본 연구는 methicillin 내성 Staphylococcus aureus (MRSA)에 특이적인 유전자인 mecA 유전자를 검출하기 위하여 전라북도의 두 병원에서 황색포도상구균 31주를 분리하였다. 이중 penicillin에 내성인 20균주를 디스크 확산법을 이용하여 methicillin, oxacillin, ampicillin, vancomycin, penicillin에 대한 다약제 내성 성상을 확인하였고, 중합효소 연쇄반응(PCR)을 이용하여 mecA 유전자를 확인하였다. 디스크 확산법을 실시한 결과 methicillin 내성균주는 20균주 중 10주 (50%)였다. Methicillin에 내성인 10균주를 PCR법으로 확인한 결과 7주에서 554 bp의 DNA증폭이 관찰되어 mecA 유전자가 존재함을 확인하였다.
Staphyloccus aureus is one of the most important pathogens in clinical settings. It is also one of the leading causes of nosocomial infections and the dissemination of multiple drug-resistant strains, mainly methicillin resistant Staphyloccus aureus, and the recent emergence of a vancomycin resistant MRSA is the concern to hospital worldwide. MRSA strains have acquired multiple resistance to a wide range of antibiotics, including aminoglycosides and macrolides. $\beta$-Lactam resistance of methicillin-resistnat Staphyococcus aureus is determined by the function of penicillin binding protein 2'(PBP2') encoded by the methicillin resistance gene mec A. MRSA strains carry methicillin resistance gene mecA, encoded by a mobile genetic element designated staphylococoal cassette chromosome mec(SCCmec). MRSA clones are defined by the type of SCCmec element and the genotype of the methicilline-susceptible Staphyococcus aureus chromosome in which the SCCmec element is integrated.
Sun Do, Kim;Geun-Bae, Kim;Gi Yong, Lee;Soo-Jin, Yang
Journal of Animal Science and Technology
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제64권3호
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pp.515-530
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2022
Sequence type (ST) 5 methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) with staphylococcal cassette chromosome mec (SCCmec) type II (ST5-MRSA-II) and ST72-MRSA-IV represent the most significant genotypes for healthcare- (HA) and community-associated (CA) MRSA in Korea, respectively. In addition to the human-type MRSA strains, the prevalence of livestock-associated (LA) MRSA clonal lineages, such as ST541 and ST398 LA-MRSA-V in pigs and ST692 LA-MRSA-V and ST188 LA-MRSA-IV in chickens, has recently been found. In this study, clonotype-specific resistance profiles to cathelicidins derived from humans (LL-37), pigs (PMAP-36), and chickens (CATH-2) were examined using six different ST groups of MRSA strains: ST5 HA-MRSA-II, ST72 CA-MRSA-IV, ST398 LA-MRSA-V, ST541 LA-MRSA-V, ST188 LA-MRSA-IV, and ST692 LA-MRSA-V. Phenotypic characteristics often involved in cathelicidin resistance, such as net surface positive charge, carotenoid production, and hydrogen peroxide susceptibility were also determined in the MRSA strains. Human- and animal-type MRSA strains exhibited clonotype-specific resistance profiles to LL-37, PMAP-36, or CATH-2, indicating the potential role of cathelicidin resistance in the adaptation and colonization of human and animal hosts. The ST5 HA-MRSA isolates showed enhanced resistance to all three cathelicidins and hydrogen peroxide than ST72 CA-MRSA isolates by implementing increased surface positive charge and carotenoid production. In contrast, LA-MRSA strains employed mechanisms independent of surface charge regulation and carotenoid production for cathelicidin resistance. These results suggest that human- and livestock-derived MRSA strains use different strategies to counteract the bactericidal action of cathelicidins during the colonization of their respective host species.
Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA)는 화농성 질환, 균혈증을 유발하고 병원내 감염의 주요 원인균으로 알려져 있다. 병원에서의 MRSA 분리율은 점차 증가하여 80% 이상으로 보고 되고 있으며 Methicillin 뿐만 아니라 다른 항균제에도 내성을 나타냄으로 치료를 위한 항균제 사용에 제한을 받고 있다. 이에 본 연구에서는 MRSA의 정확한 판정을 통해 항생제 남용을 막고자 대부분의 병원에서 사용하는 항균제 감수성 검사법과 경제적인 면으로 인해 병원내에서 많이 사용되고 있지 않지만 정확도가 높은 mecA 유전자 검출법을 서로 비교하였다. 그 결과 대조군인 Methicillin-susceptible Staphylococcus aureus와 실험군 MRSA 20 균주를 대상으로 항균제 감수성 검사법과 mecA 유전자 PCR 검출법을 실시한 결과 MRSA 20 균주는 Oxacillin과 Cefoxitin에 모두 내성을 나타냈으나 mecA 유전자 검출에서는 20 개 중 17 개에서만 유전자가 검출되어 염기서열분석 결과 mecA 유전자임을 확인하였다. 이런 결과로 보아 mecA(-) 3 균주는 mecA 유전자의 변이로 추측할 수 있기에 임상에서의 MRSA의 판정은 항균제 디스크법과 mecA 유전자 PCR 검출법을 동시에 사용함으로 정확한 MRSA 진단에 도움을 주고자 한다.
The accurate and rapid detection of methicillin-resistance of Staphylococcus aureus (SA) holds significant clinical importance. However, the methicillin-resistance detection strategies commonly require complicated cell lysis and gene extraction. Herein, we devised a novel colorimetric approach for the sensitive and accurate identification of methicillin-resistance of SA by combining allosteric probe-based target recognition with self-primer elongation-based target recycling. The PBP2a aptamer in the allosteric probe successfully identified the target MRSA, leading to the initiation of self-primer elongation based-cascade signal amplification. The peroxidase-like hemin/G-quadruplex undergo an isothermal autonomous process that effectively catalyzes the oxidation of ABTS2- and produces a distinct blue color, enabling the visual identification of MRSA at low concentrations. The method offers a shorter duration for bacteria cultivation compared to traditional susceptibility testing methods, as well as simplified manual procedures for gene analysis. The overall amplification time for this test is 60 min, and it has a detection limit of 3 CFU/ml. In addition, the approach has exceptional selectivity and reproducibility, demonstrating commendable performance when tested with real samples. Due to its advantages, this colorimetric assay exhibits considerable potential for integration into a sensor kit, thereby offering a viable and convenient alternative for the prompt and on-site detection of MRSA in patients with skin and soft tissue infections.
Fluoroquinolones have been extensively used in treatment or prevention of serious infections in humans and food-producing animals, especially in poultry, due to their broad-spectrum activity to both Gram-positive and -negative pathogens. However, the use of fluoroquinolones in poultry production selects for bacteria carrying genetic determinants for quinolone resistance. Here, we present the complete genome sequences of two methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) strains displaying quinolone resistance, which were isolated from healthy broilers in Korea.
The accurate and rapid detection of methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) holds significant clinical importance. This work presents a new method for detecting methicillin-resistant Staphylococcus aureus (S. aureus) in clinical samples. The method uses an aptamer-based colorimetric assay that combines a recognizing probe to identify the target and split DNAzyme to amplify the signal, resulting in a highly sensitive and direct analysis of methicillin-resistance. The identification of the PBP2a protein on the membrane of S. aureus in clinical samples leads to the allosterism of the recognizing probe, and thus provides a template for the proximity ligation of split DNAzyme. The proximity ligation of split DNAzyme forms an intact DNAzyme to identify the loop section in the L probe and generates a nicking site to release the loop sequence ("3" and "4" fragments). The "3" and "4" fragments forms an intact sequence to induce the catalytic hairpin assembly, exposing the G-rich section. The released the G-rich sequence of LR probe induces the formation of G-quadruplex-hemin DNAzyme as a colorimetric signal readout. The absorption intensity demonstrated a strong linear association with the logarithm of the S. aureus concentration across a wide range of 5 orders of magnitude dynamic range under the optimized experimental parameters. The limit of detection was calculated to be 23 CFU/ml and the method showed high selectivity for MRSA.
Lee, Haeng Ho;Lee, Gi Yong;Eom, Hong Sik;Yang, Soo-Jin
한국축산식품학회지
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제40권3호
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pp.401-414
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2020
The emergence and persistence of methicillin-susceptible Staphylococcus aureus (MSSA) and methicillin-resistant S. aureus (MRSA) in livestock animals have been reported as a potential risk factor for transmission to humans. In this study, we investigated the nationwide prevalence and characteristics of MRSA and MSSA in the Korean beef production system, including retail markets, slaughterhouses, and cattle farms. From a total of 1,285 samples, only 5 MRSA strains were isolated: from a farmer (1 ST72 MRSA), a carcass sample from a slaughterhouse (1 ST72 MRSA), and beef cattle (3 ST5 MRSA). In addition, 11 MSSA strains were isolated from beef cattle (n=3), humans (1 farmer, 1 slaughterhouse worker, and 4 retail market workers), and carcass samples (n=1) and slaughterhouse environment (n=1). Although the prevalence of MRSA and MSSA in beef cattle was much lower than that reported in pigs, 5/5 MRSA and 2/11 MSSA strains displayed multiple drug resistance (MDR) phenotypes. Unlike the swine-associated MRSA, no correlation was found between tetracycline/zinc resistance and MDR phenotype. However, MRSA strains had an identical set of staphylococcal enterotoxins and exhibited enhanced levels of resistance to antimicrobial peptides (PMAP-36 and LL-37) compared to the MSSA strains. In conclusion, continued and systemic surveillance of livestock, meat products, and humans in close contact with livestock/meat products is necessary to prevent the transmission of MRSA and MSSA to humans.
Antibiotic resistance patterns were determined for 14 strains of Staphylococcus aureus isolated at a hospital in Pusan during summer in 1989. Resistance to chloramphenicol or clindamycin was recorded in 100% of strains. Resistance to the other compounds tested was as follows: tetracycline 86%, gentamicin 79%, tobramycin 71%, kanamycin 71%, erythromycin 57%, ampicillin 57%, methicillin 50%, streptomycin 29%, cephalothin 29%, and trimethoprim 21%. All strains were sensitive to vancomycin and rifampicin. All strains showed multiple resistance to more than 3 antibiotics.
Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) is a bacterial pathogen capable of causing human diseases, such as soft tissue infection, bacteremia, endocarditis, toxic shock syndrome, pneumonia, and sepsis. Although the incidence rate of diseases caused by MRSA has declined in recent years, these diseases still pose a clinical threat due to their consistently high morbidity and mortality rates. However, the role of virulence factors in staphylococcal infections remains incompletely understood. Methicillin resistance, which confers resistance to all β-lactam antibiotics in cellular islets, is mediated by the mecA gene in the staphylococcal cassette chromosome mec (SCCmec). Differences in SCCmec types and differences in their sizes and structures serve epidemiological purposes and are used to differentiate between hospital-associated (HA)-MRSA and community-associated (CA)-MRSA. Some virulence factors of S. aureus are also providing a distinction between HA-MRSA and CA-MRSA. These factors vary depending on the presence of toxins, adhesion, immune evasion, and other virulence determinants. In this review, we summarized an overview of MRSA such as resistance mechanisms, SCCmec types, HA- and CA-MRSA, and virulence factors that enhance pathogenicity or MRSA epidemiology, transmission, and genetic diversity.
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