Park, Jung-Hyun;Kang, Sung-Jo;Kang, Jin-Soon;Ryu, Jae-Chun;Chung, Duck-Hwa
Korean Journal of Food Science and Technology
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v.31
no.3
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pp.831-837
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1999
Ochratoxin A (OA), a naturally occurring mycotoxin, has been known to cause renal and hepatic lesion in human and animals. This study was carried out to investigate the modulation effects of antioxidant vitamins on OA-induced lipid peroxidation associated with oxidative damage. Vitamin C (10 mg/kg/day) and vitamin E (63.8 mg/kg/day) were administered by intraperitoneal (i.p.) injection to male ICR mice, and 1 hr later, OA which was dissolved in 0.1 M $NaHCO_3$, treated 4 mg/kg/day by i.p. injection. During 4 days repeated, and then measured superoxide dismutase (SOD) activity, catalase activity and malondialdehyde (MDA) formation in microsomes of liver and kidney. Additionally, the relationship between cell damage and modulation effects of antioxidant vitamins was evaluated by comet assay. Results were as followed; i) SOD, catalase activity and MDA level were significantly increased by OA treated, ii) SOD, catalase activity and MDA formation were significantly decreased by antioxidant vitamins combine treated, iii) blood cell damage associated with lipid peroxidation, induced by OA, also modulated by antioxidant vitamins. These results indicated that antioxidant vitamins might be used for prevention of renal and hepatic damage due to ochratoxicosis.
Fermented Korean soybean foodstuffs(12 samples of meju, 28 samples of doenjang and 28 samples of kanjang) which collected nation wide in Korea, were used to isolate of fungi. And the fungi producing ochratoxin A(OA) among isolated fungi were identified. Of total 222 fungi isolated in each samples, the production rate of OA was 17.7%(39/222). Four fungi out of 39 isolates which production OA showed a higher amount of ochratoxin A. From these results, four kinds of fungi producing large quantities of OA were Penicillium spp., Phialotubus microsporus, Eupenicillium lapidosum, and Paecilomyces variotti, respectively. Four fungi showed the optimum growth at water activity($a_{w}$) of 0.99, but production of OA was almost inhibited at $a_{w}$, of 0.85. Furthermore, three fungi except P. variotti showed the optimum growth at $30^{\circ}C$, while OA production inhibited at same temperature. The optimal pH for toxin production except P. variotti was 6.5. Also, toxin production was not greatly influenced by pH.
Ochratoxin A (OTA), one of mycotoxins produced mainly by Aspergillus is a common contaminant of stored grains, posing health hazards to human and livestock. The aim of this study is to explore ability of isolated bacteria Bacillus subtilis AF13 and Streptomyces shenzhenensis YR226 to remove OTA. AF13 and YR226 could remove 94.23 and 97.73% of OTA ($100{\mu}g/L$), respectively during 24 h incubation in NB medium. When cultures of two strains were separated into washed cells and cell-free supernatant, the supernatant of both strains removed more than 90% of $100{\mu}g/L$ OTA, and 98.88% of OTA could be also removed by the washed cells of YR226. OTA removal occurred in a few second by the supernatant of both strains, and treatments of autoclaving, proteinase K and chymotrypsin did not affect the OTA removal by the culture supernatants, which indicate that some thermostable and non-proteinaceous substances secreted by these bacteria may be involved in OTA removal in these two bacteria. These results suggest that AF13 and YR226 can be used to remove OTA from OTA-contaminated grains and feeds, and therefore decrease economic damage in agriculture and feed industry.
Kim, Jae-Kwan;Kim, Young-Sug;Lee, Chang-Hee;Seo, Mi Young;Jang, Mi Kyung;Ku, Eun-Jung;Park, Kwang-Hee;Yoon, Mi-Hye
Journal of Food Hygiene and Safety
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v.32
no.6
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pp.470-476
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2017
The purpose of this study was to investigate and evaluate the safety of the grains, nut products, beans and oilseeds being sold in Gyeonggi province by analyzing mycotoxins. A multi-mycotoxins analysis method based on LC-MS/MS was validated and applied for the determination of eight mycotoxins, including aflatoxins ($B_1$, $B_2$, $G_1$ and $G_2$), fumonisins ($B_1$, $B_2$), zearalenone and ochratoxcin A in 134 samples. The limit of detection (LOD) and limit of quantitation (LOQ) for the eight mycotoxins ranged from 0.14 to $8.25{\mu}g/kg$ and from 1.08 to $7.21{\mu}g/kg$, respectively. Recovery rates of mycotoxins were determined in the range of 61.1 to 97.5% with RSD of 1.0~14.5% (n=3). Fumonisin $B_1$, $B_2$, zearalenone, and ochratoxin A were detected in 22 samples, indicating that 27% of grains, 12.5% of beans and 11.8% of oilseeds were contaminated. Fumonisin and zearalenone were detected simultaneously in 2 adlays and 3 sorghums. Fumonisin $B_1$ and $B_2$ were detected simultaneously in most samples whereas fumonisin $B_1$ was detected in 1 adlay, 1 millet and 1 sesame sample. The average detected amount of fumonisin was $49.3{\mu}g/kg$ and $10.1{\mu}g/kg$ for grains and oilseeds, respectively. The average detected amount of zearalenone was $1.9{\mu}g/kg$ and $1.5{\mu}g/kg$ for grains and beans, respectively. In addition, the average amount of ochratoxin A was $0.08{\mu}g/kg$ for grains. The calculated exposure amounts of fumonisin, zeralenone and ochratoxin A for grains, beans and oilseeds were below the PMTDI/PTWI.
A total of 106 samples (nuts, nut products, oilseeds, oilseed products, seed for beverage products) were simultaneously analyzed with LC/MS/MS method. The tested mycotoxins were aflatoxin (B1, B2, G1, G2), ochratoxin A, fumonisin (B1, B2), and zearalenone. Mycotoxins were detected in 37 of 106 samples (35%), and two or more mycotoxins were simultaneously detected in 9 of 106 samples (8.5%). Aflatoxin, ochratoxin A, fumonisin and zearalenone were detected at the range of 0.08-1.45 ㎍/kg, 17.29 ㎍/kg, 1.16-14.89 ㎍/kg and 0.12-12.69 ㎍/kg, respectively. The results revealed that the most frequently detected mycotoxin was zearalenone (23%), followed by aflatoxin (13%), fumonisin (8%) and ochratoxin A (1%). Detection rates of nuts and oilseeds were 35% and 33%, respectively, and detection rates of their processed foods were 44% and 46%, respectively. The detection rate of mycotoxins was 10% higher in processed foods than in nuts and oilseeds. Mycotoxins are physicochemically stable and can persist during food processing and cooking, making management of mycotoxins in raw materials a concern of high importance.
Proceedings of the Korean Society of Toxicology Conference
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2001.05a
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pp.168-168
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2001
The mycotoxin, ochratoxin A (OTA) has been known to induce microcephaly in animals and in vitro whole embryo. Cytotoxic effect and inhibition of cell differentiation were proposed as underlying mechanisms responsible for OTA-induced microcephaly.(omitted)
The potential for ochratoxin A (OTA) degradation by swine intestinal microbiota was assessed in the current study. Intestinal content that was collected aseptically from swine was spiked with 100 ppb OTA and incubated for 6 and 12 h at $39^{\circ}C$. An OTA assay was conducted using the incubated samples, and it was found that 20% of the OTA toxin was detoxified, indicating the presence of microbes capable of OTA degradation. Twenty-eight bacterial species were isolated anaerobically in M 98-5 media and 45 bacterial species were isolated using nutrient broth aerobically. Screening results showed that one anaerobic bacterial isolate, named MM11, detoxified more than 75% of OTA in liquid media. Furthermore, 1.0 ppm OTA was degraded completely after 24 h incubation on a solid 'corn' substrate. The bacterium was identified by 16S rDNA sequencing as having 97% sequence similarity with Eubacterium biforme. The isolation of an OTA-degrading bacterium from the swine natural flora is of great importance for OTA biodegradation and may be a valuable potential source for OTA-degradation enzymes in industrial applications.
Shim, Won-Bo;Dzantiev, Boris B.;Eremin, Sergei A.;Chung, Duck-Hwa
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.19
no.1
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pp.83-92
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2009
Individual immunochromatographic assays (ICG) for ochratoxin A (OTA) and zearalenone (ZEA) were optimized and used in the development of a one-step simultaneous immunochromatographic assay (OS-ICG) for the rapid multianalysis of two mycotoxins in corn samples. The nitrocellulose membrane of the OS-ICG was treated with OTA-bovine serum albumin (BSA), ZEA-ovalbumin (OVA), and anti-mouse IgG in the OTA test, ZEA test, and control zones, respectively. Monoclonal antibody-gold conjugates (OTA3 MAb-gold and ZEA2C5 MAb-gold) were sprayed onto the conjugate pad. The visual detection limits were 2.5 and 5 ng/ml for OTA and ZEA, respectively, and the results were obtained within 15 min after starting the analysis. An efficient, simple, and rapid extraction method using 30% MeOH/PBS was established and validated by analyzing the corn samples spiked with OTA/ZEA mixtures (0/0, 5/10, 10/20, and $20/30\;{\mu}g/kg$). The cut-off values of the OS-ICG for the spiked corn were 5 and $10\;{\mu}g/kg$ for OTA and ZEA, respectively. Natural corn samples were analyzed by OS-ICG, direct competitive enzyme-linked immunosorbent assay (DC-ELISA), and HPLC. Results of the OS-ICG were in good agreement with those obtained by DC-ELISA and HPLC. The developed OS-ICG offers a rapid, easy-to-use, and portable analytical system and can be used as a convenient qualitative tool for the on-site simultaneous determination of OTA and ZEA in cereals, food, and agricultural products in one analytical cycle.
A one-step simultaneous immunchromatographic (OS-ICG) assay using colloidal gold-monoclonal antibody (gold-MAb) conjugates was developed for the rapid multianalysis of aflatoxin B1 (AFB1) and ochratoxin A (OTA) in feed samples. Visual detection limits for AFB1 and OTA were 0.5 and 2.5 ng/mL, respectively, and the results were obtained within 15 min. Matrix interference from the feed extracts was efficiently reduced by appropriate dilution with buffer. Cut-off values of the OS-ICG assay for the feed spiked with AFB1/OTA mixtures (5/5, 10/10, 25/25, 50/55, 100/100 ${\mu}g/kg$) were 10 and 50 ${\mu}g/kg$ for AFB1 and OTA. The comparative analyses of 65 feed samples by OS-ICG, enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), and high performance liquid chromatography (HPLC) showed good agreement. In this study, we confirmed that simultaneous analysis based on immunoassay is possible and it can be used as an on-site multianalysis of AFB1 and OTA in feed, food, and agricultural products.
Choi, Eun Jung;Park, Young Ae;Choi, Su Jeong;Jung, Sam Ju;Park, Youn Sun;Hwang, In Sook;Yu, In Sil;Shin, Gi Young
Korean Journal of Pharmacognosy
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v.51
no.4
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pp.270-277
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2020
This study analyzed mycotoxins, aflatoxin B1, B2, G1, G2, fumonisin B1, B2, ochratoxin A and zearalenone, using LC-MS/MS and conducted risk assessment on 54 samples of seeds distributed in SeoulYangnyeongsi and the management status of extramural herbal dispensary facility. The matched calibration showed a good linearity as observed in 6 concentration levels(r2>0.999) as a result of method validation applied with Arecae semen. Limits of detection(LOD) and quantification(LOQ) were in the range of 0.02-0.11 ㎍/kg and 0.08-0.34 ㎍/kg, respectively. Recoveries also estimated, ranging from 65.1-99.7% with relative standard deviation(RSD) 0.5-6.3%. As a result of the method on 54 samples, mycotoxins were detected in 16 samples. Among them, two Thujae semen showed a degree of concentration that exceeded the aflatoxin specification. In the risk assessment, the human exposure safety standard values were calculated as ADI(Acceptable Daily Intake) for aflatoxin B1, fumonisin and zearalenone. Ochratoxin A was calculated as PTWI(Provisional Tolerable Weekly Intake). The MOE(Margine of Exposure) of aflatoxin B1 was in the range of 40.36-3536.88. And no items exceeded 100% in %TDI(Tolerable Daily Intake) and %TWI(Tolerable Weekly Intake) of fumonisin, zearalenone and ochratoxin A.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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