The purpose of this study is the investigation of chemical properties of wool treated with oxidants and protease at low temperature. The chemical degradation of the fibers were investigated by measuring $\alpha$-amimo acid contents and FT-IR analysis. In addition, urea-hydrogensulfite solubility was measured to compare to the oxidation and protease treated wool. The results were as follows. 1) By the oxidation of wool, cystine is oxidised to cysteic acid by way of the intermediate oxides, cystine-S-monooxide and cystine-S-dioxide, in the case hydrolysis catalysed by the protease catalyse. Also, $\alpha$-amimo acid contents is increased, and urea-hydrogensulfite solubility was lower than that of untreated wool. This chemical degradation of wool was occurred due to oxidate hydrolysis in the order of permonosulfate>dichloroisocyanuric acid$\geq$chlorine. 2) The chemical degradation of wool was accelerated by the protease treatment of oxidized wool. Oxidation of wool is considered to make the fiber more susceptibled to enzymatic attact by opening disulphide bond within wool. Enzymatic attact was effectively directed to the wool oxidised by permonosulfate.
식품폐수처리장의 활성슬러지와 논, 밭의 토양에서 우수한 protease 생성 균주을 분리 선별하였다. 이 중 효소활성이 우수한 PB16은 그람 음성, 간균이며 protease activity는 6.49 U/ml이었다. 생리, 생화학적 특성 및 16S rRNA 염기서열분석을 실시한 결과, Aeromonas hydrophila (99.0%) 인 것으로 확인 되었다. Bioscreen C를 사용한 최적 성장조건 평가는 합성폐수에 vitamin과mineral을 첨가한 배지의 중식속도(0.26 $h^{-1}$)가 무 첨가배지(0.21 $h^{-1}$)보다 높았으며, 분리균주의 합성폐수 유기물 제거능 실험에서는 초기 soluble-CODcr 2,472 mg/l인 고농도 합성폐수를 1일, 3일 반응 후 각각 59, 87%의 제거율을 나타내었다.
It is well known that the Escherichia coli inner membrane-bound protease DegS is a periplasmic stress sensor for unfolded outer membrane proteins (OMPs). Previous studies have also shown that the outer membrane protease OmpT activates plasminogen in vitro and this may be exploited by bacteria in the course of pathogenesis. However, there has been no research on the plasminogen activation ability of the important periplasmic protein DegS. Accordingly, in this study, the whole-length and truncated degS genes were separately overexpressed in Escherichia coli, the recombinant proteins purified by affinity chromatography, and their plasminogen activator role tested in vitro. The results suggested that the whole-length DegS was able to activate plasminogen on a plasma plate. The truncated form of DegS (residues 80-345), designated ${\Delta}DegS$, also acted as a plasminogen activator, as confirmed by different assays. The serine protease property of ${\Delta}DegS$ was verified based on the complete inhibition of its enzyme activity by PMSF (phenylmethanesulfonyl fluoride). Therefore, the present results indicate that DegS is a plasminogen activator in vitro.
A periplasmic endoprotease, named protease Pi, was purified to homogeneity from Escherkchia coli by conventional procedure with insulin as substrate. This enzyme degrades insulin and glucagon to trichloroacetic acid-soluble meterials, but shows little or no hydrolysis of bovine serum albumin, casein or globin. Its molecular weight was 110, 000 when determined by gel filtration on Sephacryl S-300 and was 105, 000 when estimated by polyacrylamide gel electrophoresis in the presence of sodium dodecyl sulfate. Thus, it appears to be single polypeptide. This snzyme is metalloprotease, since it is completely inhibited by o-phenanthroline and can be activated by addition of divalent metal cations, such as $Mg^{2+}\;and\;Co^{2+}$. It is destinct from protease Ci, a cytoplasmic insulin degrading enzyme, since protease Pi is localized to the periplasm. Since protease Pi selectively degrades GTP cyclohydrolase I, it appears to play a role in the regulation of pteridine biosynthesis.
Halotolerant protease produced by Halomonas marisflava KCCM 10457 was partially purified through ammonium sulfate precipitation and Sephacryl S-200HR gel permeation chromatography. Optimal pH and temperature of protease were 11.0 and $45^{\circ}C$, respectively. Enzyme activity was inhibited by $Cu^{2+}$, $Hg^{2+}$, $Fe^{2+}$, and $Fe^{3+}$, and selectively inhibited by p-chloromercuribenzoic acid (PCMB), suggesting this enzyme is cysteine protease. The enzyme is halotolerant, because it retained 77% of original activity in presence of 3.33 M NaCl. The protease showed broad substrate specificity to various natural proteins; BSA, casein, egg albumin, gelatin, and hemoglobin.
Entomopathogenic nematodes are used for insect control. Herein, an extracellular protease was partially purified from a culture supernatant of Xenorhabdus nematophilus, a symbiotic bacterium of an entomopathogenic nematode, Steinernema glaseri: using precipitation with $80\%$ v/v isopropyl alcohol followed by gel permeation chromatography with a packed Sephacryl S-300 HR media. The partially purified protease exhibited maximal activity at pH 7 in the presence of 1 mM $CaCl_2$. The protease was identified as a metallo-protease based on the inhibition of its activity by the metal chelating agent, EDTA.
A pineapple protease, bromelain, was used to improve the dyeing properties of protein fibers such as wool and silk. The optimal condition for the activity of the pineapple protease was about $60^{\circ}C$ at pH 7. The wool and silk were treated with the protease extracted from a pineapple and the K/S values of the dyed wool and silk were measured using a spectrophotometer in order to compare the dye uptake. The protease treatment enhanced the dyeing properties of protein fibers without severe changes in mechanical properties. The surface appearances of protease-treated fibers were observed by microscopy.
Gandhi Pragash, M.;Narayanan, K. Badri;Naik, P. Ravindra;Sakthivel, N.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제19권1호
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pp.99-107
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2009
Strain PUPC1 produces an antifungal protease as well as plant growth promoting enzymes such as 1-aminocyclopropane-1-carboxylate (ACC) deaminase and phosphatase. Morphological, cultural, and physiological characteristics as well as 16S rRNA gene-sequence-based phylogenetic analysis confirmed the taxonomic affiliation of PUPC1 as Chryseobacterium aquaticum. The optimum growth of PUPC1 was observed at pH 6.0 and $30^{\circ}C$, and maximum protease production was observed in medium B amended with 1% tryptone, 0.5% sucrose, and 0.005% $MnCl_2$. The protease was purified by ammonium sulfate precipitation, Sephadex G-75 gel filtration chromatography, and electroelution from preparative SDS-PAGE. The protease had a molecular mass of 18.5 kDa. The optimum pH and temperature stability of the protease were pH 5.0-10.0 and temperature $40-70^{\circ}C$. Chryseobacterium aquaticum PUPC1 and its protease showed a broad-spectrum antifungal activity against phytopathogenic fungi. Strain PUPC1 also exhibited plant growth promoting traits. The objective of the present investigation was to isolate a strain for agricultural application for plant growth promotion and biocontrol of fungal diseases.
Strain Priestia flexa DMP08, isolated from traditional Korean fermented vegetables kimchi, exhibits protease activity and lipase activity. The complete genome of strain DMP08 includes a single circular 3,999,911-bp chromosome without plasmids. The G+C content of the genome is 38.1 mol%. The genome includes 38 protease-and 3 lipase-encoding genes.
This study was conducted to investigate the effects of protease supplementation and different nutrient density of diets in growing-finishing pigs. A total of one hundred-eight crossbred growing pigs ([Landrace × Yorkshire] × Duroc) with an initial body weight (BW; 18.74 ± 3.46 kg) were used for 15 weeks. Pigs were randomly assigned to six dietary treatments with 6 replicates of 3 pigs per pen in a 3 × 2 factorial through the following arrangement: Three groups of protease (1, Basal diets; 2, Protease A: 125 mg/kg protease derived from Streptomyces sps; 3, Protease B: 100 mg/kg protease derived from Bacillus licheniformis) at two different nutrient density diets (1, Basal requirement; 2, 0.94%-0.98% higher than requirement in dietary protein and 50 kcal/kg in energy). High nutrient (HN) diets showed higher average daily gain (ADG) (p < 0.05) and apparent total tract digestibility (ATTD) of crude protein (CP) (p < .0001) compared to basal nutrient (BN) diets during growing periods. Supplementation of protease showed higher BW (p < 0.05) and ADG (p < 0.05) compared to non-supplementation of protease during growing periods. Also, supplementation of protease showed higher ATTD of CP (p < 0.01), ATTD of gross energy (p < 0.05) and decreased blood urea nitrogen (BUN) level (p = 0.001) compared to non-supplementation of protease during finishing periods. Pigs which fed the protease showed decreased ammonia (NH3) emissions (p < 0.05) during experiment periods and decreased hydrogen sulfide (H2S) emissions (p < 0.01) during finishing periods. Interactions between nutrient density and protease were observed, which decreased the feed conversion ratio (p < 0.05) in HN diets without protease compared to BN diets without protease during weeks 4 to 6. Also, interaction between nutrient density and protease was observed, which resulted in improved ATTD of CP (p < 0.01) in response to PTA supplementation with HN diets during the finishing period. In conclusion, supplementation of protease reduces NH3 in feces and BUN in whole blood by increasing the digestibility of CP and improves growth performance. Also, diets with high nutrient density improved growth performance and nutrient digestibility in growing periods.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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