Type strain, Methylosinus trichosporium OB3b, was used to convert methane to methanol. To prevent further oxidation of methanol, NaCl and EDTA were used as inhibitors of methanol dehydrogenase. The reaction temperature was $25^{\circ}C$, and the concentrations of cell and sodium formate added to the reaction mixture were 0.6 mg dry cell wt/ml and 20 mM, respectively. During 12hr reaction, 8 mM methanol was accumulated in the reaction mixture. In this reaction $K_m$ and $V_{max}$ values were found to be 532.6 mM and 1.749 mmol/hr, respectively, and the conversion rate was approximately 37%. To increase the concentration of methanol in the medium, a repeated batch reaction was carried out. In this process, methane was injected every eight hours, and the produced methanol concentration was 18 mM.
Methylobacillus sp. strain SK1, which grows only on methanol, was found to grow in the absence of added copper. The doubling time (t$_{d}$ = 1.3 h) of the bacterium growing at the exponential growth phase at 30.deg.C in the absence of copper was the same as that of the cell growing in the presence of copper. The bacterium growing after the exponential phase in the absence of copper, however, grew faster than the cell growing in the presence of copper. Cells harvested after thee arly stationary phase in the presence of copper were found to exhibit no methanol dehydrogenase (MDH) activity, but the amount and subunit structure of the enzyme in the cells were almost the same as that in cells harboring active MDH. Pellets of the cells harvested after the early stationary phase in the presence of copper were pale green. Cell-free extracts prepared from cells harvested at the early stationary phase in the presence of copper were pink and exhibited MDH activity, but it turned dark-green rapidly from the surface under air. The green-colored portions of the extracts showed no MDH activity and contained c-type cytochromes that were oxidized completely. The inactive MDH activity and contained c-type cytochromes that were oxidized completely. The inactive MDH proteins in the green portions were found to have antigenic sites identical to those of the active one as the inactive MDHs in cells grown in the presence of copper. The bacterium was found to accumulate copper actively during the exponential growth phase. MDH prepared from cells grown in the presence or absence of copper was found to be more stable under nitrogen gas than under air. Methanol at 10 mM was found to enhance the stability of the MDH under air.r.
Journal of Korean Society of Environmental Engineers
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v.33
no.9
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pp.662-669
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2011
This study was conducted to biologically convert methane into methanol. Methane contained in biogas was bio-catalytically oxidized by methane monooxygenase (MMO) of methanotrophs, while methanol conversion was observed by inhibiting methanol dehydrogenase (MDH) using MDH activity inhibitors such as phosphate, NaCl, $NH_4Cl$, and EDTA. The degree of methane oxidation by methanotrophs was the most highly accomplished as 0.56 mmol for the condition at $35^{\circ}C$ and pH 7 under 0.4 (v/v%) of biogas ($CH_4$ 50%, $CO_2$ 50%) / Air ratio. By the inhibition of 40 mM of phosphate, 50 mM of NaCl, 40 mM of $NH_4Cl$ and $150{\mu}m$ of EDTA, methane oxidation rate could achieve more than 80% regardless of type of inhibitors. In the meantime, addition of 40 mM of phosphate, 100 mM of NaCl, 40 mM of $NH_4Cl$ and $50{\mu}m$ of EDTA each led to generating the highest amount of methanol, i.e, 0.71, 0.60, 0.66, and 0.66 mmol when 1.3, 0.67, 0.74, and 1.3 mmol of methane was each concurrently consumed. At that time, methanol conversion rate was 54.7, 89.9, 89.6, and 47.8% respectively, and maximum methanol production rate was $7.4{\mu}mol/mg{\cdot}h$. From this, it was decided that the methanol production could be maximized as 89.9% when MDH activity was specifically inhibited into the typical level of 35% for the inhibitor of concern.
Lee, Kyoung In;Moon, Young Sook;Pyo, Byoung Sik;Choi, Chul Hee
Natural Product Sciences
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v.18
no.4
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pp.211-214
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2012
Since 15-hydroxyprostaglandin dehydrogenase (15-PGDH) is the key metabolic enzyme of prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$), inhibition of 15-PGDH is supposed to facilitate various physiological functions by increasing $PGE_2$. Methanol extract of Artemisia argyi (AAME) inhibited 15-PGDH ($IC_{50}$: $13.13{\mu}g/mL$) with relatively low cytotoxicity ($IC_{50}$: $415.00{\mu}g/mL$) and elevated extracellular $PGE_2$ levels in HaCaT cells. Real-time PCR analysis showed that AAME decreased significantly mRNA expression of PG transporter (PGT) in HaCaT cells. These results indicate that AAME could be applicable to functional materials as a 15-PGDH inhibitor and PGT expression inhibitor for the upregulation of extracellular $PGE_2$ level.
In this study, we investigated the antioxidant and physiological activities of the Korean marine algae, Enteromorpha compressa. Solvent extracts of E. compressa were prepared using 70% ethanol, 80% methanol, and water, with extraction yields ranging from 9.55% to 25.67%. The total polyphenol and flavonoid contents ranged from 20.76-28.41 mg/g and 2.56-18.59 mg/g, respectively. Compared with the water extract, the ethanol and methanol extracts were found to have higher antioxidant activities. All three extracts were found to promote alcohol dehydrogenase and aldehyde dehydrogenase activities in a concentration-dependent manner, whereas the methanol and ethanol extracts were established to have the highest angiotensin-converting enzyme (ACE) inhibitory activity (IC50=1.40 ㎍/mL) and β-secretase inhibitory activity (IC50=0.17 ㎍/mL), respectively. These findings thus indicate that E. compressa could have beneficial application as a supplementary antioxidant and functional constituent in food and pharmaceutical materials.
The generation time of Methylobacterium extorquens AMI growing on methanol at pH 5.5 and 7.0 was found to be 23 hand 8.3 h. respectively. The bacterium grown at pH 7.0 were found to contain more amounts of spermidine and putrescine than the cell grown at pH 5.5. Cells grown at both conditions exhibited strong methanol dehydrogenase (MDH) activity at the mid-exponential growth phase. The amounts of MDH. however. were found to be almost equal through all gro~1h phases. Cells growing at the stationary phase contained large amounts of cytochrome c. The cytochrome c content was higher in cells growing at pH 7.0 than the cells growing at pH 5.5. Cells growing at pH 5.5 in the presence of putrescine or spermidine contained increased amounts of putrescine. The level of spermine, however. was decreased and that of spermidine was not changed. Spermine added into the medium was found to have no effect on the level of cellular polyamines. Putrescine or spermidine added into the medium stimulated MDH and hydroxypyruvate reductase activities. but did not affect the contents of MDH and cytochrome c. It was found that preincubation of cell-free extracts with polyamines does not stimulate MDH and hydroxypyruvate reductase activities.
Methanol dehydrogenase (MDH) and c-type cytochromes from marine methanol-oxidizing bacterium, Methylophaga sp. MP, were purified and characterized. The native MDH had a molecular mass of 148 kDa and its isoelectric point was 5.5. Two c-type cytochromes, $c_L\;and\;c_H$, were found, and their isoelectric points were 3.4 and 8.0, respectively. The purified MDH had higher thermal stability than that of the other soil methylotrophic bacteria. The electron flow rate from MDH to cytochrome $c_L$was higher than that from MDH to cytochrome $c_H$, indicating that the physiological primary electron acceptor for MDH is cytochrome $c_L$. The electron transfer from MDH to phenazine ethosulfate (PES, artificial electron acceptor) in the two dye (PES/DCPIP)-linked assay system was not inhibited by NaCl, whereas the electron flow from MDH to cytochrome $c_L$ in the cytochrome/DCPIP-linked assay system was suppressed significantly by NaCl. Metal chelating agents such as EDTA showed the same effects on the MDH activity.
Ghosh, Suparna;Dhanasingh, Immanuel;Ryu, Jaewon;Kim, Si Wouk;Lee, Sung Haeng
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.30
no.8
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pp.1261-1271
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2020
Cytochrome cL (CytcL) is an essential protein in the process of methanol oxidation in methylotrophs. It receives an electron from the pyrroloquinoline quinone (PQQ) cofactor of methanol dehydrogenase (MDH) to produce formaldehyde. The direct electron transfer mechanism between CytcL and MDH remains unknown due to the lack of structural information. To help gain a better understanding of the mechanism, we determined the first crystal structure of heme c containing CytcL from the aquatic methylotrophic bacterium Methylophaga aminisulfidivorans MPT at 2.13 Å resolution. The crystal structure of Ma-CytcL revealed its unique features compared to those of the terrestrial homologues. Apart from Fe in heme, three additional metal ion binding sites for Na+, Ca+, and Fe2+ were found, wherein the ions mostly formed coordination bonds with the amino acid residues on the loop (G93-Y111) that interacts with heme. Therefore, these ions seemed to enhance the stability of heme insertion by increasing the loop's steadiness. The basic N-terminal end, together with helix α4 and loop (G126 to Y136), contributed positive charge to the region. In contrast, the acidic C-terminal end provided a negatively charged surface, yielding several electrostatic contact points with partner proteins for electron transfer. These exceptional features of Ma-CytcL, along with the structural information of MDH, led us to hypothesize the need for an adapter protein bridging MDH to CytcL within appropriate proximity for electron transfer. With this knowledge in mind, the methanol oxidation complex reconstitution in vitro could be utilized to produce metabolic intermediates at the industry level.
Methanol dehydrogenase (MDH) is a key enzyme in the process of methanol oxidation in methylotrophic bacteria. However, information on MDH genes from genus Methylobacillus is limited. In this study, a 6.5-kb HindIII DNA fragment of Methylobacillus sp. SK-5 chromosomal DNA was isolated from the genomic library of the strain by using a degenerate oligonucleotide probe that was designed based on JV-terminal amino acid sequence of the MDH $\alpha$ subunit purified from the strain. Molecular analysis of the fragment revealed four tightly clustered genes (mxaFJGI) involved in the methanol oxidation. The first and fourth genes were very similar to mxaF (77% identity for nucleotides an 78% identity for amino acids) and mxaF (67% Identity for nucleotides and 68% Identity for amino acids) genes, respectively, from Methylovorus sp. SSI. Genes mxaF and mxaI encode $\alpha$ and $\beta$ subunits of MDH, respectively. The two subunits were identified from purified MDH from Methylobacillus sp. SK-5. A dendrogram constructed by comparison of amino acid sequences of MDH u subunits suggests that MxaF from Methylobacillus sp. SK-5 belongs to a subfamily cluster of MDH u subunits from $\beta$-subgroup Proteobacteria. The subfamily cluster is separated from the other subfamily that consists of $\beta$- and $\gamma$-subgroup Proteobacteria. This study provided information on mn genes from a methylotrophic bacterium in $\beta$-subgroup Proteobacteria, which would aid to better develop a gene probe to detect one-carbon metabolizing bacteria.
A restricted facultatively methanol-oxidizing bacterium, Methylovorus sp. strain SS1, was isolate dfrom soil samples from Kuala Lumpur, Malaysia, through methanol-enrichment culture technique. The isolate was nonmotile Gram-negative rod and did not have complex internal membrane system. The colonies were small, pale-yellow, and raised convex with entire margin. The cell did not produce any spores and capsular materials. The cell was obligately aerobic and exhibited catalase, but no oxidase, activity. Plasmid, carotenoid pigment, and poly-.betha.-hydroxybutyric acid were not found. The guanine plus cytosine content of the DNA was 55%. The isolate was found to grow only on methanol methylamine, or glucose. Growth factors were not required. Cells growing on methanol was found to produce extracellular polysaccharides containing glucose, lactose, and fructose. Growth was optimal (t$_{d}$= 1.7) with 0.5%(v/v) methanol at 40.deg.C and pH 6.5. No Growth was observed at over 60.deg.C. Cell-free extracts of the methanol grown cells exhibited the phenazine methosulfate-linked methanol dehydrogenase activity Methanol was found to be assimilate dthrough the ribulose monophosphate pathway.y.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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