The optimum conditions for the production of an antifungal antibiotic from Bacillus sp. YJ-63 were investigated. The oprimumized medium consisted of 1.5% soluble starch, 1% tryptone and 0.5% yeast extract, and temperature and initial medium pH for production were optimal at 35$^{\circ}C$ and pH 6.0, respectively. Production yield was significantly improved by shaking culture using 50 ml medium in 500 ml flasks. Under these conditions, the production of the antifungal antibiotic was growth-dependent, from 35hrs into cultivation to the stationary phase and endospore formation.
Bacterial lysates have become a common ingredient for natural health care. Lactic acid bacteria (LAB) could serve as potential candidates for lysate production: the lactic acids produced by LAB have been utilized for their moisturizing, antimicrobial, and rejuvenating effects, while other substances provide topical benefits and health effects for the skin. Our study aimed to obtain lysate from a LAB S. macedonicus MBF 10-2 through an optimized fermentation using the Response Surface Methodology. Strain MBF10-2 was cultivated in a 2L fermenter tank in de Man Rogosa and Sharpe (MRS) medium and in plant-based peptone modified MRS, i.e. Soy-peptone and Vegitone. The duration and the medium composition (dextrose and soy peptone or proteose peptone) were adjusted to obtain an optimum production of cell lysate. Central Composite Design was employed for Design Expert 7.0.0 by adjusting 3 factors: dextrose (1%, 1.5%, 2%, 2.5%, 3%), soy or proteose peptone (0.5%, 0.75%, 1%, 1.25% and 1.5%), and duration of fermentation (8, 10, 12 14, and 16 h for MRS-Soy peptone and 15, 17, 19, 21, and 23 h for MRS Vegitone). Bacteriocin-Like Inhibitor Substance activity of lysate and pH were used as indicators. The optimum condition for lysate production using MRS Soy Peptone and Vegitone are as follows: dextrose concentration 2.5%, plant-based peptone 1.25%, while optimum fermentation duration were 11.18 h (MRS Soy Peptone) and 17 h (MRS Vegitone) with a starter concentration of 10% at $OD_{600nm}$$0.2{\pm}0.05$. However, the standard MRS medium produced better quality lysate compared to MRS plant-based peptones.
The fermenting conditions for acetic acid production with Acetobacter sp. FM-10 which could grow in the medium containing 10% ehtanol were investigated. Initial concentration of acetic acid in broth medium affected greatly to the fermentation speed. For example , the acetic acid production increased proportionally by the increasing of initial concentration was higher that 1.0%. When the cultivation was started with broth medium containing 5% ethanol, the additional adding ethanol during the fermentation was not significantly increased the acidity of the medium. The acidity of the medium containing 10% ethanol was reached to 8.3% after shaking than static cultivation by about 10 days with 150 rpm shaking speed. Acetic acid production with shaking cultivation was faster the static cultivation by abot 10 days under the same condition except shaking. In acetic acid fermentation with the batch style fermentor , the optimum fermentation condition was 700 rpm of agitation speed and 5L/min air flow rate in 3L culture medium .
Kim, Kyong-Ho;Kim, Hag-Sin;Oh, Young-Jin;Suh, Sug-Kee;Kim, Tae-Soo;Park, Ho-Kee;Park, Moon-Soo;Kim, Seok-Dong;Yeo, Up-Dong
Journal of Plant Biotechnology
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제2권3호
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pp.123-128
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2000
To enhance in vitro plantlet regeneration efficiency of soybean through embryogenesis, the culture conditions such as material part and size of immature seed, 2,4-D, pH and solidifying agents for somatic embryogenesis were investigated. Somatic embryogenesis was induced from the immature embryo, immature cotyledon and embryonic axis explants of the immature seed on MS medium supplemented with 2.0 mg/L 2,4-D. The highest rate (up to 22.9%) of somatic embryogenesis was obtained from the immature cotyledon, following embryonic axis and the immature embryo. The rate varied with the developmental stages of seed. The maximum rate (25.4%) of embryogenesis was obtained from 3-4 mm length of the seed (after 25 days of flowering). The optimum concentration of 2,4-D for embryogenesis was 10 mg/L. The optimum pH was at 5.8 and solidifying agent for medium was better with 0.4% gelrite than with agar. For rapid multiplication of shoot tips from the germinating somatic embryos, they were cultured on MS medium containing 2 mg/L indole-3-butyyic acid (IBA) and 1 mg/L 6-benzyladenine (BA). After then somatic embryos with one and three cotyledons were transferred to the growth regulator free medium. The medium exhibited the higher rate (ca. 50%) of development than the multiplication medium.
본 연구는 포자체 배양을 통하여 참쇠고비의 효율적인 번식방법을 구하고자 수행되었다. 배양절편의 기원(근경, 엽병, 엽신)과 절편의 균질화가 신초 계생에 미치는 영향을 조사한 결과, 오직 근경 조직에서만 기관발생능력이 관찰되었고, 식물체 재생은 배양재료를 균질화함으로써 더욱 촉진되었다. MS배지의 무기물 농도를 2배로 첨가한 배지에서 신초의 증식과 생장이 활발히 이루어졌다. 신초 재생에 적합한 배지의 질소함량은 MS배지의 1/2배 수준 이었고, 적정 sucrose농도는 1%였다. 또한 배지에 $NaH_2PO_4$를 첨가함으로써 재생된 식물체의 생육이 전반적으로 촉진되었다. 근경절편의 기관형성능력은 kinetin과 IBA를 혼용 처리함으로써 촉진되었으며, $0.1\sim0.2%$의 활성탄과 생장조절물질을 혼용 처리한 결과, 다수의 싹이 뭉친 듯이 보이는 primordia 형태의 발달이 억제되었고, 포자체의 정상적인 형태형성이 향상되었다.
In this work, mass production of Bacillus licheniformis SCD121067 through medium optimization by statistical experimental method was studied. First, galactose, yeast extract and potassium phosphate dibasic were selected as carbon, nitrogen and phosphate sources for mass production of B. licheniformis SCD121067 by using one factor at a time method. Second, according to the result of Plackett-Burman experimental design, key factors was yeast extract and $K_2HPO$. Finally, the response surface methodology was performed to obtain the optimum concentrations of two selected variables. The optimized medium composition consisted of 20 g/L galactose, 36 g/L yeast extract, 0.41 g/L $K_2HPO4$, 0.25 g/L $Na_2CO_3$, 0.4g/L $MgSO_4$ and 0.01g/L $CaCl_2$. Dry cell weight (15.4 g/L) by optimum production medium were increased 10 times, as compared to that determined with basic production medium (1.5 g/L). Fermentation conditions were examined for the mass production of B. licheniformis. The effect of temperature, agitation speed, pH and aeration rate on the mass production of B. licheniformis were also studied in a batch fermenter which was carried out in a 2.5 L bioreactor with a working volume of 1.5 L containing optimized production medium. As a result, dry cell weight of batch culture was 30.7 g/L at $42^{\circ}C$, 300 rpm, pH 8.0 and 2 vvm.
DagA, a ${\beta}$-agarase, was produced by cultivating a recombinant Streptomyces lividans in a glucose medium or a mixed-sugar medium simulating microalgae hydrolysate. The optimum composition of the glucose medium was identified as 25 g/l glucose, 10 g/l yeast extract, and $5g/l\;MgCl_2{\cdot}6H_2O$. With this, a DagA activity of 7.26 U/ml could be obtained. When a mixed-sugar medium containing 25 g/l of sugars was used, a DagA activity of 4.81 U/ml was obtained with very low substrate utilization efficiency owing to the catabolic repression of glucose against the other sugars. When glucose and galactose were removed from the medium, an unexpectedly high DagA activity of about 8.7 U/ml was obtained, even though a smaller amount of sugars was used. It is recommended for better substrate utilization and process economics that glucose and galactose be eliminated from the medium, by being consumed by some other useful applications, before the production of DagA.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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