Meningitis caused by Streptococcus suis serotype 2 (S. suis 2) is a great threat to the pig industry and human health. Virulence factors associated with the pathogenesis of meningitis have yet to be clearly defined, even though many potential S. suis 2 virulence factors have been identified. This greatly hinders the progress of S. suis 2 meningitis pathogenesis research. In this study, a co-culture blood-brain barrier (BBB) model was established using primary porcine brain microvascular endothelial cells and astrocytes, and the whole genome library of S. suis 2 was constructed using phage display technology. Finally, a total of 14 potential virulence factors contributing to S. suis 2 adherence to and invasion of the BBB were selected by analyzing the interactions between the phage library and the co-culture model. Twelve of these factors have not been previously reported in meningitis-related research. The data provide valuable insight into the pathogenesis of S. suis 2 meningitis and potential targets for the development of drug therapies.
A single chain variable fragment (scFv) specific towards B. pseudomallei exotoxin had previously been generated from an existing hybridoma cell line (6E6AF83B) and cloned into the phage display vector pComb3H. In this study, the scFv was subcloned into the pComb3X vector to facilitate the detection and purification of expressed antibodies. Detection was facilitated by the presence of a hemagglutinin (HA) tag, and purification was facilitated by the presence of a histidine tag. The culture was grown at 30$^{\circ}C$ until log phase was achieved and then induced with 1 mM IPTG in the absence of any additional carbon source. Induction was continued at 30$^{\circ}C$ for five h. The scFv was discerned by dual processes-direct enzyme-linked immunosorbent assays (ELISA), and Western blotting. When compared to E. coli strains ER2537 and HB2151, scFv expression was observed to be highest in the E. coli strain Topl0F'. The expressed scFv protein was purified via nickel-mediated affinity chromatography and results indicated that two proteins a 52 kDa protein, and a 30 kDa protein were co-purified. These antibodies, when blotted against immobilized exotoxin, exhibited significant specificity towards the exotoxin, com-pared to other B. pseudomallei antigens. Thus, these antibodies should serve as suitable reagents for future affinity purification of the exotoxin.
Vibrio cholerae, cause of the life-threatening diarrheal disease cholera, can be divided into different serogroups based on the structure of its lipopolysaccharide (LPS), which consists of lipid-A, core-polysaccharide and O-antigen polysaccharide (O-PS). The O1 serogroup, the predominant cause of cholera, includes two major serotypes, Inaba and Ogawa. These serotypes are differentiated by the presence of a single 2-O-methyl group in the upstream terminal perosamine of the Ogawa O-PS, which is absent in the Inaba O-PS. To ensure the consistent quality and efficacy of the current cholera vaccines, accurate measurement and characterization of each of these two serotypes is highly important. In this study, we efficiently screened a phage-displayed human synthetic Fab library by bio-panning against Ogawa LPS and finally selected three unique mAbs (D9, E11, and F7) that specifically react with Ogawa LPS. The mAbs bound to Vibrio cholerae vaccine in a dose-dependent fashion. Sequence and structure analyses of antibody paratopes suggest that IgG D9 might have the same fine specificity as that of the murine mAbs, which were shown to bind to the upstream terminal perosamine of Ogawa O-PS, whereas IgGs F7 and E11 showed some different characteristics in the paratopes. To our knowledge, this study is the first to demonstrate the generation of Ogawa-specific mAbs using phage display technology. The mAbs will be useful for identification and quantification of Ogawa LPS in multivalent V. cholerae vaccines.
Although smallpox was eradicated in 1980, it is still considered a potential agent of biowarfare and bioterrorism. Smallpox has the potential for high mortality rates along with a major public health impact, eventually causing public panic and social disruption. Passive administration of neutralizing monoclonal antibodies (mAbs) is an effective intervention for various adverse reactions caused by vaccination and the unpredictable nature of emerging and bioterrorist-related infections. Currently, vaccinia immune globulin (VIG) is manufactured from vaccinia vaccine-boosted plasma; however, this production method is not ideal because of its limited availability, low specific activity, and risk of contamination with blood-borne infectious agents. To overcome the limitations of VIG production from human plasma, we isolated two human single-chain variable fragments (scFvs), (SC34 and SC212), bound to vaccinia virus (VACV), from a scFv phage library constructed from the B cells of VACV vaccine-boosted volunteers. The scFvs were converted to human IgG1 (VC34 and VC212). These two anti-VACV mAbs were produced in Chinese Hamster Ovary (CHO) DG44 cells. The binding affinities of VC34 and VC212 were estimated by competition ELISA to $IC_{50}$ values of $2{\mu}g/ml$ (13.33 nM) and $22{\mu}g/ml$ (146.67 nM), respectively. Only the VC212 mAb was proven to neutralize the VACV, as evidenced by the plaque reduction neutralization test (PRNT) result with a $PRNT_{50}$ of ~0.16 mg/ml (${\sim}1.07{\mu}M$). This VC212 could serve as a valuable starting material for further development of VACV-neutralizing human immunoglobulin for a prophylactic measure against post-vaccination complications and for post-exposure treatment against smallpox.
A monoclonal antibody (mab) against the antimicrobial sulfamethazine was prepared and characterized by an indirect competitive enzyme-linked immunosorbent assay (IC-ELISA). Sulfamethazine in the range of 0.2 and 45ng/ml could be determined with the mab by IC-ELISA. cDNAs encoding a variable heavy chain and variable light chain of the mab were cloned to produce recombinant antibodies using phage display technology. Following phage rescue and three rounds of panning, a single-chain variable fragment (scFv) antibody with high sulfamethazine-binding affinity was obtained. ELISA analysis revealed that scFv antibody and parent mab showed similar, but not identical, characteristics. The $IC_{50}$ value by IC-ELISA with scFv antibody was 4.8ng/ml, compared with 1.6ng/ml with the parent mab. Performances of the assays in the presence of milk matrix were compared; the mab-based assay was less affected than the scFv-based assay. Sixty milk samples were analyzed by mab-based IC-ELISA, and four samples were sulfamethazine positive; these results were favorably correlated with those obtained by HPLC.
Monoclonal antibodies (Mabs) have been used as diagnostic and analytical reagents since hybridoma technology was invented in 1975. In recent years, antibodies have become increasingly accepted as therapeutics for human diseases, particularly for cancer, viral infection and autoimmune disorders. An indication of the emerging significance of antibody-based therapeutics is that over a third of the proteins currently undergoing clinical trials in the United States are antibodies. Until the late 1980's, antibody technology relied primarily on animal immunization and the expression of engineered antibodies. However, the development of methods for the expression of antibody fragments in bacteria and powerful techniques for screening combinatorial libraries, together with the accumulating structure-function data base of antibodies, have opened unlimited opportunities for the engineering of antibodies with tailor-made properties for specific applications. Antibodies of low immunogenicity, suitable for human therapy and in vivo diagnosis, can now be developed with relative ease. Here, antibody structure-function and antibody engineering technologies are described.
Color sensor systems based on M13 bacteriophage are being considerably researched. Although many studies on M13 bacteriophage-based chemical sensing of TNT, endocrine disrupting chemicals, and antibiotics have been undertaken, the fundamental physical and chemical properties of M13 bacteriophage-based nanostructures require further research. A simple M13 bacteriophage-based colorimetric sensor was fabricated by a simple pulling technique, and M13 bacteriophage was genetically engineered using a phage display technique to exhibit a negatively charged surface. Arrays of structurally and genetically modified M13 bacteriophage that can determine the polarity indexes of various alcohols were found. In this research, an M13 bacteriophage-based color sensor was used to detect various types of alcohols, including methanol, ethanol, and methanol/butanol mixtures, in order to investigate the polarity-related property of the sensor. Studies of the fundamental chemical sensing properties of M13 bacteriophage-based nanostructures should result in wider applications of M13 bacteriophage-based colorimetric sensors.
Recently, high-throughput technologies such as the two-hybrid system, protein chip, Mass Spectrometry, and the phage display have furnished a lot of data on protein-protein interactions (PPIs), but the data has not been accurate so far and the quantity has also been limited. In this respect, computational techniques for the prediction and validation of PPIs have been developed. However, existing computational methods do not take into account the fact that a PPI is actually originated from the interactions of domains that each protein contains. So, in this work, the information on domain modules of individual proteins has been employed in order to find out the protein interaction relationship. The system developed here, WASPI (Web-based Assistant System for Protein-protein interaction Inference), has been implemented to provide many functional insights into the protein interactions and their domains. To achieve those objectives, several preprocessing steps have been taken. First, the domain module information of interacting proteins was extracted by taking advantage of the InterPro database, which includes protein families, domains, and functional sites. The InterProScan program was used in this preprocess. Second, the homology comparison with the GO (Gene Ontology) and COG (Clusters of Orthologous Groups) with an E-value of $10^{-5}$, $10^{-3}$ respectively, was employed to obtain the information on the function and annotation of each interacting protein of a secondary PPI database in the WASPI. The BLAST program was utilized for the homology comparison.
The scFv antibody towards the Burkholderia pseudomallei exotoxin was previously constructed by phage display and exhibited good specificity towards the exotoxin. We report here the optimization of the scFv expression in an E. coli expression system. Four different E. coli strains (ER2537, TG1, HB2151, and XL1-Blue) were examined for optimal expression of the scFv protein. Two types of carbon source (i.e. 0.2% glucose and 0.2% glycerol) were also tested for their ability to induce the scFv expression. Cells that carried the scFv construct were grown at $30^{\circ}C$ and induced with 0.05 mM IPTG. The expression was then monitored by SDS-PAGE, Western blotting, and indirect ELISA. The Western blot profile showed different levels of the scFv expression among the host strains; XL1-Blue exhibited the highest level of the scFv protein expression. Glycerol at a concentration of 0.2% (v/v) significantly increased the scFv protein expression level when compared to 0.2% (w/v) glucose. Further optimization demonstrated that the scFv protein expression in XL1-Blue was the most optimal with a glycerol concentration as low as 0.05%. However, by indirect ELISA, only the scFv protein that was expressed in 0.2% (v/v) glycerol exhibited high specificity towards the Burkholderia pseudomallei exotoxin.
This study was undertaken to produce a $F_{ab}$ fragment of a human monoclonal antibody reactive to oxidized and carbamylated low-density lipoprotein (oxLDL and cLDL) using phage display technology. An analysis of DNA sequences of this $F_{ab}$, termed plaque 15,16-46 $F_{ab}$, revealed that the rearranged $V_H$ was highly mutated. Complementarity-determining regions of the $V_H$ showed a very high R/S ratio and contained many positively charged amino acids. In direct binding and competitive ELISA, the $F_{ab}$ reacted strongly with both MDA-LDL and Cu-oxLDL forms of oxLDL, and also showed high affinity for cLDL. Immunofluorescence and immunohistochemical analyses showed that this $F_{ab}$ positively stained atherosclerotic aortic plaques in $ApoE^{-/-}$ mice as well as those in patients with atherosclerosis. The $F_{ab}$ also showed positive staining in placental decidua from patients with preeclampsia. It is suggested that the plaque 15,16-46 $F_{ab}$ against oxLDL and cLDL might possibly be applicable for developing a diagnostic reagent for both human and rodent animal research to detect and characterize atherosclerotic disease progression in atherosclerotic lesions as well as exploring the pathogenesis of atherogenic diseases such as preeclampsia.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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