A novel HPLC method with electrochemical detection has been developed for the determination of recombinant human epidermal growth factor (rhEGF) in pharmaceutical products. rhEGF was separated from other components in formulation on a reversed-phase C18 column with 24% acetonitrile in 0.1 M phosphate buffer (pH 4.75). The optimum electrochemical oxidation of EGF was obtained at 0.85 V vs. Ag/AgCl in a glassy carbon working electrode due to electroactive tyrosine, tryptophan, methionine, and arginine residues. The quantitation range was from 1.0 to 200 ng of rhEGF with the linear correlation coefficient greater than 0.999. The method was successfully applied for the quantitation of rhEGF in a pharmaceutical preparation.
Recombinant human epidermal growth factor (rhEGF) was produced by E. coli BL21 harboring a plasmid pYHB101. The maximum production was 68.7 mg/l when the E. coli strain was cultured at 25$\circ$C for 48 hours in the modified MBL medium containing 10 g/l glucose with 1 mM IPTG induction at 2 hours after inoculation. The rhEGF was purified upto 267 folds by Amberlite XAD- 7 chromatography, ultrafiltration, and DEAE Sepharose fast flow ion exchange chromatography with an overall yield of 66.6%. The purified rhEGF was further separated into two fractions by HPLC. The N-terminal amino acid sequence of the second fraction was Asn-Ser-Asp-Ser-Glu-Cys-Pro-Leu-Ser-His. The effect of rhEGF on the DNA synthesis was examined using in vitro biological assay based on the incorporation of 5'-bromo-2'- deoxy-uridine (BrdU). The purified rhEGF shows no difference with natural human epidermal growth factor (nhEGF) in N-terminal amino acids residues and biological activity. From the results, we concluded that rhEGF produced from E. coli harboring the plasmid pYHB101 was apparently the same as nhEGF.
A simple assay method of recombinant human epidermal growth factor (rhEGF) in a pharmaceutical preparation was studied and validated by capillary electrophoresis (CE) using micellar electrokinetic chromatography (MEKC) techniques. Factors affecting the migration behavior and separation performances of the peptide; type of buffers pH, butler concentration, and concentration of sodium dodecyl sulfates (SDS) were investigated to optimize the analytical performance. CE was performed using running buffers 50.0 mM borate (pH 8.5) containing 12.5 mM SDS at 20 $mutextrm{V}$ of the applied voltage. Calibration curves for the rhEGF showed good linearity (r>0.999) over the wide dynamic range from 1.25 to $100{\mu\textrm{g}}/ml$. Sample analysis was performed by using standard addition method to eliminate the matrix effects of dosage vehicle. This method is assumed to be useful for quality control (QC) of various forms of pharmaceutical products of the peptide.
Recombinant human epidermal growth factor (rhEGF), a polypeptide of 53 amino acid residues, is subject to degradation by numerous enzymes, especially proteases, when it is applied on the skin for the treatment of open wound. Amastatin, aprotinin, bestatin, EDTA, EGTA, gabexate, gentamicin, leupeptin, and TPCK were investigated for the possible protease inhibitors, which may use to protect rhEGF from degradation by the enzymes in the skin. Skin homogenates containing protease inhibitors and rhEGF were incubated at $37^{\circ}C$ for 30 minutes. After the reaction was stopped with trifluoroacetic acid, the amount of rhEGF remaining in the sample was determined with an HPLC method. The percentages of rhEGF degraded, at the skin/PBS ratio of 0.25, in the mouse, rat, and human skin homogenate were 85%, 70%, and 46%, respectively. The degree of degradation of rhEGF in the cytosolic fraction was higher than that in the membrane fraction and these enzyme reactions were completed in 30 minutes. Bestatin, EGTA, and TPCK showed significant inhibitory effects on the degradation of rhEGF in the two fractions (p<0.05), while the other protease inhibitors had no significant inhibitory effects or, even resulted in deleterious effects. Therefore, the formulation containing one or several inhibitors among these effective inhibitors would be a promising topical preparation of rhEGF for the treatment of open wound.
To improve the stability of recombinant human epidermal growth factor (rhEGF) as therapeutic agent. the N-terminal PEGylated rhEGF (N-PEG-rhEGF) was prepared by site-specific bioconjugation and the stability was investigated in rat skin wound homogenates. Two different N-PEG-rhGEFs (N-PEG5K- and N-PEG20K-rhEGF) were successfully prepared with the yields of above 70%. The PEGylation site was directly confirmed by determining the molecular mass of Lys-C digested samples using MALDI- TOF MS. (omitted)
Multivesicular DepoFoam technology is best suited for the encapsulation and sustained release of water-soluble drugs. The purpose of the present study was to prepare multivesicular DepoFoam particles and investigated possibility of oral delivery of a peptide, human epidermal growth factor (rhEGF). The multivesicular DepoFoam particles containing rhEGF was prepared by a two step water-in-oil-in-water double emulsification process. (omitted)
Purpose: Oral mucositis is a common toxicity of radiation or chemotherapy, which is used a treatment for head and neck cancer. We investigated effects of recombinant human epidermal growth factor (rhEGF) on radiation-induced oral mucositis in rat model. Materials and Methods: Spraque-Dawley rats (7 per group) exposed to a single dose of 25 Gy (day 0) on their head, except for one group, were randomly divided into un-treated, vehicle-treated, and two rhEGF-treated groups. Rats were topically applied with rhEGF (15 or $30{\mu}g/oral$ cavity/day) or vehicle to their oral mucosa. Survival rate of rats, weight changes, and food intakes were examined from day 0 to 18 after radiation. Histology study was performed from oral mucosa of rats at day 7 and 18 after radiation. Results: rhEGF-treated groups (15 or $30{\mu}g/oral$) showed all survival rate 33%, whereas un-treated and vehicle-treated groups showed all survival rate 0% at the end of experiment. rhEGF-treated groups statistically had less weight loss compared to vehicle-treated group from day 2 to 7 after radiation. Food intake of rats with rhEGF treatment turned to increase at day 14 after radiation. At 7 day after radiation, un-treated and vehicle-treated groups showed severe pseudomembraneous or ulcerative oral mucositis. On the other hand, rhEGF-treated groups had no more than cellular swelling and degeneration of epidermal cells in oral mucosa of rats. Conclusion: These results suggest that rhEGF has significantly positive effects on radiation-induced oral mucositis in rats. rhEGF display a therapeutic potential on a clinical level.
The purpose of the present study was to prepare multivesicular liposomes with a high drug loading capacity and to investigate its potential applicability in the oral delivery of a peptide, human epidermal growth factor (rhEGF). The multivesicular liposomes containing rhEGF was prepared by a two-step water-in-oil-in-water double emulsification process. The loading efficiency was increased as rhEGF concentration increased from 1 to 5mg/mL, reaching approximately $60\%$ at 5 mg/mL. Approximately $47\%$ and $35\%$ of rhEGF was released from the multivesicular liposomes within 6 h in simulated intra-gastric fluid (pH 1.2) and intra-intestinal fluid (pH 7.4), respectively. rhEGF-loaded multivesicular liposomes markedly suppressed the enzymatic degradation of the peptide in an incubation with the Caco-2 cell homogenate. However, the transport of rhEGF from the multivesicular liposomes to the basolateral side of Caco2 cells was two times lower than that of the rhEGF in aqueous solution. The gastric ulcer healing effect of rhEGF-loaded multivesicular liposomes was significantly enhanced compared with that of rhEGF in aqueous solution; the healing effect of the liposomes was comparable to that of the cimetidine in rats. Collectively, these results indicate that rhEGF-loaded multivesicular liposomes may be used as a new strategy for the development of an oral delivery system in the treatment of peptic ulcer diseases.
Recombinant human epidermal growth factor (rhEGF) was produced by E. coli BL2l (DE3) harboring a plasmid pYHB101. The production of rhEGF was 44.5 mg/L when the E. coli BL2l (pYHB101) was cultured at 27$^{\circ}C$ for 48 hr in the modified MBL medium containing 10 $\mu\textrm{g}$/L glucose with 10 $\mu\textrm{m}$ IPTG/lactose induction at 2 hr after inoculation. It was shown that lactose is able to induce the rhEGF expression of E. coli BL2l (pYHB101) with the same efficiency as IPTG. In the batch culture system, when induced with 10 $\mu\textrm{m}$ lactose, E. coli BL2l (pYHB101) produced maximum 45 mg/L of the rhEGF at 28 hr culture in the modified MBL medium containing 10 g/L glucose. In the semi-fed batch culture system, the volumetric yield was 160 mg/L when the culture was added with 0.5% (w/v) lactose and 0.25% (w/v) yeast extract in the late logarithmic phase and 94.3% of rhEGF was secreted as soluble form. However, when the culture was added with them in the early logarithmic phase, the volumetric yield was 120 mg/L and 20.9% of rhEGF was found in cytoplasmic insoluble aggregates. It was found that the addition time of lactose was important for production of soluble rhEGF from E. coli BL21 (pYHB101).
DWP401, a recombinant human epidermal growth factor, was subcutaneously administered to ICR mice at the dose levels of 0, 0.04, 0.2 and 1.0 mg/kg/day (15rats/sex/group) in order to evaluate the subchronic toxicity. General observations, examinations for food and water consumption, ophthalmoscopy and urinalysis were carried out during the study. For the complete gross and microscopic examinations, 10 mice/ sex/group were sacrificed at the ends of the dosing period, and the remaining animals were sacrificed with a 5 week recovery period. Examinations for hematology and blood biochemistry were also carried out at the time of recovery period. Based on the results, it was thought that the target tissue or organs were mesothelial cell, injection site, spleen, adrenal gland, ovary and transitional epithelial cell of urinary tract, and no observed toxic level of DWP401 was 0.04 mg/kg while definite toxic dose level might be 0.2 mg/kg.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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