Dawoon Chung;Yong Min Kwon;Ji Yeon Lim;Seung Sub Bae;Grace Choi;Dae-Sung Lee
Mycobiology
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제50권4호
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pp.244-253
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2022
Trichoderma fungi have been intensively studied for mycoparasitism, and the latter is closely related to their cell-wall degrading enzymes including chitinase. Here, we studied marine-derived Trichoderma spp., isolated from distinct sources and locations, for chitinolytic and antifungal activity. Based on morphological and phylogenetic analyses, two strains designated GJ-Sp1 and TOP-Co8 (isolated from a marine sponge and a marine alga, respectively) were identified as Trichoderma bissettii. This species has recently been identified as a closely related species to Trichoderma longibrachiatum. The extracellular crude enzymes of GJ-Sp1 and TOP-Co8 showed activities of chitobiosidase and b-N-acetylglucosaminidase (exochitinase) and chitotriosidase (endochitinase). The optimum chitinolytic activity of the crude enzymes was observed at 50 ℃, pH 5.0, 0-0.5% NaCl concentrations, and the activities were stable at temperatures ranging from 10 to 40 ℃ for 2 h. Moreover, the crude enzymes showed inhibitory activity against hyphal growth of two filamentous fungi Aspergillus flavus and Aspergillus niger. To the best of our knowledge, this is the first report of the chitinolytic and antifungal activity of T. bissettii.
Marine macroalgae are important in coastal ecosystems and interact with marine microorganisms. In this study, we isolated fungi from seven types of marine macroalgae including Cladophora sp., Gloiopeltis furcate, Gracilariopsis chorda, Hydroclathrus clathratus, Prionitis crispata, Sargassum micracanthum, and Ulva lactuca collected in Korea. Morphological and phylogenetic analyses identified the isolates as four Aspergillus spp. (A. fumigatus, A. sydowii, A. tamarii, and A. terreus), three Penicillium spp. (P. crustosum, P. jejuense, and P. rubens), and Cladosporium tenuissimum. Among them, A. fumigatus TOP-U2, A. tamarii SH-Sw5, and A. terreus GJ-Gf2 strains showed the activities of all enzymes examined (amylase, chitinase, lipase, and protease). Based on the enzymatic index (EI) values in solid media, A. terreus GJ-Gf2 and C. tenuissimum UL-Pr1 exhibited the highest amylase and lipase activities, respectively. Chitinolytic activity was only observed in A. terreus GJ-Gf2, A. tamarii SH-Sw5, and A. fumigatus TOP-U2. Penicillium crustosum UL-Cl2 and C. tenuissimum UL-Pr1 showed the highest protease activities. To the best of our knowledge, this is the first report of lipolytic and proteolytic activities in a marine-derived C. tenuissimum strain. Overall, the fungal strains isolated from the marine macroalgae in this study actively produced industrially important enzymes.
L-asparaginase (ASNase) is a therapeutic enzyme used to treat acute lymphoblastic leukemia. Currently, the most widely used ASNases are originated from bacteria. However, owing to the adverse effects of bacterial ASNases, new resources for ASNase production should be explored. Fungal enzymes are considered efficient and compatible resources of natural products for diverse applications. In particular, fungal species belonging to the genus Trichoderma are well-known producers of several commercial enzymes including cellulase, chitinase, and xylanase. However, enzyme production by marine-derived Trichoderma spp. remains to be elucidated. While screening for extracellular ASNase-producing fungi from marine environments, we found four strains showing extracellular ASNase activity. Based on the morphological and phylogenetic analyses using sequences of translation elongation factor 1-alpha (tef1α), the Trichoderma isolates were identified as T. afroharzianum, T. asperellem, T. citrinoviride, and Trichoderma sp. 1. All four strains showed different ASNase activities depending on the carbon sources. T. asperellem MABIK FU00000795 showed the highest ASNase value with lactose as a carbon source. Based on our findings, we propose that marine-derived Trichoderma spp. are potential candidates for novel ASNase production.
Jun Won Lee;Wonjun Lee;Rekhani Hansika Perera;Young Woon Lim
Mycobiology
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제51권6호
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pp.436-444
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2023
Aspergillus species play a crucial role in terrestrial environments as degraders and are well known for producing various secondary metabolites. Recently, Aspergillus species have been discovered in marine environments, exhibiting adaptability to high salinity and producing diverse secondary metabolites with valuable properties. However, limited research has focused on their marine diversity, leading to inaccurate species identification. The current study addresses this gap by investigating diverse marine habitats in the Republic of Korea, including sediment, seawater, seaweed, and marine animals. From three coasts of the Korean Peninsula, 472 Aspergillus strains were isolated from the various marine habitats. A total of 41 species were accurately identified using multigenetic markers: internal transcribed spacer, calmodulin, and b-tubulin. The findings underscore the importance of accurate identification and provide a basis for elucidating the functional role of marine-derived Aspergillus species in marine ecosystems.
In order to screen new radical scavenging principle which is expected to be antiaging drug lead, we have isolated 160 strains of the marine-derived fungi and investigated 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) radical scavenging activity for their acetone extracts. The significant activities (>50% Inhibition) were observed in 8 strains of fungi (MFA006, MFA0l4, MFA040, MFA133, MFA139, MFA143, MFA148, MFA153), and among them, MFA153 (Aspergillus parasiticus) showed the most significant radical scavenging activity. The active components were purified by assay-guided isolation to yield two known benzyl alcohols, l53B3 (1) and l53B4 (2), and their structures were determined by physicochemical evidence. Two compounds (1,2) showed the significant radical scavenging activity with $IC_{50}$ values of 0.6 and $1.4{\mu}M$ against DPPH, respectively.
Biofilm formation of Staphylococcus aureus is one of its mechanisms of drug resistance. Anti-biofilm screening of 106 compounds from marine-derived fungi displayed that 12 compounds inhibited S. aureus biofilm formation by >50% at the concentration of $100{\mu}g/ml$, and only secalonic acid D (SAD) and B inhibited by >90% at $6.25{\mu}g/ml$ without inhibiting cell growth after 24-h incubation. Meanwhile, it was found that the double bond between C-1 and C-10 of citrinin derivatives and the C-C connection position of two chromone monomers may be important for their anti-biofilm activities. Moreover, SAD slightly facilitated biofilm eradication and influenced its architecture. Furthermore, SAD slowed the cell growth rate in the preceding 18-h incubation and differentially regulated transcriptional expression of several genes, such as agr, isaA, icaA, and icaD, associated with biofilm formation in planktonic and biofilm cells, which may be the reason for the anti-biofilm activity of SAD. Finally, SAD acted synergistically against S. aureus growth and biofilm formation with other antibiotics. These findings indicated that various natural products from marine-derived fungi, such as SAD, could be used as a potential biofilm inhibitor against S. aureus.
Filamentous marine fungi have proven to be a plentiful source of new natural products. Chaetomium, a widely distributed fungal genus in the marine environment, has gained much interest within the scientific community. In the last 20 years, many potential secondary metabolites have been detected from marine-derived Chaetomium. In this review, we attempt to provide a comprehensive summary of the natural products produced by marine-derived Chaetomium species. A total of 122 secondary metabolites that were described from 2001 to 2021 are covered. The structural diversity of the compounds, along with details of the sources and relevant biological properties are also provided, while the relationships between structures and their bioactivities are discussed. It is our expectation that this review will be of benefit to drug development and innovation.
A fungal strain, R9, was isolated from the South Atlantic sediment sample and identified as Aspergillus fumigatus. An antifungal protein, AfAFPR9, was purified from the culture supernatant of Aspergillus fumigatus R9. AfAFPR9 was identified to be restrictocin, which is a member of the ribosome-inactivating proteins (RIPs), by MALDI-TOF-TOF-MS. AfAFPR9 displayed antifungal activity against plant pathogenic Fusarium oxysporum, Alternaria longipes, Colletotrichum gloeosporioides, Paecilomyces variotii, and Trichoderma viride at minimum inhibitory concentrations of 0.6, 0.6, 1.2, 1.2, and 2.4 μg/disc, respectively. Moreover, AfAFPR9 exhibited a certain extent of thermostability, and metal ion and denaturant tolerance. The iodoacetamide assay showed that the disulfide bridge in AfAFPR9 was indispensable for its antifungal action. The cDNA encoding for AfAFPR9 was cloned from A. fumigatus R9 by RT-PCR and heterologously expressed in E. coli. The recombinant AfAFPR9 protein exhibited obvious antifungal activity against C. gloeosporioides, T. viride, and A. longipes. These results reveal the antifungal properties of a RIP member (AfAFPR9) from marine-derived Aspergillus fumigatus and indicated its potential application in controlling plant pathogenic fungi.
A chemical investigation of the marine-derived fungi Aspergillus versicolor led to the isolation of a new aromatic polyketide (1), The structure was elucidated by spectroscopic analysis, and its radical-scavenging activity, reducing power, and inhibitory activity to lipid oxidation were investigated. Those activities of compound 1 were compared with standard antioxidants such as butylated hydroxyanisole (BHA), butylated hydroxytoluene (BHT), tertiarybutylhydroquinone (TBHQ), and ascorbic acid ($V_C$). Compound 1 showed antioxidant activity comparable to that of BHA, and siginificantly higher than that of BHT.
Bioactivity guided fractionation of the cultured filtrates of Aspergillus versicolor, which was derived from a marine sponge Petrosia sp., yielded three polyketides: decumbenones A (1),B (2), and versiol (3). These compounds were identified on the basis of 1D and 2D NMR spectroscopic and MS analysis. The absolute configuration was defined by the modified Mosher's method. The isolated compounds were tested for cytotoxicity against a panel of five human solid tumor cell lines and antibacterial activity against twenty clinically isolated methicillin-resistant strains. This is the first report on the isolation of these compounds from a marine source.
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