Anti-coagulant activities of 25 species of medicinal plants which have been related to "blood" in ethnobotany, were evaluated by plasma recalcification time test. Among these, Artemisiae Herba showed the strongest activity. Its anti-clotting component was purified by using DEAE-cellulose, Sephadex G-75, and Sephadex LH-20 column chromatography. Its active compound has an average molecular weight of approximately $10^{4}$ and it was turned to be an acidic polysaccharide composed of galacturonic acid and rhamnose (7 : 2) by chemical analysis and spectral data.
Jin, Ming Ji;Kim, In Sook;Kim, Dong-Hyun;Yoo, Hye Hyun
Bulletin of the Korean Chemical Society
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제34권9호
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pp.2760-2764
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2013
Geniposide is a biologically active ingredient of gardenia fruit. A liquid chromatography-tandem mass spectrometric method was developed and validated for the determination of geniposide in rat plasma. The plasma samples were pretreated by solid-phase extraction and introduced into a BDS Hypersil $C_{18}$ column ($50{\times}2.1mm$, $5{\mu}m$) for chromatographic separation. The mobile phase consisted of 0.1% formic acid and 0.1% formic acid in acetonitrile, and gradient elution was performed at a flow rate of 0.25 mL/min. For mass spectrometric detection, multiple reaction monitoring was performed via an electrospray ionization source in positive mode. The calibration curve for geniposide was linear ($r^2=0.997$) in the concentration range of $0.005-1{\mu}g/mL$. The intra- and inter-day accuracies and precisions fulfilled the required criteria (${\pm}15%$). The developed method was subsequently used for pharmacokinetic analysis of geniposide after oral administration to rats at a dose of 50 mg/kg. The mean maximum plasma concentration of geniposide was $0.68{\pm}0.29{\mu}g/mL$ at $0.44{\pm}0.13h$, and the mean area under the plasma concentration versus time curve was $1.46{\mu}g{\cdot}h/mL$.
A high-performance liquid chromatographic method was employed for the determination of bumetanide in human plasma. After addition of internal standard (IS, naproxen) and acidification of the plasma with 1 M hydrochloric acid, the drug and IS were extracted into dichloromethane. The organic phase was back-extracted into 1 M sodium bicarbonate solution and 50 ${\mu}l$ of the aqueous phase was injected onto a reversed-phase C18 column with a mobile phase consisting of methanol: water: glacial acetic acid = 65 : 35 : 1. The samples were detected utilizing a fluorescence detector (excitation wavelength 235 nm, emission wavelength 405 nm). The method was specific and validated with a lower limit of 5 ng/mL. Intra- and inter-day precision and accuracy were acceptable for all quality control samples including the lower limit of quantification. The applicability of the method was demonstrated by analysis of plasma after oral administration of a single 2 mg dose to 24 healthy subjects. From the plasma bumetanide concentration vs. time curves, the mean AUC was $246.5{\pm}73.8\;ng{\cdot}hr/mL$ and $C_{max}$ of $132.1{\pm}40.9$ ng/mL reached 1.2 hr after administration. The mean biological half-life of burnet ani de was $1.1{\pm}0.2$hr. Based on the results, this simple and validated assay method could readily be used in any pharmacokinetic or bioequivalence studies using humans.
A simple HPLC method with ultraviolet detection of nicardipine in human plasma was developed and validated. After drug extraction with solid phase extraction (SPE) method, chromatographic separation of nicardipine in plasma was achieved at $30^{\circ}C$ with a $C_{18}$ column and acetonitrile-0.02% phosphate buffer mixture (with 0.02% triethylamine, final pH 7.0), as mobile phase. Quantitative determination was performed by ultraviolet detection at 254 nm. The method was specific and validated with a limit of quantification of 5 ng/mL. The intra- and inter-day precision and accuracy were acceptable for all quality control samples including the lower limit of quantification. The applicability of the method was demonstrated by analysis of plasma after oral administration of a single 40 mg dose to 8 healthy subjects. From the plasma nicardipine concentration versus time curves, the mean $AUC_{t}$, was $134.04{\pm}59.72\;ng\;hr/mL$ and $C_{max}$ of $108.65{\pm}69.17\;ng/mL$ reached 1.5 hr after administration. The mean biological half-life of nicardipine was $3.93{\pm}0.82\;hr$. Based on the results, this simple and validated assay method could readily be used in any pharmacokinetic or bioequivalence studies using human.
A rapid, sensitive and selective hydrophilic interaction liquid chromatography-tandem mass spectrometric(HILIC-MS/MS) method for the determination of tiapride in human plasma was developed. Tiapride and internal standard, metoclopramide were extracted from human plasma with dichloromethane at basic pH and analyzed on an Atlantis HILIC silica column with the mobile phase of acetonitrile-ammonium formate (190 mM, pH 3.0) (94:6, v/v). The ana-Iytes were detected using an electrospray ionization tandem mass spectrometry in the multi-ple-reaction-monitoring mode. The standard curve was linear (r=0.999) over the concentration range of 1.00-200 ng/mL. The coefficient of variation and relative error for intra- and inter-assay at three QC levels were 6.4∼8.8% and -2.0∼3.6%, respectively. The recoveries of tiapride ranged from 96.3 to 97.4%, with that of metoclopramide (internal standard) being 94.2%. The lower limit of quantification for tiapride was 1.00 ng/mL using 1 00 $\mu$L of plasma sample.
The aim of this study was to develop and validate for determination of alibendol in human plasma by HPLC method. After precipitation of 500 ${\mu}l$ plasma samples by 50% methanol 50 ${\mu}l$ and 60% perchloric acid 30 ${\mu}l$ and the supernatant 50 ${\mu}l$ was injected into HPLC. The assay was performed isocratically using 10 mM potassium phosphate (pH 3.0) and acetonitrile (80 : 20, v/v) as mobile phase. The $C_{18}$ column (particle size $3.5{\mu}m$, $4.6{\times}50$ mm, Zorbax Eclipse) was used as a solid phase. The mobile phase was delivered at a flow-rate of 1.7 ml/min, detection was by ultraviolet absorption at 232 nm and concentrations were calculated on the basis of peak areas. In these conditions, alibendol can be separated from ethylparaben, the internal standard, and endogenous substances. The retention times of alibendol and ethylparaben were just about 2.6 and 3.5 minutes, respectively. This rapid HPLC method was validated by examining the precision and accuracy for inter- and intra-day analysis. The standard curve was linear ($R^2$=1.0000) over the concentration range of 0.05~20 ${\mu}g$/ml. The inter-day relative standard deviation (R.S.D.) and accuracy were 0.2~12.2% and 94.4~101.2% (82.7% at the lower limit of quatitation). The intra-day R.S.D. and accuracy were 0.1~11.8% and 98.8~102.5%, respectively. The method was successfully applied to the determination of alibendol in plasma for a pharmacokinetic study.
Chelating sepharose fast flow gel에 $Cu^{2+}$을 고정화시키고 이들과 단백질과의 친화력 정도에 의해서 용출용매를 통해 단백질을 분획하는 방식의 IMAC법을 이용하여 소의 혈장단백질로부터 IgG의 분리를 시도하였다. 대부분의 혈장단백질은 1차(0.01 M $Na_2HPO_4$, 0.5 M NaCl, pH 4.0)와 2차 용출용매(0.01 M imidazol)에 의하여 용출되었으며 역상 chromatography를 이용하여 각 분획의 단백질조성을 조사한 결과, 1차 용출용매에 의해서는 주로 albumin이, 그리고 2차 용출용매에 의해서는 IgG와 transferrin 등이 IMAC column으로부터 용출되었다. 2차 용출용매에 의해 얻어진 분획으로부터 분자량 100 kD이상의 단백질을 한외여과장치를 이용하여 농축하였을 때, IgG가 효과적으로 분리 정제 되었다.
Yun Ji Hye;Myung Ja Hye;Kim Hye Jin;Lee Sibeum;Park Jong-Sei;Kim Won;Lee Eun-Hee;Moon Cheol Jin;Hwang Sung-Joo
Archives of Pharmacal Research
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제28권4호
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pp.463-468
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2005
The purpose of the present study was to develop a standard protocol for imidapril hydrochloride bioequivalence testing. For this reason, a specific LC-MS method was developed and validated for the determination of imidapril in human plasma. A solid-phase extraction cartridge, $Sep-pak^{R}$ C18, was used to extract imidapril and ramipril (an internal standard) from deproteinized plasma. The compounds were separated using a XTerra $MS^{R}$?C18 column ($3.5 {\mu}m, 2.1\times150 mm$) and $acetonitrile-0.1\%$ formic acid (67:33, v/v) adjusted to pH 2.4 by 2 mmol/L ammonium formic acid, as mobile phase at 0.3 mL/min. Imidapril was detected as m/z 406 at a retention time of ca. 2.3 min, and ramipril as m/z 417 at ca. 3.6 min. The described method showed acceptable specificity, linearity from 0.5 to 100 ng/mL, precision (expressed as a relative standard deviation of less than $15\%$), accuracy, and stability. The plasma concentration-versus-time curves of eight healthy male volunteers administered a single dose of imidapril (10 mg), gave an $AUC_{12hr}$ of imidapril of $121.48\pm35.81 ng mL^{-1} h$, and $C_{max} and T_{max}$ values of $32.59\pm9.76 ng/mL and 1.75\pm0.27 h$. The developed method should be useful for the determination of imidapril in plasma with sufficient sensitivity and specificity in bioequivalence study.
A sensitive method for quantification of pinaverium bromide in human plasma was established using liquid chromatography-electrospray ionization tandem mass spectrometry(LC-ESI-MS/MS). Glimepiride was used as internal standard. Pinaverium bromide and internal standard in plasma sample were extracted using tert-butylmethylether(TBME). A centrifuged upper layer was then evaporated and reconstituted with mobile phase of acetonitrile-5 mM ammonium formate (80/20, pH 3.0). The reconstituted samples were injected into a $C_{18}$ reversed-phase column. Using MS/MS with multiple reaction monitoring (MRM) mode, pinaverium and glimepirde were detected without severe interference from human plasma matrix. Pinaverium produced a protonated precursor ion $([M+H]^+)$ at m/z 510.3 and a corresponding product ion at m/z 228.9. Internal standard produced a protonated precursor ion $([M+H]^+)$ at m/z 491.5 and a corresponding product ion at m/z 352.0. Detection of pinaverium bromide in human plasma was accurate and precise, with limit of quantitation at 0.5 ng/ml. The method has been successfully applied to bioavailability study of pinaverium bromide tablet in Korean healthy male volunteers. Pharmacokinetic parameters such as $AUC_t,\;C_{max},\;T_{max},\;K_{el}\;and\;t_{1/2}$ were calculated.
This study aimed to develop and validate highly sensitive determination method of a prostaglandin ($PGE_1$, OP 1206) in human plasma by LC-MS/MS using column switching. Plasma stored at $-30^{\circ}C$ and treated with methanol effectively inhibited interferences synthesized post-sampling. Samples were added with internal standard and were separated by reversed-phase HPLC with a cycle time of 30min. The method was selective for OP 1206 and the regression models, based on internal standard, were linear across the concentration range 0.5-50 pg/mL with the limit of quantification of 0.5 pg/mL (limit of quantitation, LOQ) for OP 1206. The calibration curve of OP 1206 standards spiked in five individual plasma samples was linear ($r^2=0.9999$). Accuracy and precision at the concentrations of 0.5, 1.5, 5.0 and 40 pg/mL, and at the lower LOQ of 0.5 pg/mL were excellent at 20%. OP120 < 6 was stable in plasma samples for at least 24 hours at room temperature, 24 hours frozen at $-70^{\circ}C$, 24 hours in an auto sampler at $6^{\circ}C$, and for two freeze/unfreezing cycles. The validated determination method successfully quantified the concentrations of OP 1206 in plasma samples from simulated administrating a single $5{\mu}g$ OP 1206 formulation. Thus, this novel LC-MS/MS technique for drug separation, detection and quantitation is expected to become the standard highly-sensitive detection method in bioanalysis and to be applied to many low dose pharmaceutical products.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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