Kim, Yun-Sook;Ha, Kwon-Soo;Kim, Young-Ho;Bae, Young-Seuk
BMB Reports
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v.35
no.6
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pp.629-636
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2002
Protein kinase CKII (CKII) is required for progression through the cell division cycle. We recently reported that the $\beta$ subunit of protein kinase CKII ($CKII{\beta}$) associates with CKBBP1 that contains the Ring-H2 finger motif in the yeast two-hybrid system. We demonstrate here that the Ring-H2 finger-disrupted mutant of CKBBP1 does not interact with purified $CKII{\beta}$ in vitro, which shows that the Ring-H2 finger motif is critical for direct interaction with $CKII{\beta}$. The CKII holoenzyme is efficiently co-precipitated with the wild-type CKBBP1, but not with the Ring-H2 finger-disrupted CKBBP1, from whole cell extracts when epitope-tagged CKBBP1 is transiently expressed in HeLa cells. Disruption of the Ring-H2 finger motif does not affect the cellular localization of CKBBP1 in HeLa cells. The increased expression of either the wild-type CKBBP1 or Ring-H2 finger-disrupted CKBBP1 does not modulate the protein or the activity levels of CKII in HeLa cells. However, the stable expression of Ring-H2 finger-disrupted CKBBP1 in HeLa cells suppresses cell proliferation and causes the accumulation of the G1/G0 peak of the cell cycle. The Ring-H2 finger motif is required for maximal CKBBP1 phosphorylation by CKII, suggesting that the stable binding of CKBBP1 to CKII is necessary for its efficient phosphorylation. Taken together, these results suggest that the complex formation of $CKII{\beta}$ with CKBBP1 and/or CKII-mediated CKBBP1 phosphorylation is important for the G1/S phase transition of the cell cycle.
Hur, Jae-Young;Kang, Gum-Yong;Choi, Min-Yeon;Jung, Jin Woo;Kim, Kwang-Pyo;Park, Sang-Hyun
Molecules and Cells
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v.26
no.1
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pp.41-47
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2008
Mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling is a crucial component of eukaryotic cells; it plays an important role in responses to extracelluar stimuli and in the regulation of various cellular activities. The signaling cascade is evolutionarily conserved in the eukaryotic kingdom from yeast to human. In response to a variety of extracellular signals, MAPK activity is known to be regulated via phosphorylation of a conserved $T{\times}Y$ motif at the activation loop in which both threonine and tyrosine residues are phosphorylated by the upstream kinase. However, the mechanism by which both residues are phosphorylated continues to remain elusive. In the budding yeast, Saccharomyces cerevisiae, Fus3 MAPK is involved in the mating signaling pathway. In order to elucidate the functional mechanism of MAPK activation, we quantitatively profiled phosphorylation of the $T{\times}Y$ motif in Fus3 using mass spectrometry (MS). We used synthetic heavy stable isotope-labeled phosphopeptides and nonphosphopeptides corresponding to the proteolytic $T{\times}Y$ motif of Fus3 and accompanying data-dependent tandem MS to quantitatively monitor dynamic changes in the phosphorylation events of MAPK. Phosphospecific immunoblotting and the MS data suggested that the tyrosine residue is dynamically phosphorylated upon stimulation and that this leads to dual phosphorylation. In contrast, the magnitude of threonine phosphorylation did not change significantly. However, the absence of a threonine residue leads to hyperphosphorylation of the tyrosine residue in the unstimulated condition, suggesting that the threonine residue contributes to the control of signaling noise.
Choi, Min-Yeon;Kang, Gum-Yong;Hur, Jae-Young;Jung, Jin Woo;Kim, Kwang Pyo;Park, Sang-Hyun
Molecules and Cells
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v.26
no.2
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pp.200-205
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2008
The mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling pathway is activated in response to extracellular stimuli and regulates various activities in eukaryotic cells. Following exposure to stimuli, MAPK is known to be activated via dual phosphorylation at a conserved TxY motif in the activation loop; both threonine and tyrosine residues are phosphorylated by an upstream kinase. However, the mechanism underlying dual phosphorylation is not clearly understood. In the budding yeast Saccharomyces cerevisiae, the Hog1 MAPK mediates the high-osmolarity glycerol (HOG) signaling pathway. Tandem mass spectrometry and phosphospecific immunoblotting were performed to quantitatively monitor the dynamic changes occurring in the phosphorylation status of the TxY motif of Hog1 on exposure to osmotic stress. The results of our study suggest that the tyrosine residue is preferentially and dynamically phosphorylated following stimulation, and this in turn leads to the dual phosphorylation. The tyrosine residue was hyperphosphorylated in the absence of a threonine residue; this result suggests that the threonine residue is critical for the control of signaling noise and adaptation to osmotic stress.
Lee, Eun Jeoung;Hyun, Sunghee;Chun, Jaesun;Shin, Sung Hwa;Lee, Kyung Eun;Yeon, Kwang Hum;Park, Tae Yoon;Kang, Sang Sun
Molecules and Cells
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v.26
no.1
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pp.100-105
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2008
Glycogen synthase kinase $3{\beta}$ (GSK $3{\beta}$) is a serine/threonine kinase that phosphorylates substrates such as ${\beta}$-catenin and is involved in a variety of biological processes, including embryonic development, metabolism, tumorigenesis, and cell death. Here, we present evidence that human GSK $3{\beta}$ is associated with Fe65, which has the characteristics of an adaptor protein, possessing a WW domain, and two phosphotyrosine interaction domains, PID1 and PID2. The GSK $3{\beta}$ catalytic domain also contains a putative WW domain binding motif ($^{371}PPLA^{374}$), and we observed, using a pull down approach and co-immunoprecipitation, that it interacts physically with Fe65 via this motif. In addition, we detected co-localization of GSK $3{\beta}$ and Fe65 by confocal microscopy, and this co-localization was disrupted by mutation of the putative WW domain binding motif of GSK $3{\beta}$. Finally, in transient transfection assays interaction of GSK $3{\beta}$ (wt) with Fe65 induced substantial cell apoptosis, whereas interaction with the GSK $3{\beta}$ AALA mutant ($^{371}AALA^{374}$) did not, and we noted that phosphorylation of the Tyr 216 residue of the GSK $3{\beta}$ AALA mutant was significantly reduced compared to that of GSK $3{\beta}$ wild type. Thus, our observations indicate that GSK $3{\beta}$ binds to Fe65 through its $^{371}PPLA^{374}$ motif and that this interaction regulates apoptosis and phosphorylation of Tyr 216 of GSK $3{\beta}$.
A structural protein of SARS-CoV-2 (severe acute respiratory syndrome coronavirus 2), nucleocapsid (N) protein is phosphorylated by glycogen synthase kinase (GSK)-3 on the serine/arginine (SR) rich motif located in disordered regions. Although phosphorylation by GSK-3β constitutes a critical event for viral replication, the molecular mechanism underlying N phosphorylation is not well understood. In this study, we found the putative alpha-helix L/FxxxL/AxxRL motif known as the GSK-3 interacting domain (GID), found in many endogenous GSK-3β binding proteins, such as Axins, FRATs, WWOX, and GSKIP. Indeed, N interacts with GSK-3β similarly to Axin, and Leu to Glu substitution of the GID abolished the interaction, with loss of N phosphorylation. The N phosphorylation is also required for its structural loading in a virus-like particle (VLP). Compared to other coronaviruses, N of Sarbecovirus lineage including bat RaTG13 harbors a CDK1-primed phosphorylation site and Gly-rich linker for enhanced phosphorylation by GSK-3β. Furthermore, we found that the S202R mutant found in Delta and R203K/G204R mutant found in the Omicron variant allow increased abundance and hyper-phosphorylation of N. Our observations suggest that GID and mutations for increased phosphorylation in N may have contributed to the evolution of variants.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1996.11a
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pp.135-139
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1996
$p70^{s6k}$ lies on a $p21^{ras}$-independent signalling pathway and plays an important role in mitogenesis. Activation is associated with phosphorylation at multiple sites, four of which lie in an autoinhibitory region. The immunosuppressant rapamycin induces $p70^{s6k}$ inactivation through dephosphorylation of a second set of mitogen-induced sites. Here we identify these sites as $T_{229}$, $T_{389}$, and $S_{404}$. $T_{229}$ resides in the "T loop" of the catalytic domain, an essential phosphorylation site in other kinases. However, $p70^{s6k}$ inactivation by rapamycin most closely parallels $T_{389}$ dephosphorylation. Mutation of $T_{389}$ to alanine ablates kinase activity, whereas mutation to glutamic acid confers constitutive kinase activity and rapamycin resistance. indicating an essential role for phosphorylation at this site. $T_{389}$ resides in an unusual hydrophobic motif, not previously noted, between the catalytic and autoinhibitory domains. The importance of this site, and surrounding motif, is emphasized by its conservation in other kinases including homologues of $p70^{s6k}$ derived from such distantly related organisms as yeast and plant.
RAP80 plays a key role in DNA damage responses by recognizing K63-linked polyubiquitin moieties through its two ubiquitin-interacting motif (UIM) domains. The linker between the two UIMs possesses a phosphorylation site, but the relationship between phosphorylation and polyubiquitin recognition remains elusive. We investigated the interaction between a phosphorylation-mimic RAP80 mutant S101E and linear polyubiquitins, structurally equivalent to the K63-linked ones, using isothermal titration calorimetry (ITC). ITC analysis revealed differential binding affinities for linear tetraubiquitin by otherwise equivalent UIMs in S101E. Mutational analysis supported such differential polyubiquitin recognition by S101E. Our results suggest a potential crosstalk between polyubiquitin recognition and phosphorylation in RAP80.
Objectives: This study aimed to demonstrate the tyrosine phosphorylation motif (TPM) and 3' region structure of the Helicobacter pylori CagA gene as well as its SHP-2 binding activity in AGS cells and relation to gastric carcinogenesis. Methods: Sixteen clinical isolate H. pylori strains from eight duodenal ulcer and eight gastric adenocarcinoma patients were studied for CagA repeat sequence EPIYA motifs, C-terminal structure, and western blot analysis of CagA protein expression, translocation, and SHP-2 binding in AGS cells. Results: Except for strain 547, all strains from the gastric adenocarcinoma patients were positive for CagA by PCR and had three EPIYA copy motifs. Western blotting showed that all strains were positive for CagA protein expression (100%), CagA protein translocation (100%), and SHP-2 binding (100%). CagA protein expression was significantly higher in the gastric adenocarcinoma patients than in the duodenal ulcer patients (P=0.0023). CagA protein translocation and SHP-2 binding in the gastric adenocarcinoma patients were higher than those in the duodenal ulcer patients, but no significant differences were found between the two groups (P=0.59, P=0.21, respectively). Conclusions: The TPMs and 3' region structures of the H. pylori CagA gene in the duodenal ulcer and gastric adenocarcinoma patients have no significant differences.
RNA polymerase II (pol II) is known to cycle between hyperphosphorylated and hypophosphorylated forms during transcription cycle. These extensive phosphorylation/dephosphorylation event occurs in the C-terminal domain (CTD) of the largest subunit of pol II which consists of a tandemly repeated heptapeptide motif with consensus of YSPTSPS. (omitted)
The complete nucleotide sequence of the cDNA clone encoding rat skeletal muscle myosin- binding protein H (MyBP-H) was determined and amino acid sequence was deduced from the nucleotide sequence (GenBank accession number AF077338). The full-length cDNA of 1782 base pairs(bp) contains a single open reading frame of 1454 bp encoding a rat MyBP-H protein of the predicted molecular mass 52.7kDa and includes the common consensus 1CA__TG' protein binding motif. The cDNA sequence of rat MyBP-H show 92%, 84% and 41% homology with those of mouse, human and chicken, respectively. The protein contains tandem internal motifs array (-FN III-Ig C2-FN III- Ig C2-) in the C-terminal region which resembles to the immunoglobulin superfamily C2 and fibronectin type III motifs. The amino acid sequence of the C-terminal Ig C2 was highly conserved among MyBPs family and other thick filament binding proteins, suggesting that the C-terminal Ig C2 might play an important role in its function. All proteins belonging to MyBP-H member contains `RKPS` sequence which is assumed to be cAMP- and cGMP-dependent protein kinase A phosphorylation site. Computer analysis of the primary sequence of rat MyBP-H predicted 11 protein kinase C (PKC)phosphorylation site, 7 casein kinase II (CK2) phosphorylation site and 4N-myristoylation site.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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