This study was aimed to investigate the prevalence and antimicrobial resistance of Pseudomonas spp. isolated from bovine mastitis milk samples. A total of 50 (4.9%) Pseudomonas spp. was isolated from 1,023 samples, those collected between 2018 and 2021, derived from 110 dairy farms. The prevalence of the identified species of Pseudomonas isolates was as follows; P. aeruginosa (70.0%), P. fluorescens (14.0%), P. putida (10.0%), P. fragi (4.0%), and P. chlororaphis (2.0%). Most of somatic cell counts in the quarter milk carrying Pseudomonas spp. were less than 3,000,000 cell/ml (90.0%). The isolates of Pseudomonas spp. showed high susceptibility to cefepime (98.0%), ciprofloxacin (98.0%), ceftazidime (96.0%), and colistin (96.0%). The rate of antibiotic resistance in the isolates was highest to ceftiofur (92.0%), followed by the resistance rate to chloramphenicol (86.0%) and trimethoprim/sulphamethoxazole (80.0%). In addition, there is a remarkable difference in antimicrobial resistance pattern among Pseudomonas species. P. aeruginosa and P. putida showed a similar resistance pattern, whereas P. fluorescens showed exceptionally lower resistance to trimethoprim/sulphamethoxazole and chloramphenicol than that of the other species. This study showed that prevalence of Pseudomonas spp. other than P. aeruginosa were 30.0% in bovine mastitis milk, and the occurrence rate of antibiotic resistance were similar or higher level, compared with the previous reports on the mastitisderived Pseudomonas spp. isolated in Korea.
The succinate dehydrogenase inhibitor (SDHI) is a class of fungicides, which is widely and rapidly used to manage fungal pathogens in the agriculture field. Currently, fungicide resistance to SDHIs has been developed in many different plant pathogenic fungi, causing diseases on crops, fruits, vegetables, and turf. Understanding the molecular mechanisms of fungicide resistance is important for effective prevention and resistance management strategies. Two different mechanisms have currently been known in SDHI resistance. The SDHI target genes, SdhB, SdhC, and SdhD, mutation(s) confer resistance to SDHIs. In addition, overexpression of ABC transporters is involved in reduced sensitivity to SDHI fungicides. In this review, the current status of SDHI resistance mechanisms in phytopathogenic fungi is discussed.
Ascochyta blight caused by Ascochyta rabiei (Pass.) Lab. (Telomorph: Didymella rabiei) (Kov.) is one of the most important fungal diseases in chickpea worldwide. Knowledge about pathogen aggressiveness and identification resistance sources to different pathotypes is very useful for proper decisions in breeding programs. In this study, virulence of 32 A. rabiei isolates from different part of Iran were analyzed on seven chickpea differentials and grouped into six races based on 0-9 rating scale and susceptibility/resistant pattern of chickpea differentials. The least and most frequent races were race V and race I, respectively. Race V and VI showed highly virulence on most of differential, while race I showed least aggressiveness. Resistance pattern of 165 chickpea genotypes also were tested against six different A. rabiei races. ANOVA analysis showed high significant difference for isolate, chickpea genotypes and their interactions. Overall $chickpea{\times}isolate$ (race) interactions, 259 resistance responses (disease severity ${\leq}4$) were identified. Resistance spectra of chickpea genotypes showed more resistance rate to race I (49.70%) and race III (35.15%), while there were no resistance genotypes to race VI. Cluster analysis based on disease severity rate, grouped chickpea genotypes into four distinct clusters. Interactions between isolates or races used in this study, showed the lack of a genotype with complete resistance. Our finding for virulence pattern of A. rabiei and newly identified resistance sources could be considerably important for integration of ascochyta blight resistance genes into chickpea breeding programs and proper decision in future for germplasm conservation and diseases management.
After four years of cold storage, dimethachlon resistance of two laboratory-induced resistant Sclerotinia sclerotiorum isolates SCG7 and LA50 declined by 99.5% and 98.9%, respectively, and cross resistance to iprodione and procymidone also declined dramatically. Along with the decline of fungicide resistance, osmotic sensitivity to sodium chloride and glucose decreased tremendously; mycelial growth rate, sclerotia number and weight per potato dextrose agar (PDA) plate increased on average by 118.6%, 85. 5% and 64.5%, respectively; and virulence to detached leaves of oilseed rape increased by 72.7% on average. Significant negative correlations were detected between dimethachlon resistance levels and mycelial growth rate on PDA (r = -0.980, P = 0.021), and between resistance levels and lesion diameters on detached leaves of oilseed rape plants (r = -0.997, P = 0.002). These results have profound implications for assessing the potential risk for resistance development to dicarboximide fungicides in S. sclerotiorum.
This study tested the relative and combined efficacy of ShPx2 and ShPAL transgenes by comparing Nicotiana tabacum hybrids with enhanced levels of $_L$-phenylalanine ammonia lyase (PAL) activity and cationic peroxidase (Prx) activity with transgenic parental lines that overexpress either transgene. The PAL/Prx hybrids expressed both transgenes driven by the 35S CaMV promoter, and leaf PAL and Prx enzyme activities were similar to those of the relevant transgenic parent and seven- to tenfold higher than nontransgenic controls. Lignin levels in the PAL/Prx hybrids were higher than the PAL parent and nontransgenic controls, but not significantly higher than the Prx parent. All transgenic plants showed increased resistance to the necrotrophs Phytophthora parasitica pv. nicotianae and Cercospora nicotianae compared to nontransgenic controls, with a preponderance of smaller lesion categories produced in Prx-expressing lines. However, the PAL/Prx hybrids showed no significant increase in resistance to either pathogen relative to the Prx parental line. These data indicate that, in tobacco, the PAL and Prx transgenes do not act additively in disease resistance. Stacking with Prx did not prevent a visible growth inhibition from PAL overexpression. Practical use of ShPAL will likely require more sophisticated developmental control, and we conclude that ShPx2 is a preferred candidate for development as a resistance transgene.
Bacillus spp., as a type of plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR), were studied with regards promoting plant growth and inducing plant systemic resistance. The results of greenhouse experiments with tobacco plants demonstrated that treatment with the Bacillus spp. significantly enhanced the plant height and fresh weight, while clearly lowering the disease severity rating of the tobacco mosaic virus (TMV) at 28 days post-inoculation (dpi). The TMV accumulation in the young non-inoculated leaves was remarkably lower for all the plants treated with the Bacillus spp. An RT-PCR analysis of the signaling regulatory genes Coil and NPR1, and defense genes PR-1a and PR-1b, in the tobacco treated with the Bacillus spp. revealed an association with enhancing the systemic resistance of tobacco to TMV. A further analysis of two expansin genes that regulate plant cell growth, NtEXP2 and NtEXP6, also verified a concomitant growth promotion in the roots and leaves of the tobacco responding to the Bacillus spp.
This study was conducted to evaluate resistance of 10 different cowpea cultivars which were introduced from the United States against two major root-knot nematodes, Meloidogyne arenaria and M. incognita, that affect greenhouse crop cultivation in Korea. The results showed that the resistance of the tested cultivars to the root-knot nematodes varied with the cultivar. Texas Cream 40 showed moderate resistance to M. arenaria whereas the other cultivars were susceptible. Purple Hull Pinkeye and Texas Pinkeye Purple Hull were found to be resistant to M. incognita, whereas Mississippi Silver showed moderate resistance and the other cultivars were susceptible. As the cultivars exhibit resistance to M. arenaria and M. incognita, such cultivars resistant to root-knot nematodes should be considered during the cultivation of cowpea as a green manure crop.
We characterized the resistances such as to waterlogging, Phytophythora and viruses in hybrids between Italian and Korean mother lines and screened them for complex resistances and agronomic traits to select elite multi-resistant lines for hybrid breeding. Resistance to waterlogging was selectable due to diversity of the resistance. Phytophythora resistance introduced from Italian lines could also be combined with resistance to other diseases and restoration abilities from cytoplasmic male sterility that has been maintained in Korean varieties.
Khan, Raham Sher;Sjahril, Rinaldi;Nakamura, Ikuo;Mii, Masahiro
Plant Biotechnology Reports
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제2권1호
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pp.13-20
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2008
Potato (Solanum tuberosum L.), one of the most important food crops, is susceptible to a number of devastating fungal pathogens in addition to bacterial and other pathogens. Producing disease-resistant cultivars has been an effective and useful strategy to combat the attack of pathogens. Potato was transformed with Agrobacterium tumefaciens strain EHA101 harboring chitinase, (ChiC) isolated from Streptomyces griseus strain HUT 6037 and bialaphos resistance (bar) genes in a binary plasmid vector, pEKH1. Polymerase chain reaction (PCR) analysis revealed that the ChiC and bar genes are integrated into the genome of transgenic plants. Different insertion sites of the transgenes (one to six sites for ChiC and three to seven for bar) were indicated by Southern blot analysis of genomic DNA from the transgenic plants. Expression of the ChiC gene at the messenger RNA (mRNA) level was confirmed by Northern blot analysis and that of the bar gene by herbicide resistance assay. The results obviously confirmed that the ChiC and bar genes are successfully integrated and expressed into the genome, resulting in the production of bialaphos-resistant transgenic plants. Disease-resistance assay of the in vitro and greenhouse-grown transgenic plants demonstrated enhanced resistance against the fungal pathogen Alternaria solani (causal agent of early blight).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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