1) To study the productivity of single cell protein from the n-paraffin utilizing yeast, 235 yeast strains were isolatea from 90 samples 2) Optimum cell growth temperature of three strains selected was 40~45$^{\circ}C$ and these were identified as Candida tropicalis, Candida krusei and Torulopsis molischiana. 3) A-28 strain easily assimilated tetradecane, hexadecane and octadecane, but B-8 strain and C-15 strain assimilated more hexadecane than other n-paraffins. 4) Out of the selected three strains, the mass doubling time, specific growth rate and cell yield were 3.4~4.0 hours, 0.170~0.215, 86~98%, respectively. 5) Crude protein, fat, fiber, ash and nitrogen free extract of the selected three strains were found to be 48.2~61.2% 3.7~8.0%, 3.5~4.2%, 5.6~6.7%, 23.5~31.8%, respectively, and thiamine and riboflavin contents of dried yeast cell were 0.78~0.93 mg% and 6.03~7.3 mg%, respectively. 6) Yeast protein contained evenly most of amino acid, but the sulfur-containing amino acids were particularly low.
Kim, Kwang-Seo;Kim, Jeong Hoon;Kim, Do Yeob;Kim, Hyun Jong;Park, Sang Tae;Kim, Young Min
Molecules and Cells
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v.20
no.3
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pp.392-400
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2005
The genes encoding the DNA gyrase A (GyrA) and B subunits (GyrB) of Methylovorus sp. strain SS1 were cloned and sequenced. gyrA and gyrB coded for proteins of 846 and 799 amino acids with calculated molecular weights of 94,328 and 88,714, respectively, and complemented Escherichia coli gyrA and gyrB temperature sensitive (ts) mutants. To analyze the role of type II topoisomerases in the intrinsic quinolone resistance of methylotrophic bacteria, the sequences of the quinolone resistance-determining regions (QRDRs) in the A subunit of DNA gyrase and the C subunit (ParC) of topoisomerase IV (Topo IV) of Methylovorus sp. strain SS1, Methylobacterium extorquens AM1 NCIB 9133, Methylobacillus sp, strain SK1 DSM 8269, and Methylophilus methylotrophus NCIB 10515 were determined. The deduced amino acid sequences of the QRDRs of the ParCs in the four methylotrophic bacteria were identical to that of E. coli ParC. The sequences of the QRDR in GyrA were also identical to those in E. coli GyrA except for the amino acids at positions 83, 87, or 95. The $Ser^{83}$ to Thr substitution in Methylovorus sp. strain SS1, and the $Ser^{83}$ to Leu and $Asp^{87}$ to Asn substitutions in the three other methylotrophs, agreed well with the minimal inhibitory concentrations of quinolones in the four bacteria, suggesting that these residues play a role in the intrinsic susceptibility of methylotrophic bacteria to quinolones.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.25
no.5
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pp.878-884
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1996
A bacterial strain, designated as Bacillu sp. IJ-3 strain, was shown to produce the extracellular soy protein coagulating enzyme and culture conditions for the production of enzyme by this microbial strain was investigated. The culture medium giving a maximum soy protein coagulating activity was consist of 20%(w/v) soymilk, 2.0%(w/v) glucose, 4.0%(w/v) yeast extract, 5.0%(w/v) polypeptone and 1.0%(w/v) potassium phosphate, monobasic. Initial pH was optimal at 6.0 and the enzyme activity in the culture usually reached a maximal level of fermentation at $35^{\circ}C.$ After the culture medium adjustment where required, enzyme activity was reached maximum at 72 hour of cultivation but this enzyme activity was reduced quickly. It can be assumed that Bacillu sp. IJ-3 strain enzyme has a specificity toward the 75 globulin.
The purpose of this study was to investigate the probiotic characteristics and immune activities of selected lactic acid bacterial (LAB) strains as feed additives in livestock. 301 LAB strains isolated from traditional fermented foods were first assessed for their antibacterial activity potential. Of the 301 isolates, five showed antibacterial activity against five livestock pathogens (Esherichia coli KCCM11234, Listeria monocytogens KCTC3710, Salmonella Typhimurium KCTC1926, Staphylococcus aureus KCCM11593, and Shigella flexneri KCTC2517). The probiotic characteristics of the five selected strains were also investigated by antioxidative activity, hemolysis, bile salt hydrolase, acid resistance and bile tolerance. The SRCM102607 strain was found to have superior probiotic properties and was selected for further experimentation. 16S rRNA gene sequencing showed that SRCM102607 is Pediococcus acidilactici, which was labeled as P. acidilactici SRCM102607 (KCCM 12246P). The survival characteristics of P. acidilactici SRCM102607 in artificial gastrointestinal conditions were assessed under exposed acidic (pH 2.0) and bile (0.5% and 1.0%) conditions. P. acidilactici SRCM102607 was also confirmed to have resistance to various antibiotics, including amikacin, gentamicin, vancomycin, and etc. The TNF-α production by P. acidilactici SRCM102607 was 171.86±4.00 ng/ml. These results show that P. acidilactici RCM102607 has excellent potential for use as a probiotic livestock feed additive.
Yang, Hee Gun;Ha, Gwangsu;Ryu, Myeong Seon;Park, Se Won;Jeong, Ho Jin;Yang, Hee-Jong;Jeong, Do-Youn
Journal of Life Science
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v.31
no.8
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pp.761-770
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2021
In this study, the optimal medium composition for enhancing protease production was established by the Bacillus strain isolated from Makgeolli, a traditional fermented food, using the response surface methodology. B. amyloliquefaciens SRCM115785 was selected as the protease producer by productivity analysis and identified by 16S rRNA gene sequencing. Plackett-Burman design (PBD) was introduced to analyze the effect of each component on protease production among the 11 selected medium components. As a result, glucose, yeast extract, and beef extract were finally selected as factors for enhancing protease production. Central composite design (CCD) analysis was designed as a method to determine the optimal concentration of each component for protease production and the concentration of each medium composition for maximum protease production was predicted to glucose 6.75 g/l, yeast extract 12.42 g/l and beef extract 17.48 g/l. The suitability of the experimental model was proved using ANOVA analysis and as a result of quantitative analysis to prove this, the amount of increase was 230.47% compared to the LB medium used as a control. Through this study, the optimization of medium composition for enhancing protease production was established, and based on this, it is expected that it can be efficient use of protease as an industrial enzyme.
A new strain, GS603, having ${\beta}$-glucosidase activity was isolated from soil of a ginseng field, and its ability to convert major ginsenoside $Rb_1$ to minor ginsenoside or gypenoside was studied. Strain GS603 was identified as an Intrasporangium species by phylogenetic analysis and showed high ginsenoside-converting activity in LB and TSA broth but not in nutrient broth. The culture broth of the strain GS603 could convert ginsenoside $Rb_1$i into two metabolites, which were analyzed by TLC and HPLC and shown to be the minor ginsenoside $F_2$ and gypenoside XVII by NMR.
The biodegradation rates of diesel oil by a selected diesel-degrading bacterium, Pseudomonas stutzeri strain Y2G1, and microbial consortia composed of combinations of 5 selected diesel-degrading bacterial were determined in liquid and soil systems. The diesel degradation rate by strain Y2G1 linearly increased $(R^2=0.98)$ as the diesel concentration increased up to 12%, and a degradation rate as high as 5.64 g/l/day was obtained. The diesel degradation by strain Y2G1 was significantly affected by several environmental factors, and the optimal conditions for pH, temperature, and moisture content were at pH8, $25^{\circ}C$, and 10%, respectively. In the batch soil microcosm tests, inoculation, especially in the form of a consortium, and the addition of nutrients both significantly enhanced the diesel degradation by a factor of 1.5 and 4, respectively. Aeration of the soil columns effectively accelerated the diesel degradation, and the initial degradation rate was obviously stimulated with the addition of inorganic nutrients. Based on these results, it was concluded that the major rate-limiting factors in the tested diesel-contaminated soil were the presence of inorganic nutrients, oxygen, and diesel-degrading microorganisms. To resolve these limiting parameters, bioremediation strategies were specifically designed for the tested soil, and the successful mitigation of the limiting parameters resulted in an enhancement of the bioremediation efficiency by a factor of 11.
A microbial strain having high keratinase activity was isolated from the soil of poultry factories of Gyeonggi or Chungcheong-do. The isolated strain was identified as Bacillus sp. based on its morphological and biochemical characteristics. In this study, the optimal conditions for the production of keratinase by this strain were investigated. The optimal medium composition for the keratinase production was determined to be 3.5% chicken feather as carbon source, 1.0% tryptone as organic nitrogen source, 1.0% $KNO_3$ as inorganic nitrogen source and 0.05% KCl, 0.05% $KH_2PO_4$, 0.03% $K_2HPO_4$ as mineral source and 0.01% yeast extract as growth factor. The optimal temperature and pH was $40^{\circ}C$ and 8.5 with shaking culture (200 rpm), respectively. The maximum keratinase production reached to 123 units/ml after 42 hr of cultivation under the optimal condition. When the hair was used as the sole carbon source, the maximum enzyme activity was 88 units/ml after 120 hr and in this case, the hair added in the medium was not degraded completely but got thinner than the control by 20%.
This study was conducted to evaluate the potential of the transformed Lactobacillus reuteri Pg4 (T-Pg4) harboring the ${\beta}$-glucanase gene as a poultry probiotic. The probiotic properties of the T-Pg4 strain were evaluated in vitro by their adherence capability and acid and bile salt tolerance, and were evaluated in vivo by their survival and adhesion in the gastrointestinal tract (GIT) of specific-pathogen-free (SPF) chickens. The results showed that the T-Pg4 strain exhibited resistance to acidic conditions and contact with bile salt, and adhered efficiently to the crop and intestinal epithelial cells of chickens in vitro. The T-Pg4 strain also could survive and colonize the gastrointestinal epithelium of the experimental SPF chickens in vivo. In addition, radial enzyme diffusion was used to demonstrate that the Lactobacillus spp. randomly isolated from the GIT of the SPF chickens fed T-Pg4 possessed ${\beta}$-glucanase secretion capability. These findings have demonstrated that the transformed L. reuteri Pg4 survives transit through the stomach and intestine, and may secrete ${\beta}$-glucanase in the chicken GIT. Therefore, it is suggested that this organism could be used as a multifunctional poultry probiotic.
Kim, Jisu;Kwon, Young Sang;Bae, Dong-Won;Kwak, Youn-Sig
The Plant Pathology Journal
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v.36
no.2
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pp.185-191
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2020
Streptomyces griseus S4-7, a well-characterized keystone taxon among strawberry microbial communities, shows exceptional disease-preventing ability. The whole-genome sequence, functional genes, and bioactive secondary metabolites of the strain have been described in previous studies. However, proteomics studies of not only the S4-7 strain, but also the Streptomyces genus as a whole, remain limited to date. Therefore, in the present study, we created a proteomics reference map for S. griseus S4-7. Additionally, analysis of differentially expressed proteins was performed against a wblE2 mutant, which was deficient in spore chain development and did not express an antifungal activity-regulatory transcription factor. We believe that our data provide a foundation for further in-depth studies of functional keystone taxa of the phytobiome and elucidation of the mechanisms underlying plant-microbe interactions, especially those involving the Streptomyces genus.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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