The chicken pineal gland has been used for studies on the circadian clock, because it retains an intracellular phototransduction pathway regulating the phase of the intrinsic clock oscillator. Previously, we identified chicken clock genes expressed in the gland (cPer2, cPer3, cBmal1, cBmal2, cCry1, cCry2, and cClock), and showed that a cBMALl/2-cCLOCK heteromer acts as a regulator transactivating cPer2 gene through the CACGTG E-box element found in its promoter. Notably, mRNA expression of cPer2 gene is up-regulated by light as well as is driven by the circadian clock, implying that light-dependent clock resetting may involve the up-regulation of cPer2 gene. To explore the mechanism of light-dependent gene expression unidentified in animals, we first focused on pinopsin gene whose mRNA level is also up-regulated by light. A pinopsin promoter was isolated and analyzed by transcriptional assays using cultured chicken pineal cells, resulting in identification of an 18-bp light-responsive element that includes a CACGTG E-box sequence. We also investigated a role of mitogen-activated protein kinase (MAPK) in the clock resetting, especially in the E-box-dependent transcriptional regulation, because MAPK is phospholylated (activated) in a circadian manner and is rapidly dephosphorylated by light in the gland. Both pulldown analysis and kinase assay revealed that MAPK directly associates with BMAL1 to phosphorylate it at several Ser/Thr residues. Transcriptional analyses implied that the MAPK-mediated phosphorylation may negatively regulate the BMAL-CLOCK-dependent transactivation through the E-box. These results suggest that the CACGTG E-box serves not only as a clock-controlled element but also as a light-responsive element.
Most living organisms exhibit the circadian rhythm in their physiology and behavior. Recent identification of several clock genes in mammals has led to the molecular understanding of how these components generate and maintain the circadian rhythm. Many reports have implicated the photic induction of either mPer1 or mPer2 in the hypothalamic region called the suprachiasmatic nucleus (SCN) to phase shift the brain clock. It is now established that peripheral tissues other than the brain also express these clock genes and that the clock machinery in these tissues work in a similar way to the SCN clock. To determine the role of the two canonical clock genes, mPer1 and mPer2, in the peripheral clock shift, stable HEK293EcR cell lines that can be induced and stably express these proteins were prepared. By regulating the expression of these proteins, it could be shown that induction of the clock genes, either mPer1 or mPer2 alone is not sufficient to cause clock phase shifting in these cells. Our real-time PCR analysis on these cells indicates that the induction of mPER proteins dampens the expression of the clock-specific transcription factor mBmal1. Altogether, our present data suggest that mPer1 and mPer2 may not function in clock shift or take part in differential roles on the peripheral circadian clock.
The suprachiasmatic nucleus (SCN) of the anterior hypothalamus is the circadian pacemaker entrained to the 24-hr day by environmental time cues. Major circadian genes such as mPeriod ($mPer1{\sim}3$) and mCryptochrome ($mCry1{\sim}2$) are actively transcribed by the action of CLOCK/BMAL heterodimers, and in turn, these are being suppressed by the mPER/mCRY complex. In the study, the locomotor activity rhythms of mPer1 Knockout (KO) mice are measured, and the expression profiles of Heat Shock Protein 105kDa (HSP 105) genes in the SCN were measured by in situ hybridization. In agreement with previous reports, the locomotor activity rhythm of mPer1 KO mice was much shorter than that of wildtype. In addition, the total bout of activity of mPer1 KO was less in comparison to control mice. The expression of HSP 105 in the SCN of mPer1 KO mice was ranged from CT6 to CT22, with a peak level at CT14, implying that the gene are under the control of circadian clock. However, the expression of HSP 105 in the SCN of wildtype could not be detected in our study. Further analysis will reveal the direct or indirect regulation by mPer1 on the expression in the SCN and the role of the gene in the circadian clock.
Bone morphogenetic proteins (BMPs)는 다양한 세포기능을 조절하는 중요한 사이토카인 중 하나이다. 최근 BMP와 일주기 유전자들이 연관되어 있다는 연구결과들이 보고되고 있지만 조골세포에서 일주기 유전자인 Per1의 역할은 아직 명확하지 않다. 본 연구에서는 조골세포 분화에서 Per1의 역할을 조사하였다. MC3T3-E1 세포에서 BMP2 처리에 의해 Per1 mRNA 발현과 luciferase 활성이 증가하는 것을 확인하였다. 또한 Per1 과발현 실험을 통해서 Per1 유전자가 Runx2, ALP, OC의 발현을 증가시켰으며 ascorbic acid와 ${\beta}$-glycerophosphate에 의한 ALP 염색과 석회화가 Per1 과발현에 의해 더욱 증가하는 것을 확인하였다. 이상의 결과는 일주기 리듬을 조절하는 Per1 유전자가 조골세포의 분화를 촉진하는 인자로 작용함을 시사한다.
The light sensing system in the eye directly affects the circadian oscillator in the mammalian suprachiasmatic nucleus (SCN). To investigate this relationship in the rat, we examined the circadian expression of clock genes in the SCN and eye tissue during a 24 h day/night cycle. In the SCN, rPer1 and rPer2 mRNAs were expressed in a clear circadian rhythm like rCry1 and rCry2 mRNAs, whereas the level of BMAL1 and CLOCK mRNAs decreased during the day and increased during the night with a relatively low amplitude. It seems that the clock genes of the SCN may function in response to a master clock oscillation in the rat. In the eye, the rCry1 and rCry2 were expressed in a circadian rhythm with an increase during subjective day and a decrease during subjective night. However, the expression of Opn4 mRNA did not exhibit a clear circadian pattern, although its expression was higher in daytime than at night. This suggests that cryptochromes located in the eye, rather than melanopsin, are the major photoreceptive system for synchronizing the circadian rhythm of the SCN in the rat.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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