Analysis of protein is often frustrated by the inability to isolate large amounts of purified protein from a native source. To overcome this problem, fusion protein expression systems such as pGEX system have been widely used. Using pGEX system, the desired protein could be easily obtained in a large amount in E. coli, and then the fusion protein could be used for the study of the function of the given protein. To analyze and purify the GST fusion protein, anti-GST antibody could be used as one of the system of choice. However, the production and characterization of monoclonal anti-GST antibody has not been studied extensively yet. To produce monoclonal anti-GST antibody, GST was purified from E. coli transformed with pGEX-cs, one of the pGEX system and was used as an antigen. The monoclonal antibody was produced by fusion of the immunized spleen cells with SP2-0 myeloma cells. The antibody was characterized by ELISA, western blotting, etc. The monoclonal antibody produced in this study (mAb-GSTA) showed strong and specific immunoreactivity against not only GST but also GST-fusion proteins. Also, mAb-GSTA was successfully used for the immunoaffinity purification of the GST ${\beta}$-Rc.-third intracellular-loop fusion protein. The results of the present study suggest that mAb-GSTA may be used for the identification and purification of GST fusion proteins.
순무우 모자이크 바이러스 Ca 계통(TuMV-Ca)의 외피 단백질을 대장균 NM522 strain에서 발현시켰다. 발현된 바이러스 단백질은 한천젤 이중확산법, ELISA와 Western blotting을 이용하여 확인하였다. 외피단백질 발현 벡터(pGEX-Tu)의 구축은 IPTG induction site를 지니는 pGEX-KG에 TuMV-Ca 외피단백질 유전자를 결합하였다. 최적 단백질 발현 조건은 pGEX-Tu를 지니는 대장균을 액체 배지 1 ml당 $A_{595}$=0.1/ml의 농도로 접종한 후 2시간 뒤에 IPTG를 최종 농도를 1 mM로 조절하여 induction 시키는 경우였다. 합성된 목적 단백질은 발현 벡터의 특성상 GST (Glutathion S-Transferase) 단백질과 결합된 형태로 약 59 kDa의 단백질이었다. (uMV CP 33 kDa + GST 26 kDa.)
The respiratory burst oxidase of neutrophils is a multicomponent enzyme, domant in resting cells, that catalyzes the reduction of oxygen to $O_{2}^{-}$ at the expense of NADPH. In the resting neutrophil, some of the components of the oxidase, including proteins p47 and p67, are in the cytosol, while the rest are in the plasma membrane. Recent evidence has suggested that at least some of the cytosolic oxidase components exist as a complex. The cytosolic complex with a molecular weight of ~240 kDa was found to bind to blue-agarose and 2',5'-ADP-agarose, which recognize nucleotide requiring enzymes. In order to identify the nucleotide binding component of the cytosolic complex we purified recombinant p47 and p67 fusion proteins using the pGEX system. Pure recombinant p47 was retained completely on 2',5'-ADP-agarose, whereas pure recombinant p67 did not bind to these affinity beads. On the basis of these results, we infer that p47 may contain the nucleotide binding site.
Porcine transforming growth factor-$\beta$1 (TGF-$\beta$1) was expressed in Escherichia coli using cDNA of TGF-$\beta$1 and glutathione S-transferase (GST) fusion vector pGEX-1$\lambda$T. An ApoI-Tth111I fragment of cDNA which correspond to the amino acid residues from 123 to 390 of the precursor TGF-$\beta$1 was inserted into EcoRI-Tth111I digested pGEM#-l$\lambda$T and the recombined plasmid was named pGET-12. Gene products from the cloned regions of the recombinant plasmids pGET-12 was not detected in soluble fraction of cell free extract but detected in insoluble fraction. The solubilization of insoluble gene product was achieved by the treatment of N-laurylsarcosine. Molecular weight of partially purified proteins determined by electrophoresis was same as expected from cloned fragment. The ELISA test results of the purified proteins showed that immunologically detectable epitope was preserved in recombinant protein.
To purify the geranylgeranyl protein transferase type I (GGPT-I) efficiently, a gene expression system using the pGEX-4T-1 vector was constructed. The cal1 gene, encoding the ${\beta}$ subunit of GGPT-I, was subcloned into the pGEX-4T-1 vector and co-transformed into E. coli cells harboring the ram2 gene, the ${\alpha}$ subunit gene of GGPT-I. GGPT-I was highly expressed as a fusion protein with glutathione S-transferase (GST) in E. coli, purified to homogeneity by glutathione-agarose affinity chromatography, and the GST moiety was excised by thrombin treatment. The purified yeast GGPT-I showed a dose-dependent increase in the transferase activity, and its apparent $K_m$ value for an undecapeptide fused with GST (GST-PEP) was $0.66\;{\mu}M$ and the apparent value for geranylgeranyl pyrophosphate (GGPP) was $0.071\;{\mu}M$.
Presence of antibody to the capsid protein p24 is the main diagnostic criterion, since this reflects reliable antibody response to HIV infection. However, it takes about 6-8 weeks for antibody production after infection and people who are infected but antibodies are not produced yet are classified as seronegative. Therefore, there is a strong need for an improved diagnostic method for better health security. As a first step for developing such an improved diagnostic system, gag protein of human immunodificiency virus type 1 was expressed in E. coli DH5$\alpha$. The gag fragment of HIV-1 (including a portion of p17 and whole p24) was amplified by polymerase chain reaction (PCR) and BamH I/EcoR I sites were created during PCR. The amplified DNA fragment was cleaved with BamH I/EcoR I and was subcloned into the GEX-2T vector which had been digested with BamHI/EcoRI, resulting gene fusion with gst gene of pGEX-2T. The recombinant DNA was transferred into E. coli DH5$\alpha$. The transformed bacteria were grown at 37$^{\circ}C$ for 3h and protein expression was induced with 0.1mM IPTG at $25^{\circ}C$ for 3h. Recombinant gag protein or GST-gag fusion protein was purified with glutathione-sepharose 4B bead and migrated as a single band when analyzed by 10% polyacrylamide gel. These proteins were confirmed by immunoblotting with anti-GST goat sera or Korean AIDS patients sera. The results of this study establish the expression and single step pulification of HIV-1 gag protein which can specifically bind with Korean AIDS patients sera.
기존 연구를 통하여 토양에서 분리한 Acinetobacter schindleri DYL129로부터 3개의 lipase 유전자(lipAD1, lipAD2와 lipAD3)들과 1개의 chaperone (lipBD) 유전자를 보고하였다. 본 연구에서는 각 유전자들의 발현을 위해서 pET32a(+)와 pGEX-6P-1 벡터에 클로닝하여 각각을 pETLAD1-3와 pETLBD 또는 pGEXLAD1-3와 pGEXLB로 명명하였으며, 단백질의 발현량은 pET 시스템을 사용할 때 1.5 배 정도 향상됨을 확인하였다. LipAD1과 LipAD2는 inclusion body 형태로 발현이 되었으며, LipAD3과 LipBD는 soluble type으로도 발현되었다. Inclusion body 형태의 LipAD1과 LipAD2는 고농도의 우레아를 처리하여 refolding 시켰다. LipAD1은 C4와 C2를, LipAD2는 C2와 C14를 그리고 lipAD3은 C2, C4와 C14를 기질로 잘 이용하는 것을 확인하였다. 그리고 모든 효소들은 $50^{\circ}C$에서 최적 활성을 나타내었다.
The delta sleep-inducing peptides (DSIP, Trp-Ala-Gly-Gly-Asp-Ala-Ser-Gly-Glu) is an important regulatory hormone, controlling hypothalamus and pituitary functions. In the current study, an expression system was designed for the rapid and economic expression oi recombinant DSIP for biophysical studies. Artificially synthesized oligonucleotides encoding DSIP were cloned into a pGEX-KG vector and expressed in E. coli (BL21). The recombinant GST-DSIP was then readily purified using a GST affinity column. To obtain intact DSIP from the GST-DSIP, thrombin cleavage and a CNBr reaction were successively carried out. The DSIP in the CNBr reaction mixture was subjected to RP-HPLC purification to yield 1.2 mg DSIP from a 1 liter culture of E. coli. Identification of the DSIP was peformed using MALDI-MS and an amino acid composition analysis.
Superoxide dismutase (SOD) is physiologically important in regulating cellular homeostasis and apoptotic cell death, and its mutations are the cause of familial amyotrophic lateral sclerosis (FALS). Mitochondrial serine protease HtrA2 has a pro-apoptotic function and has known to be associated with neurodegenerative disorders. To investigate the relationship between genes associated with apoptotic cell death, such as HtrA2 and SOD1, we utilized the pGEX expression system to develop a simple and rapid method for purifying wild-type and ALS-associated mutant SOD1 proteins in a suitable form for biochemical studies. We purified SOD1 and SOD1 (G93A) proteins to approximately 90% purity with relatively high yields (3 mg per liter of culture). Consistent with the result in mammalian cells, SOD1 (G93A) was more insoluble than wild-type SOD1 in E. coli, indicating that research on the aggregate formation of SOD1 may be possible using this pGEX expression system in E. coli. We investigated the HtrA2 serine protease activity on SOD1 to assess the relationship between two proteins. Not only wild-type SOD1 but also ALS-associated mutant SOD1 (G93A) were cleaved by HtrA2, resulting in the production of the 19 kDa and 21 kDa fragments that were specific for anti-SOD1 antibody. Using protein gel electrophoresis and immunoblot assay, we compared the relative molecular masses of thrombin-cleaved GST-SOD1 and HtrA2-cleaved SOD1 fragments and can predict that the HtrA2-cleavage sites within SOD1 are the peptide bonds between leucine 9-lysine 10 (L9-K10) and glutamine 23-lysine 24 (Q23-K24). Our study indicates that SOD1 is one of the substrate for HtrA2, suggesting that both HtrA2 and SOD1 may be important for modulating the HtrA2-SOD1-mediated apopotic cell death that is associated with the pathogenesis of neurodegenerative disorder.
본 연구에서는 Human HtrA3 (HtrA3)의 효소활성을 분자수준에서 연구하기 위해 HtrA간의 상동성과 기존에 알려진 maturation site들을 비교 분석하여 예상 mature HtrA3인 M1-HtrA3와 M2-HtrA3를 발현하는 construct를 제작하였다. pGEX system을 통해 Top10 균주에서 발현, 정제한 M1-HtrA3 단백질은 $10{\mu}g$/L를 정제할 수 있었으며 발현량 대비 1%를 회수할 수 있었다. M2-HtrA3는 M1보다 5배 가량 많은 양을 정제할 수 있었으며 발현량 대비 회수율은 3배 정도 더 높았다. $\beta$-Casein을 이용한 in vitro cleavage test를 통해 M1, M2 form 모두 protease 활성을 갖는 것을 확인하였다. 또한, $\beta$-casein cleavage를 통해 HtrA serein protease들 간의 상대적인 활성을 비교한 결과, HtrA3와 HtrA2는 HtrA1보다 약 2배 더 높은 proteolytic cleavage 활성을 보였다. 본 연구에서 정립한 protease 활성을 지닌 HtrA3의 제작과 정제 조건은 HtrA3의 substrate를 탐색을 용이하게 할 수 있을 것이며, HtrA3 연관된 질환의 발병기전과 세포 신호전달을 이해하는 연구에 활용될 수 있을 것이다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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