacterial origin produced from the fermentation of dietary sugars. A group of related oral bacteria, collectively known as mutans streptococci, are implicated as the primary etiological agents of human caries. Within this group, Streptococcus mutans has been known as a causative agent for dental caries. As well as acid production yielding the demineralization of tooth enamel, adherence and colonization of S. mutans to the teeth are also important for their virulence Cell-surface fibrillar proteins, which mediate adherence to the salivary pellicle are virulence components of mutans streptococci, and primary candidates for a human caries vaccine. Here we report that the AgI/II gene from S. mutans GS-5 were cloned by PCR amplification of the bacterial chromosomal DNA and the integrity of cloned genes were confirmed by nucleotide sequencing. Sequence analyses showed the sequence alignment of 280 nucleotides between the cloned AgI/II and the reported sequence of S. mutans GS-5 showed the perfect match The cloned genes which signal nucleotide was truncated, were transferred into bacterial expression vector and the recombinant proteins were purified as His-tag fusion proteins In order to generate polyclonal antibodies against the recombinant proteins, AgI/II mr, some $100{\mu}g$ of the proteins was injected into mice three times. It can be used for an effective vaccine production to prevent dental caries caused by pathogenic S. mutans.
Subolesin (4D8), the ortholog of insect akirins, is a highly conserved protective antigen and thus has the potential for development of a broad-spectrum vaccine against ticks and mosquitoes. To date, no protective antigens have been characterized nor tested as candidate vaccines against Dermacentor silvarum bites and transmission of associated pathogens. In this study, we cloned the open reading frame (ORF) of D. silvarum 4D8 cDNA (Ds4D8), which consisted of 498 bp encoding 165 amino acid residues. The results of sequence alignments and phylogenetic analysis demonstrated that D. silvarum 4D8 (Ds4D8) is highly conserved showing more than 81% identity of amino acid sequences with those of other hard ticks. Additionally, Ds4D8 containing restriction sites was ligated into the pET-32(a+) expression vector and the recombinant plasmid was transformed into Escherichia coli rosetta. The recombinant Ds4D8 (rDs4D8) was induced by isopropyl ${\beta}$-D-thiogalactopyranoside (IPTG) and purified using Ni affinity chromatography. The SDS-PAGE results showed that the molecular weight of rDs4D8 was 40 kDa, which was consistent with the expected molecular mass considering 22 kDa histidine-tagged thioredoxin (TRX) protein from the expression vector. Western blot results showed that rabbit anti-D. silvarum serum recognized the expressed rDs4D8, suggesting an immune response against rDs4D8. These results provided the basis for developing a candidate vaccine against D. silvarum ticks and transmission of associated pathogens.
Kim Younghwan;Hwang Heon;Lee Sukchan;Park Eun-Seok;Yoo Sun-Dong;Lee Jeongmin;Yang Joo-Sung;Kwon MooSik
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.33
no.4
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pp.274-280
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2005
Pasteurella multocida is known to cause widespread infections in husbandry. To induce homologous and heterologous immunity against the infections, outer membrane proteins (OMPs) in the envelope of P. multocida are thought to be attractive vaccine candidates. Outer membrane protein H is considered as the major component of OMPs. In this study, a gene for OmpH was isolated from pathogenic P. multocida serogroup A. The gene was composed of 1,047 nucleotides coding 348 amino acids with signal peptide of 20 amino acids. The amino acid composition showed about 80 to 98 per cent sequence homologies among other 10 strains of P. multocida serogroup A, reported so far. A recombinant ompH, from which signal peptide was truncated, was generated using pRSET A to name 'pRSET A/OmpH-F2'. The pRSET A/OmpH-F2 was well expressed in E. coli BL21(DE3). The truncated OmpH was purified using nickel-nitrilotriacetic acid (Ni-NTA) affinity column chromatography. Its molecular weight was registered to be 40 kDa on SDS-PAGE gel. In order to generate immunesera against the OmpH, 50 ug of the protein was intraperitoneally injected into mice three times. The anti-OmpH immuneserum recognized about $5{\times}10^{-2}$ng quantity of the purified OmpH. It can be used for an effective vaccine production to prevent fowl cholera caused by pathogenic P. multocida (Serogroup A).
Many Lactobacillus strains have been promoted as good probiotics for the prevention and treatment of diseases. We engineered recombinant Lactobacillus casei, producing biologically active canine granulocyte macrophage colony stimulating factor (cGM-CSF), and investigated its possibility as a good probiotic agent for dogs. Expression of the cGM-CSF protein in the recombinant Lactobacillus was confirmed by SDS-PAGE and Western blotting methods. For the in vivo study, 18 Beagle puppies of 7 weeks of age were divided into three groups; the control group was fed only on a regular diet and the two treatment groups were fed on a diet supplemented with either $1\times10^9$ colony forming units (CFU)/day of L. casei or L. casei expressing cGM-CSF protein for 7 weeks. Body weight was measured, and fecal and blood samples were collected from the dogs during the experiment for the measurement of hematology, fecal immunoglobulin (Ig)A and IgG, circulating IgA and IgG, and canine corona virus (CCV)-specific IgG. There were no differences in body weights among the groups, but monocyte counts in hematology and serum IgA were higher in the group receiving L. casei expressing cGM-CSF than in the other two groups. After the administration of CCV vaccine, CCV-specific IgG in serum increased more in the group supplemented with L. casei expressing cGM-CSF than the other two groups. This study shows that a dietary L. casei expressing cGM-CSF enhances specific immune functions at both the mucosal and systemic levels in puppies.
Toxoplasma gondii is an apicomplexan zoonotic protozoan parasite that infects most species of warm-blooded animals, including humans. The heavy incidence and severe or lethal damage caused by T. gondii infection clearly indicate a need for the development of an effective vaccine. T. gondii GRA8 is a member of the dense granules protein family and is used as a marker of acute infection. In the present study, we evaluated the protective immunity induced by DNA vaccination based on a recombinant eukaryotic plasmid, pDsRed2-GRA8, against acute toxoplasmosis in mice. BALB/c mice were intramuscularly immunized with the pDsRed2-GRA8 plasmid and then challenged by infection with the highly virulent GFP-RH strain of T. gondii. The specific immune responses and protective efficacy against T. gondii of this vaccine were analyzed by measuring cytokine and serum antibody titers, splenocyte proliferation assays, and the survival times of mice after challenge. Our results showed that mice immunized with pDsRed2-GRA8 demonstrated specific humoral and cellular responses, induced higher IgG antibody titers with predominant IgG2a production; increased levels of IL-10, IL-12 (p70), $IFN-{\gamma}$, $TNF-{\alpha}$, and splenocyte proliferation; and prolonged survival times compared to those of control mice. The present study showed that DNA immunization with pDsRed2-GRA8 induced humoral and cellular immune responses, and all immunized mice showed greater Th1-type immune responses and longer survival times than those of control mice. These results indicated that T. gondii GRA8 DNA immunization induces a partial protective effect against acute toxoplasmosis.
A vector harboring double cassettes; a heterologous gene expression cassette of pHCE-InaN-antigen and a ghost formation cassette of pAPR-cI-E lysis 37 SDM was constructed and introduced to E. coli DH5a. For the production of a bacterial ghost vaccine, bacterial ghosts from E. coli / Streptococcus iniae with four different types of antigens - enolase, GAPDH, sagA and piaA - were produced by the optimization of fermentation parameters such as a glucose concentration of 1 g/l, agitation of 300 rpm and aeration of 1 vvm. Efficiency of ghost bacteria formation was evaluated with cultures of OD$_{600}$=1.0, 2.0 and 3.0. The efficiency of the ghost bacteria formation was 99.54, 99.67, 99.99 and 99.99% with inductions at OD$_{600}$=3.0, 1.0, 2.0 and 1.0 for E. coli/S. iniae antigens enolase, piaA, GAPDH and sagA, respectively. Ghost bacteria as a vaccine was harvested by centrifugation. The antigen protein expressions were analyzed by SDS-PAGE and western blot analysis, and the molecular weights of the enolase, piaA, GAPDH and sagA were 78, 26, 67 and 26 kDa, respectively. The molecular weights of the expressed antigens were consistent with theoretical sizes obtained from the amino acid sequences.
Purpose: During the coronavirus disease 2019 (COVID-19) pandemic, we conducted a Delphi survey that included the experts from the field of COVID-19 immunization in children aged 5-11 years. The aim was to organize collective expert opinions on COVID-19 vaccination in young children in the Republic of Korea, and so thus assist the vaccination policy. Methods: The panels included pediatric infectious disease specialists, preventive medicine experts, infectious disease physicians, and COVID-19 vaccine experts consulting the Ministry of Health and Welfare. The Delphi survey was conducted online using a questionnaire from February 14 to February 27, 2022. Results: The Delphi panels agreed that children were vulnerable to COVID-19, and the severity of illness was modest. Furthermore the panels reported that children with chronic illness were more susceptible to a worsening clinical course. There were generally positive opinions on the effectiveness of COVID-19 vaccination in children aged 5-11 years, and experts gathered a slightly positive opinion that the adverse events of pediatric COVID-19 were not numerous. The benefits of COVID-19 vaccination were evaluated at a level similar to the potential risks in children. Currently, the only approved mRNA platform vaccine in children seemed to be sustainable; however, the recombinant protein platform COVID-19 vaccines were evaluated as better options. Conclusions: Due to the surge of the Omicron variant and an increase in pediatric cases, the COVID-19 vaccination in young children may have to be considered. Panels had neutral opinions regarding the COVID-19 vaccination in children aged 5-11 years. Thus monitoring of the epidemiology and the data about the safety of COVID-19 vaccination should be continued.
Background: Carcinoembryonic antigen (CEA) is well-known soluble tumor marker frequently detectable in peripheral blood of carcinoma patients and considered as good target for antigen-specific immunotherapy. However, it is known that the induction of immune response to CEA is very difficult because CEA is a self-antigen expressed in fetal cells and weakly expressed in normal colorectal epithelial cells. To enhance anti-tumor immunity specific for CEA, recombinant CEA protein was modified using listeriolysin O (LLO) for endosomal lysis and trans activator of transcription (Tat) domain for transducing extracellular proteins into cytoplasm. Methods: After immunization using dendritic cells pulsed with Tat-CEA, both Tat-CEA and LLO, and both Tat-CEA and Tat-LLO, antibody titer to CEA and LLO, cytotoxic T lymphocyte activity and the frequency of IFN-${\gamma}$ producing T lymphocytes were measured. Results: Immunization using DC pulsed with both Tat-CEA and Tat-LLO protein showed the increasement of production of CEA-specific antibody in serum, cytotoxic T lymphocyte activity, the frequency of IFN-${\gamma}$ secreting T cells, compared with DC pulsed with both Tat-CEA and LLO. Furthermore the ratio of CD8+T cell to $CD4^+$ cell among CEA-specific T cells was increased in group pulsed with both Tat-CEA and Tat-LLO. Conclusion: These results suggested that DC vaccine using Tat-LLO could be used for the development of effective immunotherapy for the treatment of tumor.
Infectious bursal disease (IBD) caused by infectious bursal disease virus (IBDV) is a highly contagious viral disease in chicken. It causes heavy economic loss by immune suppression and high mortality. The IBDV, designated Avibirnavirus in the Family Birnaviridae, has a double-stranded RNA genome formed by two segments, segment A and segment B. Segment A encodes a 108 KDa polypeptide that is self-cleaved to produce pVP2, VP3 and VP4, and later pVP2 is cleaved to VP2. The VP2 contains the antigenic regions responsible for elicitation of neutralizing antibodies and VP3 is a major immunogenic protein of IBDV. In this study, monoclonal antibodies (MAbs) specific for IBDV were produced and characterized. All 15 MAbs were specific for IBDV and did not react with other viruses used in this study. The protein specificity of MAbs was determined by comparing the reactivity patterns of each MAb with IBDV VP2 and VP234 recombinant baculoviruses and Western blot analysis. As a result, 7 MAbs (1F5, 2C8, 2F4, 3C7, 4C3, 6F11, 6G5) and 5 MAbs (2A4, 2G2, 3F5, 3G2, 4F10) were specific for VP2 and VP3, respectively. The protein specificity of 3 MAbs (2B8, 3F7, 3F8) were not determined. Five (2C8, 2F4, 4C3, 6F11, 6G5) of the VP2-specific MAbs had a neutralizing activity against IBDV. Some MAbs reacted with IBDV-infected bursa of Fabricius by indirect fluorescence antibody (IFA) and immunohistochemistry (IHC) assay. The MAbs produced in this study would be used for diagnostic reagents for the detection of IBDV infection.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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