Bretylium tosylate is a quaternary ammonium compound used for the treatment of ventricular fibrilation in humans. It is advantageous to other cationic compound in the study of biliary excretion in that negligible amount is bound to plasma protein and metabolite is not likely is to be formed. Some researchers reported that the formation of ion-pair complex caused to increase the lipothilicity of cationic compound. The partition of bretylium between water and organic phase was increased with the addition of sodium taurodeoxycholate. Also sensitive gas chromatographical assay procedure using flame ionization detector was studied. This procedure can detect as low as 0.1 mg/ml using 0.1 ml biological sample, but contamination by previous injection is the major problem of this method.
Kim, Jung Soo;Kim, Yunjeong;Han, Song-Hee;Jeon, Ji-Young;Hwang, Minho;Im, Yong-Jin;Kim, Jung Hyun;Lee, Sun Young;Chae, Soo-Wan;Kim, Min-Gul
Journal of Ginseng Research
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v.37
no.1
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pp.135-141
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2013
A rapid, sensitive and selective analytical method was developed and validated for the determination of compound K, a major intestinal bacterial metabolite of ginsenosides in human plasma. Liquid-liquid extraction was used for sample preparation and analysis, followed by liquid chromatography tandem spectrometric analysis and an electrospray-ionization interface. Compound K was analyzed on a Phenomenex Luna C18 column ($100{\times}2.00$ mm, 3 ${\mu}m$) with the mobile phase run isocratically with 10 mM ammonium acetate-methanol-acetonitrile (5:47.5:47.5, v/v/v) at a flow rate of 0.5 mL/min. The method was validated for accuracy (relative error <12.63%), precision (coefficient of variation <9.14%), linearity, and recovery. The assay was linear over the entire range of calibration standards i.e., a concentration range of 1 ng/mL to 1,000 ng/mL ($r^2$ >0.9968). The recoveries of compound K after liquid-liquid extraction at 1, 2, 400, and 800 ng/mL were $106.00{\pm}0.08%$, $103.50{\pm}0.19%$, $111.45{\pm}5.21%$, and $89.62{\pm}34.46%$ for intra-day and $85.40{\pm}0.08%$, $94.50{\pm}0.09%$, $112.50{\pm}5.21%$, and $95.87{\pm}34.46%$ for inter-day, respectively. The lower limit of quantification of the analytical method of compound K was 1 ng/mL in human plasma. The developed method was successfully applied to a pharmacokinetic study of compound K after oral administration in ten of healthy human subjects.
Park, Hyoung-Jin;Kwon, Hyeok-Yil;Lee, Yun-Lyul;Shin, Won-Im;Suh, Sang-Won;Oh, Yang-Suk
The Korean Journal of Physiology
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v.23
no.1
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pp.89-98
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1989
In order to produce antibody for use in radioimmunoassay of gastrin in physiological concentration, four rabbits of New Zealand white were immunized with synthetic human gastrin-17-I conjugated to hemocyanin with EDC. Among them, only one rabbit produced antibody that could bind 50% of $^{125}I-gastrin$ at a final dilution of 1:25,000. $^{125}I-gastrin$ was prepared with synthetic human gastrin-17-I and $NaI^{125}$ by lactoperoxidase technique. The product was then purified on a column of Sephadex Gl5/G5O (7:3, w/w) followed by a column of DEAE sephadex A-25. The specific radioactivity of the purified $^{125}I-gastrin$ was in the range of 347-1429 ${\mu}Ci/nmole$ when determined by the self-displacement method. The effective affinity constant $(K_{eff})$, total binding sites (N), heterogeneity index $({\alpha})$ and average affinity constant $(K_{0})$ of the anti-gastrin serum calculated from Scatchard plot as well as Sips plot were $1.77{\times}10^{11}/M$, 255 nM, 0.84 and $0.79{\times}10^{11}/M$, respectively. When radioimmunoassay was performed with the anti-gastrin serum, it was confirmed that the mean concentration of gastrin immunoreactivity in plasma was increased by feeding in humans and rats, and also increased by bombesin administration in rats. The results indicate that the anti-gastrin serum produced in the present investigation is suitable for radioimmunological determination of gastrin in physiological concentration.
The mitogen-activated protein(MAP) kinase signal transduction pathway represents an important mechanism by which mitogen, such as serum and PMA, regulate cell proliferation and differentiation. Target substrates of the MAP kinase are located within several compartments containing plasma membranes and nucleus. We now report that serum addition induces proliferation of the P388 murine leukemia cell, but PMA does not, while both serum and PMA treatment cause translocation of the MAP kinase, mainly p42$^{mapk}$ isoform, from cytosol into the nucleus, which was monitored by immunoblot analysis using polyclonal anti-ERK1 antibodies. We investigated whether the MAP kinase was capable of phosphorylating c-Jun protein and GST-fusion proteins, the P562$^{kk}$N-terminal peptides (1-77 or 1-123 domain) of the T cell tyrosine kinase, using the partially purified MAP kinase by SP-sephadex C-50, phenyl superose and Mono Q column chromatography. We found that the partially purified MAP kinase was able to phosphorylate c-Jun protein and the GST-fusion protein expressed using E.coli DH5$\alpha$ which is transformed with pGEX-3Xb plasmid vector carrying of p562$^{kk}$N-terminal peptide-encoding DNA. These results imply that tyrosine kinase receptor/Ras/Raf/MAP kinase pathway is a major mechanism for mitogen-induced cell proliferation in P388 murine leukemia cell and that the various MAP kinase isoforms may have their own target substrates located in distinct subcellular compartments.
Cation exchange separation and inductively coupled plasma atomic emission spectrometric(ICP-AES) determination of ruthenium in HCl solutions were studied to quantitatively determine ruthenium in spent nuclear fuels. Ruthenium-bearing samples were dissolved with the mixed acid solution(9 : 1 mole ratio, HCl-HNO$_3$) using an acid digestion bomb. Based on the absorption spectra and ion exchange behaviour of ruthenium in hydrochloric acid media, its possible chemical species were discussed. On a cation exchange column (0.7 ${\times}$ 8.0 cm) packed with AG 50W ${\times}$ 8(100~200 mesh) and equilibrated with 0.5 M HCl, ruthenium was eluated with 0.5 M HCl while uranium was retained on the column. The established separation method was applied to a simulated spent nuclear fuel and resulted in the recovery of 98.5% with a relative standard deviation of 0.7%.
A rapid and sensitive method for determining usnic acid of Lethariella cladonioides in rat was established using high performance liquid chromatography (HPLC) quadrupole time-of-flight (QTOF) tandem mass (MS/MS). Rat plasma was pretreated by mixture of acetonitrile and chloroform to precipitate plasma proteins. Chromatographic separation was achieved on a column ($50{\times}2.1$ mm, $5{\mu}m$) with a mobile phase consisting of water (containing $5{\times}10^{-3}$ M ammonium formate, pH was adjusted to 3.0 with formic acid) and acetonitrile (20:80, v/v) at a flow rate of 0.3 mL/min. A tandem mass spectrometric detection with an electrospray ionization (ESI) interface was conducted via collision induced dissociation (CID) under negative ionization mode. The MS/MS transitions monitored were m/z 343.0448 ${\rightarrow}$ m/z 313.2017 for usnic acid and m/z 153.1024 ${\rightarrow}$ m/z 136.2136 for protocatechuic acid (internal standard). The linear range was calculated to be 2.0-160.0 ng/mL with a detection limit of 3.0 pg/mL. The inter- and intra-day accuracy and precision were within ${\pm}7.0%$. Pharmacokinetic study showed that the apartment of usnic acid in vivo confirmed to be a two compartment open model. The method was fully valid and will probably be an alternative for pharmacokinetic study of usnic acid.
Proceedings of the Korean Vacuum Society Conference
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2011.02a
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pp.240-240
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2011
The first neutral beam injector (NBI-1) has been developed for the Korea Superconducting Tokamak Advanced Research (KSTAR) tokamak. A first long pulse ion source (LPIS-1) has been installed on the NBI-1 for an auxiliary heating and current drive of KSTAR core plasmas. Performance of ion and neutral beam extractions in the LPIS-1 was investigated initially on the KSTAR NBI-1 system, prior to the neutral beam injection into the main plasmas. The ion source consists of a JAEA magnetic bucket plasma generator with multi-pole cusp fields and a set of KAERI prototype-III tetrode accelerators with circular apertures. The inner volume of plasma generator and accelerator column in the LPIS-1 is approximately 123 liters. Final design requirements for the ion source were a 120 kV/ 65 A deuterium beam and a 300 s pulse length. The extraction of ion beams was initiated by the formation of arc plasmas in the LPIS-1, called as an arc-beam extraction method. A stable ion beam extraction of LPIS-1 has been achieved up to an 100 kV/42 A for a 4 s pulse length and an 80 kV/25 A for a 14 s pulse length. Optimum beam perveance of 1.21 microperv has been found at an accelerating voltage of 80 kV. Neutralization efficiency has been measured by using a water flow calorimetry (WFC) method of calorimeter and an operation of bending magnet. The full-energy species of ion beams have been detected by using the diagnostic method of optical multichannel analyzer (OMA). An arc efficiency of the LPIS was 0.6~1.1 A/kW depending on the operating conditions of arc discharge.
In order to elucidate the influence of intestinal and hepatic first-pass effect on the pharmacokinetics of triflusal, the biotransformation of triflusal in the gastrointestinal tract and liver was designed. Moreover, we tried to establish an HPLC method applicable for bioassay and available to pharmacokinetics, not only with the simultaneous determination of triflusal and its active metabolite, 2-hydroxy-4-trifluoromethyl benzoic acid (HTB), but also with improving sensitivity. After the administration of triflusal (10 mg/kg) and HTB (10 mg/kg) into femoral vein, portal vein (only triflusal) and oral route (only triflusal), pharmacokinetic parameters were investigated from the plasma concentration-time profiles of triflusal and HTB in rats. An HPLC method was developed for the simultaneous determination of triflusal and HTB in rat plasma, urine and bile. The HPLC analysis was carried out using a C18 column and acetonitrile-methanol-water (25:10:65, v/v/v) as the mobile phase and UV detection at 234 nm. Furosemide was used as the internal standard. The calibration curves were linear over the concentration range $0.05-5.0\;{\mu}g/ml$ for triflusal and $0.2-200.0\;{\mu}g/ml$ for HTB with correlation coefficients greater than 0.999 and with intra-day or inter-day coefficients of variation not exceeding 10.0%. This assay procedure was applied to the study of metabolite pharmacokinetics of triflusal and HTB in rats. It was supposed that triflusal was almost metabolized in vivo because urinary and biliary excreted amounts of triflusal could be ignored as it was lower than 1.2% of the administered dose. According to the gastrointestinal and hepatic biotransformation pathways of triflusal, it was found that triflusal was hydrolyzed by about 5% in intestine and metabolized by about 53% in liver, and that the bioavailability of triflusal after oral administration of triflusal was 0.44, and also that the fraction of total elimination rate of triflusal which formed HTB in liver $(F_{mi},\;%)$ was about 98%. These results showed that triflusal was almost metabolized in liver, and the total elimination of triflusal in the body was dependent to the formation rate of HTB from triflusal in liver.
The proposed method is simple, sensitive and specific Liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LCESI-MS/MS) method for the quantification of Entacapone (EA) in human plasma using Entacapone-d10 (EAD10) as an internal standard (IS). Chromatographic separation was performed on Zorbax SB-C18, $2.1{\times}50\;mm$, $5\;{\mu}m$ column, mobile phase composed of 10 mM Ammonium formate (pH 3.0): Acetonitrile (60:40 v/v), with a flow-rate of 0.7 mL/min, followed by Liquid-liquid extraction. EA and EAD10 were detected with proton adducts at m/z $306.1{\rightarrow}233.1$ and $316.3{\rightarrow}233.0$ in multiple reaction monitoring (MRM) positive mode respectively. The method was validated over a linear concentration range of 1.00 - 2000.00 ng/mL with correlation coefficient ($r^2$) $\geq$ 0.9993. Intra and inter-day Precision within 3.60 to 7.30 and 4.20 to 5.50% and Accuracy within 97.30 to 104.20 and 98.30 to 105.80% proved for EA. This method is successfully applied in the bioequivalence study of healthy Indian human volunteers.
The Sr isotope ratio, which is used as basic data for rock formation time, crustal and mantle evolution studies, is determined by mass spectrometer such as thermal ionization mass spectrometry (TIMS) or multi-detector inductively coupled plasma mass spectrometry (MC-ICP-MS). In this technical report, we compared how incomplete chemical separation of elements affects the determination of Sr isotope ratios. For the experiment, commercial resin, NBS987(NIST SRM987) Sr isotope standard, and rock standard samples from the Geological Survey of Japan (GSJ) such as JG1a, JB3 and JA1 were used. As a result of the comparative experiment, it was clearly observed that the measured values of 87Sr/86Sr change when Rb remains due to incomplete separation of the NBS987 Sr isotope standard sample as well as the rock standard samples of GSJ. This indicates that complete separation is an important factor since the calculated value deviates from the true value even though correction for isotope interference by isobar is performed when measuring the isotope ratio with MC-ICP-MS. This also suggests that, when reporting the measurement result of Sr isotope ratio using MC-ICP-MS, the measurement strength of 85Rb should be reported together with the measurement strength of all isotopes of Sr so that isotope interference by isobar can be judged.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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