Kim, Yeong-Hwa;Kim, Mi-Ryeong;Park, Geun-Yeong;Jeon, Hong-Gi;Kim, Seong-Gu
한국생물공학회:학술대회논문집
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2000.11a
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pp.623-625
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2000
Bacteriocin-producing lactic acid bacteria was isolated from Kimchi using MRS as selective media and Lactobacillus delbruekii subsp. delbruekii as an indicator strain. Strain JC-3 was tentatively identified as Lactococcus latis subsp. lactis through the API test and the bacteriocin produced by JC-3 showed the inhibitory activity against Grampositive pathogens and other lactic acid bacteria. The antimicrobial substance was inactivated by Protamax, Aroase AP-10, Neutrase, R-AMANO and was confirmed to be heating at $100^{\circ}C$. However, it was lost at high pH values showed the highest bacteriocin activity at a culture temperature of $30^{\circ}C$. The bacteriocin was partially purified by ammonium sulfate precipitation, Sep-pak $C_{18}$ cartridge. The apparent molecular mass of the bacteriocin was about 8 Kda, which was determined through the direct detection of bactericidal activity using SDS -PAGE.
In the present study, we determined the degree of hydrolysis (DH) of porcine blood plasma proteins, albumin, and globulin hydrolyzed by six proteases (alcalase, neutrase, flavourzyme, protamex, trypsin, and papain) for various reaction times. Moreover, antimicrobial activities of hydrolysates against five pathogenic microorganisms (Bacillus cereus, Staphylococcus aureus, Salmonella Typhimurium, Escherichia coli, and Shigella flexneri) were investigated. Alcalase, trypsin, and papain hydrolysates of the three porcine blood proteins showed higher DH values than hydrolysates produced by the other three proteases. DH of the three porcine blood proteins hydrolyzed by the six proteases failed to increase after 2 h of hydrolysis. In antimicrobial tests, hydrolysates (hydrolysis time of 2 h) showed antibacterial activity only against B. cereus. Albumin hydrolysates showed higher antimicrobial activity than globulin and plasma hydrolysates. Albumin hydrolysates obtained with flavourzyme, protamex, and trypsin showed higher antimicrobial activity than those obtained with the other three proteases.
Park, Sung-Ha;Lee, Jung-Kwon;Jeon, Joong-Kyun;Byun, Hee-Guk
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
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v.44
no.5
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pp.456-463
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2011
We attempted to isolate a collagenase-1 inhibitory peptide from skate Dipturus chilensis skin protein. The protein from skate skin was digested by various enzymes (alcalase, ${\alpha}$-chymotrypsin, neutrase, papain, pepsin, and trypsin) to produce a collagenase-1 inhibitory peptide. The collagenase-1 inhibitory activity of the peptides obtained was measured by gelatin digestion assay. Among the six hydrolysates, pepsin hydrolysate exhibited the highest collagenase-1 inhibitory activity. The peptide showing strong collagenase-1 inhibitory activity was purified by Sephadex G-25 gel chromatography and HPLC using an octadecylsilyls (ODS) column. The amino acid sequence of purified collagenase-1 inhibitory peptide was identified to be Asn-Leu-Asp-Val -Leu-Glu-Val-Phe (961 Da) by quadrupole time of flight (Q-TOF) and electrospray ionization mass spectrometry (ESI-MS) mass spectroscopy. The $IC_{50}$ value of purified peptide was 87.0 ${\mu}M$. Moreover, the peptide did not exhibit cytotoxic effects on human dermal fibroblast cell lines.
Infection with HIV (Human immunodeficiency virus), over time, develops into acquired immunodeficiency syndrome (AIDS). The development of non-toxic and effective anti-HIV drugs is one of the most promising strategies for the treatment of AIDS. In this study, we investigated the anti-HIV-1 activity of gelatin hydrolysates from Alaska pollack skin. Gelatin hydrolysates were prepared using four enzymes (alcalase, flavourzyme, neutrase, and pronase E). Among these, the pronase E gelatin hydrolysate was found to inhibit HIV-1 infection in the human T cell-line MT4. It exhibited inhibitory activity on HIV-1IIIB-induced cell lysis, reverse transcriptase activity, and viral p24 production at noncytotoxic concentrations. Moreover, it decreased the activation of matrix metalloproteinase-2 (MMP-2) in vitro. Because HIV infection-induced activation of MMP-2 can accelerate collagen resolution and collapse of the immune system, pronase E gelatin hydrolysate might prevent the activation of MMP-2 in cells, resulting in collagen stabilization and immune cell homeostasis consistent with anti-HIV activation. These results suggest that pronase E gelatin hydrolysate could potentially be incorporated into a novel therapeutic agent for HIV/AIDS patients.
In this study, we assessed the antioxidant properties of tidal pool microalgae, Halochlorococcum porphyrae and Oltamannsiellopsis unicellularis, from Jeju Island, Korea. Specifically, the antioxidant activity of fractions isolated from 80% methanol extract, and digests produced from five proteases and carbohydrases, were investigated. Almost all the fractions and the 80% methanol extract exhibited higher effects on 1,1-Diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) free radical scavenging. The ethyl acetate fraction showed the highest superoxide anion scavenging activity, while both n-hexane and chloroform fractions exhibited higher $H_2O_2$ scavenging activity. Among the enzymatic digests from H. porphyrae and O. unicellularis, all the digests exhibited remarkable DPPH scavenging activities. In nitric oxide inhibition, all the digests recorded significantly higher effects than those of the commercial antioxidants (p < 0.05). Flavozyme and Neutrase digests from H. porphyrae, and Termamyl and Alcalase digests from O. unicellularis, showed significant effects in metal chelating. Lipid peroxidation was significantly inhibited in the ethyl acetate fraction, in the Celluclast and Protamex digests from H. porphyrae, and in the chloroform fraction from O. unicellularis. These findings suggest that the two tidal pool microalgae tested in this study are rich in potential antioxidative compounds, the specific properties of which can be considered for use in the food and pharmaceutical industries.
In this study, we focused on natural water-soluble antioxidants from fresh water microalgae, Pediastrum duplex and Dactylococcopsis fascicularis from Jeju Island, Korea. They were prepared by enzymatic digestion using five carbohydrases (Viscozyme, Celluclast, AMG, Termamyl and Ultraflo) and five proteases (Protamex, Kojizyme, Neutrase, Flavourzyme and Alcalase), and the potential antioxidant activity of each was assessed. All enzymatic digests from P. duplex showed significant DPPH scavenging effects. Termamyl (60.6%) digest from P. duplex possessed the highest effects on hydrogen peroxide scavenging. Celluclast (58.1%) and Kojizyme digests (56.9%) from D. fascicularis possessed higher effects on superoxide anion radical scavenging. All enzymatic digests exhibited significant effects on both NO· scavenging and metal chelating. Lipid peroxidation was significantly in inhibited Viscozyme, Termamyl and Kojizyme digests from P. duplex and Ultraflo, Protamex, Kojizyme and Alcalase digests from D. fascicularis. These data suggest that enzymatic digests of the fresh water microalgae, P. duplex and D. fascicularis might be valuable sources of antioxidant which can be applied in food and pharmaceutical industry.
The antioxidative effect of Ecklonia cava, a brown marine alga, was investigated on radical scavenging, including 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH), and hydroxyl and alkyl radicals, using an electron spin resonance (ESR) technique, and on the inhibition of $H_2O_2$-induced DNA damage using comet assay. E. cava was enzymatically hydrolyzed with five food industrial proteases (Alcalase, Flavourzyme, Kojizyme, Neutrase and Protamex) to prepare water-soluble extracts. All the proteolytic hydrolysates exhibited strong dose-dependent radical scavenging activities (above 80%) at a concentration of $2.5\;{\mu}g/mL$. Kojizyme extract (obtained by proteolytic hydrolysation of E. cava with Kojizyme) showed the highest hydroxyl radical scavenging activity of around 98%. In addition, the $H_2O_2$-induced DNA damage was determined using a comet assay, which was quantified by measuring the tail length. Reduction of DNA damage increased with increasing concentrations of Kojizyme extract from E. cava. These results indicated that E. cava has a potential as a valuable natural antioxidative source.
In this study, an angiotensin I-converting enzyme (ACE) inhibitor from squid skin was purified and characterized. Squid (Todarodes pacificus) skin protein isolates were hydrolyzed using six commercial proteases: alcalase, ${\alpha}$-chymotrypsin, neutrase, papain, pepsin, and trypsin. The peptic hydrolysate had the highest ACE inhibitory activity. The ACE inhibitory peptide was purified using Sephadex G-25 column chromatography and reverse phase high-performance liquid chromatography (HPLC) with a $C_{18}$ column. The purified ACE inhibitory peptide was identified and sequenced, and found to consist of seven amino acid residues: Ser-Ala-Gly-Ser-Leu-Val-Pro (657Da). The $IC_{50}$ value of the purified ACE inhibitory peptide was 766.2 ${\mu}M$, and Lineweaver-Burk plots suggested that the purified peptide acts as a noncompetitive ACE inhibitor. These results suggest that the ACE inhibitory peptide purified from the peptic hydrolysate of squid skin may be of benefit in developing antihypertensive drugs and functional foods.
An enzymatic process was developed to produce protein hydrolysater form defatted soya protein. Various unit operations were tried, and the effects of pre- and post-treatments on the product characteristics such as degree of hydroylsis (DH), free amino acid content (%FAA) and average molecular weight (MW) were investigated. The use of acid washes showed no difference in %DH. Increasing pH during pre-cooking gave lower %DH. Alkaline cooking made too much insoluble protein, thus the protein yield was too small. A better hydrolysis with more acceptable taste was obtained when the combination of Neutrase/Alcalase/Flavourzyme was used in place of Alcalase/Flavourzyme combination; Untoasted defatted soya was more effective on the proteolysis than toasted one. The MW of the evaporated and spray dried product was higher than that of undried product, due to precipitation of low-solubility components. When ultrafiltration and the product concentration carried out the product separation by reverse osmosis, the solubility and the taste of the product were improved. The difference between enzyme hydrolysate and acid hydrolysate was significant in free amino acid composition, especially in tyrosine, phenylalanine, glutamine and asparagine.
Seven brown algal species (Ecklonia cava, Ishige okamurae, Sargassum fulvellum, Sargassum horneri, Sargassum coreanum, Sargassum thunbergii and Scytosiphon lomentaria) were hydrolyzed using five proteases (Protamex, Kojizyme, Neutrase, Flavourzyme and Alcalase) and screened for angiotensin 1-converting enzyme (ACE) inhibitory activities. Most algal species examined showed good ACE inhibitory activities after the enzymatic hydrolysis. However, E. cava was the most potent ACE inhibitor of the seven species. Flavourzyme digest of E. cava exhibited an $IC_{50}$ of around $0.3\;{\mu}g/mL$ for ACE; captopril has an $IC_{50}$ of $\~0.05\;{\mu}g/mL$. The Flavourzyme digest was separated to three fractions by an ultrafiltration membrane (5, 10, 30 kDa MWCO) system according to the molecular weights. The active components were mainly concentrated in >30 kD fraction which are composed of the highest protein content $(27\%)$ and phenolic content (261 mg/100 mL) compared to the other two smaller molecular weight fractions. Therefore, the active compounds appear to be relatively high molecular weight complex molecules associated with protein (glycoprotein) and polyphenols. Therefore, E. cave is a potential source of antihypertensive compound.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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