Homogeneous human deoxycytidine kinase was purified in one step from a variety of spontaneous human leukemic cells (T-ALL, B-ALL, B-CLL, AML, CML), and from cultured T-lymphoblast cells (MOLT-4) using the newly developed affinity medium, $dCp_4$-Sepharose. Starting with an ammonium sulfate fraction, purification was achieved in one step with the kinase being eluted from a column by the end product inhibitor, dCTP. The purified deoxycytidine kinase from T-ALL cells phosphorylated deoxyadenosine and deoxyguanosine, as well as deoxycytidine. The enzyme purified from T-ALL and B-CLL cells yielded one major band with a molecular weight of 52 kDa determined by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. AML and CML cells yielded one 52 kDa band and an extra band of 30 kDa molecular weight. On the other hand, B-ALL and MOLT-4 cells showed a low molecular weight band of 30 kDa only. However, the electrophoretic mobilities of enzymatic activity in 12% non-denaturing gels were identical for the dCyd kinase from all different kinds of leukemic cell lines, except that the B-ALL, B-CLL, and MOLT-4 cell preparations had an extra minor peak, all at the same position. dAdo and dCyd phosphorylating activities comigrated indicating that these activities are all associated with the same protein. Two new methods, a disk implantation method and a nitrocellulose powder method were used with a small amount of enzyme protein to raise polyclonal antibodies against dCyd kinase purified from T-ALL cells.
Kim, Youn-Kyu;Choi, In-Hak;Ryu, Chun-Jeih;Hong, Hyo-Jeong
BMB Reports
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v.30
no.3
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pp.177-181
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1997
We constructed a single-chain immunoglobulin in which the carboxyl end of the heavy chain variable domain is covalently joined to the amino terminus of the light chain variable domain via peptide linker and the carboxyl end of the light chain variable domain is linked to human ${\gamma}1$ Fc region through the hinge region. The molecule was expressed in Chinese hamster ovary cells, assembled into a dimeric molecule and secreted into the culture medium. The dimeric molecule (2E11) was purified from the culture supernatant by affinity chromatography on Protein G-Sepharose column. The size of the unreduced or reduced protein was the expected molecular weight of approximately 120 or 60 kDa, respectively, as assessed by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The antigen-binding affinity of 2E11 was almost the same as that of a native antibody counterpart (CS131A), suggesting that the single-chain immunoglobulin may function like a native antibody.
To screen chaperone proteins from Schizosaccharomyce pombe (S. pombe), we prepared recombinant citrate synthase of the fission yeast as a substrate of anti-aggregation assay. Purified recombinant citrate synthase showed citrate synthase activity and was suitable for the substrate of chaperone assay. Several heat stable proteins including aspartyl aminopeptidase (AAP) for candidates of chaperone were screened from the supernatant fraction of heat-treated crude extract of S. pombe. The purified AAP migrated as a single band of 47 kDa on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The native size of AAP was estimated as 200 kDa by a HPLC gel permeation chromatography. This enzyme can remove the aspartyl residue at N-terminus of angiotensin I. In addition, AAP showed the heat stability and protected the aggregation of citrate synthase caused by thermal denaturation. This study showed that S. pombe AAP is a moonlight protein that has aspartyl aminopeptidase and chaperone activities.
Cornish, M. Lynn;O' Leary, Stephen J.B.;Garbary, David J.
ALGAE
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v.28
no.1
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pp.121-129
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2013
Intact phycobilisomes from a wild-type red Chondrus crispus and its vegetatively derived green mutant were isolated by centrifugation through a discontinuous sucrose density gradient. Pigment composition was subsequently characterized by spectrophotometry. Vegetative thalli of the two strains grown together for six months in the laboratory resulted in different pigment profiles. Two pigmented phycobilisome bands appeared in the sucrose gradient of the wild-type alga, a purple coloured one, and a pink one, whereas only a single blue band appeared in the gradient of the green mutant. Spectrophotometric and fluorescence analyses identified the phycobiliprotein composition of the purple band as the typical phycoerythrin-phycocyanin-allophycocyanin complement in the wild-type, but there was no detectable phycoerythrin present in the blue band of the green mutant. Sodium dodecyl sulphate, preparative polyacrylamide gel electrophoresis analysis confirmed the presence of allophycocyanin subunits in all extracts, but firm evidence of an R-phycoerythrin linker polypeptide in the blue band was missing. These results highlight the ability of C. crispus to adapt to a phycoerythrin deficiency by adjusting light harvesting pigment ratios.
Kim, Ji-Han;Lee, Ha-Jung;Shin, Dong-Min;Kim, Tae-Kyung;Kim, Young-Boong;Choi, Yun-Sang
Food Science of Animal Resources
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v.38
no.5
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pp.1101-1108
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2018
The aim of this study was to investigate the effects of dry-aging (DA) and the cooking process on the myofibril protein functionalities and in vitro digestibility of proteins in beef loin. Six sirloins from beef were dry-aged for 28 d, and the control group (n=6) was analyzed 2 d postmortem for this study. Dimensional changes (reduction of thickness and surface shrinkage) after cooking were significantly greater in the control group than the DA group, whereas the shear force of the DA group was significantly lower than that of the control. Effect of cooking on aggregation, hydrophobicity, and in vitro digestibility were significantly higher in the DA group than in the control. After cooking, the protein in DA sirloins was more oxidized than in the control samples. According to the sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis result, the low molecular weight bands (below 17 kDa) increased in the DA group, finding that the protein characteristics of dry-aged beef was affected by cooking.
The physicochemical characteristics and oxidative stability of wet-aged and dry-aged pork cuts were investigated at different aging periods (1, 7, 14 and 21 d). Samples were assigned into four groups in terms of shoulder blade-wet aging (SW), shoulder blade-dry aging (SD), belly-wet aging (BW), and belly-dry aging (BD). SD showed significantly higher pH at 21 d of aging than the other samples. Wet-aged cuts had significantly higher released water (RW) %, lightness ($L^*$) and shear force compared to the dry-aged meats. Sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) analysis showed greater degradation of proteins for dry-aged cuts than the wet-aged cuts. At the end of aging, wet-aged cuts showed significantly lower thiobarbituric acid-reactive substances (TBARS) value than the dry-aged samples, indicating higher oxidative stability for wet-aged pork cuts. However, dry-aging led to higher degradation of proteins resulting in increased water-holding capacity (WHC) and decreased shear force value.
The effect of concentrations of phosphate buffer and acrylonitrile, pH, and various salts on the operational stability of the immobilized cells of Brevibacterium CH2 in a packed bed reactor were investigated. The effects of salts and carriers on the swelling of the immobilized beads during hydrolysis in a columnreactor were also investigated. Immobilization of the cells in Ba-alginate was more desirable than those in polyacrylamide and Ca-alinate for the swelling of the immobilized beads and the desired quality of the acrylamide produced. High quality acrylamide was produced using the Ba-alginate beads in a recycle fed-batch reactor without using an isotonic substrate. The conversion yield was nearly 100%, including a trace amount of acrylic acid produced as a by-product.
Acetylxylan esterase II was produced by Escherichia coli HB101 harboring the recombinant plasmid pKMG7 which contained the estII gene of Bacillus stearothermophilus. Optimal medium for the production of the acetylxylan esterase by E. coli HB101/pKMG7 was determined to contain 0.5% galactose, 1% yeast extract and 1% NaCl. The enzyme produced was purified to homogeneity using a combination of 20-50% ammonium sulfate precipitation, DEAE-Sepharose CL-6B chromatography and Sephacryl S-200 gel filtration. The temperature and pH optimum of the esterase were 45$\circ$C and pH 6, respectively. The essential amino acids for the esterase activity were found to be methionine, serine, and cysteine. Molecular weight of the esterase was determined to be 28 kDa by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, and 120 kDa by gel filtration. This suggests that the functional enzyme is a homomeric tetramer. The esterase had an isoelectric point of pH 3.4. The N-terminal amino acid sequence of the enzyme was Ala-Leu-Phe-Glu-Ser-Arg-Phe-Phe-Ser-Glu-Val-Leu-Gly-Leu.
The intracellular alginase from Vibrio sp. AL-145 was purified by ion chromatography on DEAE-Cellulose column, Q-Sepharose column, and gel filtration on Sephadex G-100 column. The optimum pH and temperature for the activity of the purified intracellular enzyme were 8.0 and 37$\circ$C, respectively. The enzyme was stable at the pH range of 7.5-8.5, and at 30$\circ$C for 30 min. The molecular weight of the intracellular enzyme was estimated to be about 23, 000 daltons by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. NaCl was required for enzyme activity and the optimum concentration was 0.5 M. The activity of intracellular enzyme was inhibited by Co$^{2+}$, Hg$^{2+}$, Zn$^{2+}$, 0-phenanthroline, $\rho$-CMB, EDTA and iodoacetate, and stimulated by Ca$^{2+}$, L-cysteine and 2-mercaptoethanol. This enzyme was an alginase specifically degrading alginic acid.
Isolation, purification and molecular properties of adult specific protein (ASP) were investigated in the silkworm, Bombyx mori. ASP was purified from adult haemolymph by gel filtration on Sephadex G-100 and ion exchange chromatography on CM52. The preparation was shown to be homogeneous by native-PAGE and immunoelectrophoresis. The purified protein was consisted of two different subunits with molecular weights of 19.5kDa and 17.5kDa, and contained no sugars and no lipids.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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