Performance of column type bioreactor packed with immobilized cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) on chitosan and Amberite IRA 900 was evaluated for cyclodextrin(CD) production. For CGTase immobilized on chitosan, the maximum CD conversion yield of 42% was achieved at the range of 88-168 units of immobilizied CGTase per gram of chitosan, retention time of 0.3 hr, and from 5.0% (w/v) of partially cyclized soluble starch. On the other hand, for CGTase immobilized on Amberite IRA 900, the maximum conversion yield of 40% was obtained at the range of 3.6-11.0 units of immobilized CGTase per gram of carrier and retention time of 1.2 hr from 5.0% of substrate. Above CD conversion yields are almost identical level with that can be obtained with soluble CGTase of 47%. The productivities of bioreactor packed with immobilized CGTase were 17.0g of CD/lㆍhr for amberite IRA 900 and 15.5g of CD/lㆍhr for chitosan. The partially cyclized starch with soluble CGTase were more suitable as substrate to achieve better CD conversion yield, and 5% (w/v) of partially cyclized soluble starch containing 10% (w/w) of CD was found to be most suitable to obtain maximum CD conversion yield.
The objective of this study was to understand the conversion characteristics of glucose and xylose using the major monosaccharide standards for lignocellulosic biomass. The acid-catalyzed organosolv pretreatment conducted using ethanol was significantly different from the acid-catalyzed process conducted in an aqueous medium. 5-hydroxymethylfurfural (5-HMF), levulinic acid and furfural were produced from glucose conversion. The maximum yield of 5-HMF was 5.5%, at 200℃, when 0.5% sulfuric acid was used. The maximum yield of levulinic acid was 21.5%, at 220℃, when 1.0% sulfuric acid was used. Furfural was produced from xylose conversion and under 0.5% sulfuric acid, furfural reached the maximum yield 48.5% at 210℃. Ethyl levulinate and methyl levulinate were also formed from the glucose standard following the esterification reaction conducted under conditions of the combined conversion method, which proceeded under both ethanol-rich and water-rich conditions.
The metabolic pathway synthesis algorithm was applied to estimate the maximum ethanol yield from xylose in a model recombinant Saccharomyces cerevisiae strain containing the genes involved in xylose metabolism. The stoichiometrically independent pathways were identified by constructing a biochemical reaction network for conversion of xylose to ethanol in the recombinant S. cerevisiae. Two independent pathways were obtained in xylose-assimilating recombinant S. cerevisiae as opposed to six independent pathways for conversion of glucose to ethanol. The maximum ethanol yield from xylose was estimated to be 0.46 g/g, which was lower than the known value of 0.51 g/g for glucose-fermenting and wild-type xylose-fermenting yeasts.
The two-stage enzyme reactor, packed with cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) immobilized on Amberite IRA 900, coupled with ultrafiltration membrane was investigated for continuous production of cyclodextrin (CD). 5% (w/v) of soluble starch was partially cyclized, in the 0.1 l first-stage immobilized enzyme reactor, up to CD conversion yield of 10% (w/w) at retention time of 0.56hr and 1.5 units of immobilized CGTase/1g of carrier. In the second stage main immobilized enzyme reactor capacity of 1.5 l, the maximum CD conversion yield of 39% (w/v) was achieved at retention time of 2.8hr and 0.47 unit of CGTase/1 g of carrier. Unreacted residual dextrin was fractionated with ultrafiltration membrane, and then, recycled into the second-stage main bioreactor to increase the CD conversion yield. The most suitable membrane size and the volume concentration ratio (concentrate: filterate) for recycling of unreacted residual dextrin were found to be 5K dalton and 4:6, respectively. CD conversion yield was increased about 3~4% upon co-immobilization of pulluanase along with CGTase. Spent Amberite IRA 900 can be reutilized consecutively more than 3 times for immobilization of CGTase after regeneration.
The biocatalytic efficiency of recombinant Corynebacterium glutamicum ATCC 13032 expressing the secondary alcohol dehydrogenase of Micrococcus luteus NCTC2665 was studied. Recombinant C. glutamicum converts ricinoleic acid to a product, identified by gas chromatography/mass spectrometry as 12-ketooleic acid (12-oxo-cis-9-octadecenoic acid). The effects of pH, reaction temperature, and non-ionic detergent on recombinant C. glutamiucm whole cell bioconversion were examined. The determined optimal conditions for production of 12-ketooleic acid are pH 8.0, 35℃, and 0.05 g/l Tween80. Under these conditions, recombinant C. glutamicum produces 3.3 mM 12-ketooleic acid, with a 72% (mol/mol) maximum conversion yield, and 1.1 g/l/h volumetric productivity in 2 h; and 3.9 mM 12-ketooleic acid, with a 74% (mol/mol) maximum conversion yield, and 0.69 g/l/h maximum volumetric productivity in 4 h of fermentation. This study constitutes the first report of significant production of 12-ketooleic acid using a recombinant Corynebacterium glutamicum-based biocatalyst.
Defect size distribution is a probability density function for the defects that occur on wafers or glasses during semiconductor/LCD fabrication. It is one of the most important information to estimate manufacturing yield using well-known statistical estimation methods. The defects are detected by automatic optical inspection (AOI) facilities. However, the data that is provided from AOI is not accurate due to resolution of AOI and its defect detection mechanism. It causes distortion of defect size distribution and results in wrong estimation of the manufacturing yield. In this paper, I suggest a size conversion method and a maximum likelihood estimator to overcome the vague defect size information of AOI. The methods are verified by the Monte Carlo simulation that is constructed as similar as real situation.
Biodiesel conversion from soybean oil reached a maximum of 70% at 18 h using immobilized 1,3-specific Rhizopus oryzae lipase alone. Biodiesel conversion failed to reach 20% after 30 h when immobilized nonspecific Candida rugosa lipase alone was used. To increase the biodiesel production yield, a mixture of immobilized 1,3-specific R. oryzae lipase and nonspecific C. rugosa lipase was used. Using this mixture a conversion of greater than 99% at 21 h was attained. When the stability of the immobilized lipases mixture was tested, biodiesel conversion was maintained at over 80% of its original conversion after 10 cycles.
무수프탈산 생산 공정의 조업 조건에서 실측한 이중 고정층 촉매 반응기의 온도분포, 수율 및 냉매의 입출구 온도에 대한 최적 적합으로부터 최적 매개변수 값을 추정함으로써 예측 모델을 구성하였다. 최대 전화율과 수율을 얻을 수 있는 고정층 촉매 반응기를 설계하기 위하여 반응기 길이 및 반경을 변화시켜 그 영향을 고찰하였다. 활성이 균일한 단일 고정층 촉매 반응기의 경우, 반응기 반경 r =0.01241 m에서 전 촉매층 길이 z =2.8 m, 그리고 이중층 반응기의 경우, 반응기 반경 r = 0.01254 m에서 전 촉매층 길이 2,80 m(상부촉매층: 1.88 m, 하부촉매층: 0.92 m)에서 우수한 성능을 보였다. 반응기 반경 변화의 경우, 반경 증가는 냉매로의 열전달 시간의 지연에 의해 열점 온도가 상승하였으며, 반경의 감소는 그 반대의 결과를 보였다.
In the present study the glow discharge characteristics of $CO_2$ in a parallel plate electrode system were investigated, and the decomposition properties of $CO_2$ concerned with the discharge characteristics were discussed. The results show that $CO_2$ concentration decreases with increase in discharge power and decrease in gas pressure. The maximum conversion of $CO_2$ by glow discharge was 52% under the conditions of gas pressure, 10m Torr and 290W of discharge power.
본 연구에서는 A.cycloclast ATCC 21921 균주를 사용하여 $\gamma$-butyrobetaine으로부터 L-carnitine을 생산하는 최적 조건에 대한 연구를 수행하였다. 배양액 내에 $\gamma$-butyrobetaine 만을 포함하였을때는 최대 L-carnitine 생산량이 29g/L이었고 전환수율도 30.9 mol%로 매우 낮았다. L-carmtine 생산에 미치는 탄소원의 영향을 관찰한 결과 glycerol을 첨가할 경우 L-carnitine 생산량이 4.6g/L 그리고 전환수율이 88.2 mol%로 $\gamma$-butyrobetaineaks을 포함하였을 때보다 월등히 향상되었다. Betaine, chohne와 같은 quaternary ammonium compounds 들이 L-carnitine 생산에 미치는 영향을 조사해본 결과, 이들에 의하여 L-carntine 생산 속도가 빨라지고 전환수율도 증가함을 알 수 있었다. 한편, 기질인 $\gamma$-butyrobetaine 농도 3% 이상에서 세포 생장은 저해되고 L-carnitine 생산은 기질 농도 2-3%에서 가장 우수함을 알 수 있었다. 본 연구에서 구한 최적 생산 조건, 다시 말해서 glycerol과 choline을 배양액에 포함하고 기질의 농도를 2%^로 하여 플라스크에서 회분식 배양을 하였을 때, 배양 4일 만에 최대 7.2g/L의 L-carrutine을 생산할 수 있었고 이때 $\gamma$-butyrobetaine으로부터 L-carnitine에로의 전환수율은 98.7mol%이었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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