This study was designed to investigate the effects of nitric oxide on the neuronal activity of rat cerebellar Purkinje cells. Sprague-Dawley rats aged 14 to 16 days were decapitated under ether anesthesia. After treatment with pronase and thermolysin, the dissociated Purkinje cells were transferred into a chamber on an inverted microscope. Spontaneous action potentials and potassium current were recorded by standard patch-clamp techniques under current and voltage-clamp modes respectively. 15 Purkinje cells revealed excitatory responses to $20\;{\mu}M$ of sodium nitroprusside (SNP) and 4 neurons (20%) did not respond to SNP. Whole potassium currents of Purkinje cells were decreased by SNP (n=10). Whole potassium currents of Purkinje cells were also decreased by L-arginine, substrate of nitric oxide (n=10). These experimental results suggest that nitric oxide increases the neuronal activity of Purkinje cells by altering the resting membrane potential and after hyperpolarization.
The superficial dorsal horn, particularly substantia gelatinosa (SG) in the spinal cord, receives inputs from small-diameter primary afferents that predominantly convey noxious sensation. Reactive oxygen species (ROS) are toxic agents that may be involved in various neurodegenerative diseases. Recent studies indicate that ROS are also involved in persistent pain through a spinal mechanism. In the present study, whole cell patch clamp recordings were carried out on SG neurons in spinal cord slice of young rats to investigate the effects of hydrogen peroxide on neuronal excitability and excitatory synaptic transmission. In current clamp condition, tert-buthyl hydroperoxide (t-BuOOH), an ROS donor, depolarized membrane potential of SG neurons and increased the neuronal firing frequencies evoked by depolarizing current pulses. When slices were pretreated with phenyl-N-tert-buthylnitrone (PBN) or ascorbate, ROS scavengers, t-BuOOH did not induce hyperexcitability. In voltage clamp condition, t-BuOOH increased the frequency and amplitude of spontaneous excitatory postsynaptic currents (sEPSCs), and monosynaptically evoked excitatory postsynaptic currents (eEPSCs) by electrical stimulation of the ipsilateral dorsal root. These data suggest that ROS generated by peripheral nerve injury can modulate the excitability of the SG neurons via pre- and postsynaptic actions.
Prevailing role of intracellular amyloid ${\beta}$ ($iA{\beta}$) in Alzheimer's disease (AD) initiation and progression attracts more and more attention in recent years. To address whether $iA{\beta}$ induces early alterations of electrophysiological properties in cultured human primary neurons, we delivered $iA{\beta}$ with adenovirus and measured the electrophysiological properties of infected neurons with whole-cell recordings. Our results show that $iA{\beta}$ induces an increase in neuronal resting membrane potentials, a decrease in $K^+$ currents and a hyperpolarizing shift in voltage-dependent activation of $K^+$ currents. These results suggest the electrophysiological impairments induced by $iA{\beta}$ may be responsible for its neuronal toxicity.
This study was designed to investigate the effects of sphingosine-1-phosphate on the neuronal activity of rat medial vestibular nuclear neurons. Sprague-Dawley rats aged 14 to 16 days were decapitated under ether anesthesia. After treatment with pronase and thermolysin, the dissociated medial vestibular nuclear neurons were transferred into a chamber on an inverted microscope. Spontaneous action potentials and potassium currents were recorded by standard patch-clamp techniques under current and voltage-clamp modes respectively. 15 medial vestibular nuclear neurons revealed excitatory responses to 1 and $5\;{\mu}M$ of sphingosine-1-phosphate. The spike frequency and resting membrane potential of these cells were increased by sphingosine-1-phosphate. The amplitude of afterhyperpolarization was decreased by sphingosine-1-phosphate. Whole potassium currents of medial vestibular nuclear neurons were decreased by sphingosine-1-phosphate (n=12). Sphingosine-1-phosphate did not affect the charybdotoxin-treated potassium currents. These experimental results suggest that sphingosine-1-phosphate increases the neuronal activity of the medial vestibular nuclear neurons by altering the resting membrane potential and afterhyperpolarization.
Kim, Dae-Ran;Ahn, Sung-Wan;Park, Kyu-Sang;Kong, In-Deok
Biomedical Science Letters
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v.13
no.2
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pp.119-125
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2007
It is widely known that protein tyrosine kinases (PTKs) are involved in controlling many biological processes such as cell growth, differentiation, proliferation, survival and apoptosis. An $\alpha3\beta4$ subunit combination acts as a major functional acetylcholine receptor (nAChRs) in male rat major pelvic ganglion (MPG) neurons, and their activation induces fast inward currents and intracellular calcium increases. Recently it has been reported that the activity of acetylcholine receptors (AChRs) in some neurons can be negatively regulated by PTKs. However, the exact mechanism of regulation of nAChRs by PTKs is poorly understood. Therefore, we examined the potential role particular in nAChR by PTK using electrophysiology and calcium imaging in male rat MPG neurons. ACh induced inward currents and $(Ca^{2+})_i$ increases in MPG neurons, concomitantly. These responses were inhibited by more than 90% in $Na^+$- or $Ca^{2+}$- free solution. $\alpha$-conotoxin AuIB, a selective $\alpha3\beta4$ nAChR blocket, inhibited ACh-induced inward currents. Genistein (10 $\mu$M), a broad-spectrum tyrosine kinase inhibitor, markedly decreased ACh-induced currents and $Ca^{2+}$ transients, whereas 10 $\mu$M genistin, an inactive analogue, had little effect. Overall these data suggest that the activities of $\alpha3\beta4$ AChRs in MPG neurons are positively regulated by PTK. In conclusion, trosine kinase may be one of the key factors in the regulation of $\alpha3\beta4$ nAChRs in rat MPG neurons, which may play an important roles in the autonomic neuronal function such as synaptic transmission, autonomic reflex, and neuronal plasticity.
Presuming that firing neurons have motions inside the MRI magnet due to the interaction between the neuronal magnetic field and the main magnetic field, we applied motion encoding gradients to dissected snail ganglia to observe faster responding MRI signal than the BOLD signal. To activate the snail ganglia in synchronization with the MRI pulse sequence, we used electrical stimulation with the frequency of 30 Hz and the pulse width of 2s. To observe the fast responding signal, we used the volume selected MRI sequence. The magnetic resonance signal intensity, measured with 8 ms long motion encoding gradient with a 20mT/m gradient strength, decreased about $3.46{\pm}1.48%$ when the ganglia were activated by the electrical stimulation.
This study was designed to investigate the effects of high concentration of (-)-epigallocatechin-3-gallate(EGCG) on the neuronal activity of rat substantia nigra dopaminergic neurons. Sprague-Dawley rats aged 14 to 16 days were decapitated under ether anesthesia. After treatment with pronase and thermolysin, the dissociated dopaminergic neurons were transferred into a chamber on an inverted microscope. Spontaneous action potentials and potassium currents were recorded by standard patch-clamp techniques under current and voltage-clamp modes respectively. 18 dopaminergic neurons(80%) revealed inhibitory responses to 40 and 100 ${\mu}M$ of EGCG and 4 neurons(20%) did not respond to EGCG. The spike frequency and resting membrane potential of these cells were decreased by EGCG. The amplitude of afterhyperpolarization was increased by EGCG. Whole potassium currents of dopaminergic neurons were increased by EGCG(n=10). These experimental results suggest that high concentration EGCG decreases the neuronal activity of the dopaminergic neurons by altering the resting membrane potential and afterhyperpolarization.
Blocking or regulating $K^+$ channels is important for investigating neuronal functions in mammalian brains, because voltage-dependent $K^+$ channels (Kv channels) play roles to regulate membrane excitabilities for synaptic and somatic processings in neurons. Although a number of toxins and chemicals are useful to change gating properties of Kv channels, specific effects of each toxin on a particular Kv subunit have not been sufficiently demonstrated in neurons yet. In this study, we tested electro-physiologically if heteropodatoxin2 ($HpTX_2$), known as one of Kv4-specific toxins, might be effective on various $K^+$ outward currents in CA1 neurons of organotypic hippocampal slices of rats. Using a nucleated-patch technique and a pre-pulse protocol in voltage-clamp mode, total $K^+$ outward currents recorded in the soma of CA1 neurons were separated into two components, transient and sustained currents. The extracellular application of $HpTX_2$ weakly but significantly reduced transient currents. However, when $HpTX_2$ was added to internal solution, the significant reduction of amplitudes were observed in sustained currents but not in transient currents. This indicates the non-specificity of $HpTX_2$ effects on Kv4 family. Compared with the effect of cytosolic 4-AP to block transient currents, it is possible that cytosolic $HpTX_2$ is pharmacologically specific to sustained currents in CA1 neurons. These results suggest that distinctive actions of $HpTX_2$ inside and outside of neurons are very efficient to selectively reduce specific $K^+$ outward currents.
Journal of Physiology & Pathology in Korean Medicine
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v.21
no.2
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pp.432-437
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2007
Reactive oxygen species (ROS) are toxic agents that may be involved in various neurodegenerative diseases. Recent studies indicate that ROS are also involved in persistent pain through a spinal mechanism. In the present study, whole cell patch clamp recordings were carried out on substantia gelatinosa (SG) neurons in spinal cord slice of neonatal rats to investigate the effects of ROS on neuronal excitability and excitatory synaptic transmission. In current clamp condition, tert-buthyl hydroperoxide (t-BuOOH), an ROS donor, induced a electrical hyperexcitability during t-BuOOH wash-out followed by a brief inhibition of excitability in SG neurons. Application of t-BuOOH depolarized membrane potential of SG neurons and increased the neuronal firing frequencies evoked by depolarizing current pulses. Phenyl-N-tert-buthylnitrone (PBN), an ROS scavenger, antagonized t-BuOOH induced hyperexcitability. IN voltage clamp conditions, t-BuOOH increased the frequency and amplitude of spontaneous excitatory postsynaptic currents (sEPSCs). In order to determine the site of action of t-BuOOH, miniature excitatory postsynaptic currents (mEPSCs) were recorded. t-BuOOH increased the frequency and amplitude of mEPSCs, indicating that it may modulate the excitability of the SG neurons via pre- and postsynaptic actions. These data suggest that ROS generated by peripheral nerve injury can induce central sensitization in spinal cord.
Primary culture of cerebellar neuronal cells derived from 8-day old Long-Evans rats was used. Pure granule cells, astrocytes or mixed cells culture systems were prepared. These cells were differentiated and developed synaptic connections. And the astrocytes were identified by immunostaining with glial fibrillary acidic protein (GFAP). Methamphetamine (MAP), which acts on dopaminergic system and cadmium (Cd), a toxic heavy metal, were applied and biochemical assays and electrophysiological studies were performed. $LC_50$ values estimated by MTT assay of MAP and Cd were 3 mM and 2$\mu M$ respectively. Cells were treated with 1 mM or 2 mM MAP and 1$\mu M$ $CdCl_2$ for 48 hour, and the incubation media were analyzed for the content of released LDH. MAP (2 mM) and Cd significantly increased the LDH release. Cell viability was decreased in both groups and some cytopathological changes like cell swelling or vacuolization were seen. The cerebellar granule cells were used for measuring membrane currents using whole-cell clamp technique. Sodium and potassium currents were not affected by MAP neither Cd, but calcium current was significantly reduced by Cd but not affected by MAP. Therefore, in vitro neurotoxicity test system using neuronaI cells and astrocytes cultures were established and can be used in screening of potential neurotoxic chemicals.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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