The poliovirus Sabin 1 strain has features that make it a particularly attractive live recombinant mucosal vaccine vehicle. Sabin 1 cDNA was manipulated to have multiple cloning sites and a viral specific 3C-protease cutting site at the N-terminal end of the polyprotein. The gene for the N-terminal 169 amino acids of the HIV-1 p24 was cloned into the multiple cloning site of the manipulated Sabin cDNA. A recombinant progeny virus was produced from HeLa cells when it was transfected with the RNA synthesized from the p24-Sabin chimeric cDNA. The recombinant progeny virus expresses substantial amounts of the HIV-1 p24 protein, which was clearly detected in the infected cell lysates and culture supernatants in Western blot experiments with rabbit anti-p24 serum and AIDS patients' sera. Differing from the Mahoney strain, the recombinant Sabin 1 poliovirus maintained the foreign gene stably during the subsequent passages. Replication capacity was about 1 to 1.5 log lower than that of the wild-type Sabin 1. Other physicochemical stability characteristics of the recombinant virus were similar to that of the wild-type Sabin 1. These results suggest that the manipulated Sabin 1 poliovirus can be used as a live viral vaccine vector for the development of mucosal vaccines.
In order to design the oral vaccine delivery system, we prepared the alginate micro spheres containing GFP (green fluorescent protein) as a model drug by spray method. To optimize the preparation conditions of microspheres, we investigated the effects of various parameters including nozzle pressure, nozzle opening angle, and concentrations of sodium alginate and calcium chloride. The prepared microspheres were evaluated by measuring their sizes, loading efficiency, and morphology. The particle size of microspheres was affected by the concentration of sodium alginate and calcium chloride, nozzle pressure, and nozzle opening angle. As the concentration of sodium alginate increased, GFP loading efficiency and particles size of microsphere also increased. However, it was observed to be difficult to spray the sodium alginate solution with concentration greater than 1.5% (w/v), due to high viscosity. The pressure over $3\;kgf/cm^2$ didn't affect the size of particles. As a result, the spraying method enabled us to prepare microspheres for oral vaccine delivery system. In this study, microspheres prepared with 1% (w/v) sodium alginate had greater loading efficiency and better spherical shape.
The maximum adsorption/desorption conditions and the adsorption mechanism of globular proteins to vaccine adjuvants were determined. The maximum adsorption ratio of protein to the $Al^{3+}$ content of aluminum oxyhydroxide and the optimal adsorption pH are 2:1 (${\mu}g:{\mu}g$) for bovine serum albumin (BSA) at pH 6.0 and 2.5:1 (${\mu}g:{\mu}g$) for immunoglobulin G (IgG) at pH 7.0, respectively. The maximum adsorption ratio onto aluminum phosphate gel was 1.5:1 (${\mu}g$ Protein:${\mu}g$$Al^{3+}$) at pH 5.0 for both BSA and IgG. Adsorption of the native globular proteins, BSA and IgG, to aluminum oxyhydroxide and aluminum phosphate gel was reversible as a function of pH. Complete desorption of these proteins from aluminum phosphate gel was observed at alkaline pH, whereas only 80~90% removal from aluminum oxyhydroxide was achieved with alkaline pH and 50 mM phosphate buffer. We conclude that electrostatic and hydrogen bonding interactions between the native proteins and adjuvants are important binding mechanisms for adsorption, and that the surface charge of the protein and the colloid components control the maximum adsorption conditions.
Kim, Seon-Hee;Bae, Young-An;Seoh, Ju-Young;Yang, Hyun-Jong
Parasites, Hosts and Diseases
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제55권3호
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pp.255-267
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2017
Malaria is an infectious disease affecting humans, which is transmitted by the bite of Anopheles mosquitoes harboring sporozoites of parasitic protozoans belonging to the genus Plasmodium. Despite past achievements to control the protozoan disease, malaria still remains a significant health threat up to now. In this study, we cloned and characterized the full-unit Plasmodium yoelii genes encoding merozoite surface protein 1 (MSP1), circumsporozoite protein (CSP), and Duffy-binding protein (DBP), each of which can be applied for investigations to obtain potent protective vaccines in the rodent malaria model, due to their specific expression patterns during the parasite life cycle. Recombinant fragments corresponding to the middle and C-terminal regions of PyMSP1 and PyCSP, respectively, displayed strong reactivity against P. yoelii-infected mice sera. Specific native antigens invoking strong humoral immune response during the primary and secondary infections of P. yoelii were also abundantly detected in experimental ICR mice. The low or negligible parasitemia observed in the secondary infected mice was likely to result from the neutralizing action of the protective antibodies. Identification of these antigenic proteins might provide the necessary information and means to characterize additional vaccine candidate antigens, selected solely on their ability to produce the protective antibodies.
The purpose of this study was to examine antibody titers to structural protein (SP) of the foot-and-mouth disease (FMD) virus after vaccination in animals of the Seoul zoo. After the initial inoculation of FMD vaccine to the susceptible animals of the zoo, a total of 235 blood samples were collected from 42 species of zoo animals during treatment or necropsy. All samples were tested by using enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). The overall positive rate of SP antibodies against FMD virus was 94.0% (221/235). However, the positive rates varied according to animal species. The results of positive rates in 30 species were 100% but in 12 species were 50-94.7%. We showed that most animals that have received FMD vaccine in Seoul zoo have been reached to the level of herd immunity against FMD virus after the vaccination. To the best of our knowledge, this study would be the first report for monitoring the vaccine-induced SP antibody titers against FMD virus after vaccination in various zoo animal species in Korea.
Streptococcus pneumoniae remains a leading cause of invasive infections including bacteremia and meningitis, as well as mucosal infections such as otitis media and pneumonia among children and adults. The 7-valent pneumococcal conjugate vaccine (PCV7) was licensed for use among infants and young children in many countries including Korea. The routine use of PCV7 has resulted in a decreased incidence of invasive pneumococcal disease (IPD) by the vaccine serotypes among the vaccinees and substantial declines in IPD among unvaccinated populations such as older children and adults as well. In addition, there are increasing evidences to suggest that routine immunization with PCV7 is changing the epidemiology of pneumococcal diseases such as serotype distribution of IPD, nasopharyngeal colonization, and antibiotic resistance patterns. In contrast, there is an increase in the number of IPDs caused by nonvaccine serotypes, though it is much smaller than overall declines of vaccine serotype diseases. Several vaccines containing additional serotypes have been developed and tested clinically in order to expand the range of serotypes of Streptococcus pneumoniae. Recently two new pneumococcal protein conjugate vaccines, 10-valent pneumococcal conjugate vaccine (PCV10) and 13-valent pneumococcal conjugate vaccine (PCV13), have been approved for use in several countries including Korea. This report summarizes the recommendations approved by the Committee on Infectious Diseases, the Korean Pediatric Society.
Transgenic plants have been studied as delivery system for edible vaccine against various diseases. Edible plant vaccines have several potential advantages as follows: an inexpensive source of antigen, easy administration, reduced need for medical personnel, economical to mass produce and easy transport, heat-stable vaccine without refrigerator, generation of systemic and mucosal immunity and safe antigen without fetal animal-virus contaminants. The amount of recombinant antigens in transgenic plants ranged from 0.002 to 0.8% in total soluble protein, depending on promoters for the expression of interested genes and plants to be used for transformation. Throughout the last decade, edible plant vaccine made notable progresses that protect from challenges against virus or bacteria. However edible plant vaccines have still problems that could be solved. First, the strong promoter or inducible promoter or strategy of protein targeting could be solved to improve the low expression of antigens in transgenic plants. Second, the transformation technique of target plant should be developed to be able to eat uncooked. Third, marker-free vector could be constructed to be more safety. In this review we describe advances of edible plant vaccines, focusing on the yields depending on plants/promoters employed and the results of animal/clinical trials, and consider further research for the development of a new plant-derived vaccine.
Leptospirosis is a worldwide zoonotic disease caused by pathogenic Leptospira, a genus of which more than 250 serovars have been identified. Commercial bacterin vaccines are limited in that they lack both cross-protection against heterologous serovars and long-term protection. This study investigated in mice the immunogenicity of an anti-leptospirosis vaccine, using the outer membrane proteins LipL32 and Loa22 as antigens. The immunogenicity of this vaccine formulation was compared with those induced by vaccines based on LipL32 or Loa22 alone. A DNA-encapsulated chitosan nanoparticle was used for in vivo DNA delivery. Using a unique DNA plasmid expressing both lipL32 and loa22 for vaccination, higher antibody responses were induced than when combining plasmids harboring each gene separately. Therefore, this formulation was used to test the immunogenicity when administered by a heterologous prime (DNA)-boost (protein) immunization regimen. The specific antibody responses against LipL32 (total IgG and IgG1) and Loa22 (IgG1) were higher in mice receiving two antigens in combination than in those vaccinated with a single antigen alone. Although no significant difference in splenic CD4+ T cell proliferation was observed among all groups of vaccinated mice, splenocytes from mice vaccinated with two antigens exhibited higher interferon-γ and IL-2 production than when using single antigens alone upon in vitro restimulation. Taken together, the immunogenicity induced by LipL32 and Loa22 antigens in a heterologous primeboost immunization regimen using chitosan as a DNA delivery system induces higher immune response, and may be useful for developing a better vaccine for leptospirosis.
Live bacterial vector vaccines are one of the most promising vaccine types and have the advantages of low cost, flexibility, and good safety. Meanwhile, protein secretion systems have been reported as useful tools to facilitate the release of heterologous antigen proteins from bacterial vectors. The twin-arginine translocation (Tat) system is an important protein export system that transports fully folded proteins in a signal peptide-dependent manner. In this study, we constructed a live vector vaccine using an engineered commensal Escherichia coli strain in which amiA and amiC genes were deleted, resulting in a leaky outer membrane that allows the release of periplasmic proteins to the extracellular environment. The protective antigen proteins SLY, enolase, and Sbp against Streptococcus suis were targeted to the Tat pathway by fusing a Tat signal peptide. Our results showed that by exploiting the Tat pathway and the outer membrane-defective E. coli strain, the antigen proteins were successfully secreted. The strains secreting the antigen proteins were used to vaccinate mice. After S. suis challenge, the vaccinated group showed significantly higher survival and milder clinical symptoms compared with the vector group. Further analysis showed that the mice in the vaccinated group had lower burdens of bacteria load and slighter pathological changes. Our study reports a novel live bacterial vector vaccine that uses the Tat system and provides a new alternative for developing S. suis vaccine.
Kim Young-Sook;Kim Mi-Young;Kang Tae-Jin;Kwon Tae-Ho;Jang Yong-Suk;Yang Moon-Sik
Journal of Plant Biotechnology
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제7권2호
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pp.97-103
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2005
This study was carried out to obtain basic information for gene manipulation in potent edible tobacco (Nicotiana tabacum cv. TI 516). N. tabacum cv. TI 516 is a plant for a possible candidate to use as an edible vaccine, since it contains a low level of nicotine. The effective plant regeneration system through leaf disc culture was achieved using a MS basal medium supplemented with 0.1 mg $1^{-1}$ NAA and 0.5 mg $1^{-1}$ BA. In order to transform the N. tabacum cv. TI 516 with the green fluorescent protein (GFP) gene, Agrobacterium tumefaciens LBA 4404 containing the GFP gene was used. Genomic PCR confirmed the integration of the GFP gene into nuclear genome of transgenic plants. Expression of the GFP gene was identified in callus, apical meristem and root tissue of transgenic N. tabacum cv. TI 516 plants using fluorescence microscopy. Western blot analysis revealed the expression of GFP protein in the transgenic edible tobacco plants. The amount of GFP protein detected in the transgenic tobacco plants was approximately 0.16% of the total soluble plant protein (TSP), which was determined by ELISA.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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