Ahn, Eun Jeong;Lee, Hwa Shim;Kim, Byung Joo;Lee, Gae Ho
Analytical Science and Technology
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v.28
no.6
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pp.460-466
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2015
An isotope dilution liquid chromatography tandem mass spectrometry was developed as a primary method for the quantitative analysis of cholesterol in infant formula. Cholesterol-d4 was used as an internal standard and spiked into the infant formula sample. In order to release cholesterol out of cholesteryl ester, which is cholesterol bound to fatty acids in infant formula, saponification was carried out. Saponification conditions were optimized with heating temperature, reaction time and the concentration of KOH. The optimum conditions were as follows; heating temperature was 70 ℃, reaction time was 180 min and the concentration of KOH was 0.8 mL of 8 M KOH for about 0.1 g infant formula sample. Extraction of cholesterol out of sample solution was carried out with hexane uisng liquid-liquid extraction. Chromatographic analysis was carried out using Phenomenex Kinetex C18 column. Mobile phase was 0.1% acetic acid in methanol/water (v/v, 99/1) and flow rate was 0.3 mL/min. Cholesterol and cholesterol-d4 were monitored at mass transfer m/z 369/259 and 373/263 respectively. Reproducibility of the method was evaluated to be 0.23% of the measurement result. The expanded uncertainty of the measurement result of cholesterol in infant formula was approximately 1.9% at a 95% confidence level. NIST standard reference material having certified values of cholesterol in infant formula, was analyzed in order to verify this method. The ID-LC/MS/MS results were well agreed with the certified values of NIST SRM within the uncertainty.
A rapid and simple analytical method for L-carnitine was developed for infant and toddler formulas by liquid chromatography tandem mass spectrometry (LC-MS/MS). A 0.3 g of infant formula and toddler formula sample was mixed in a 50 mL conical tube with 9 mL water and 1 mL 0.1 M hydrochloric acid (HCl) to chemical extraction. Then, chloroform was used for removing a lipid fraction. After centrifuged, L-carnitine was separated and quantified using LC-MS/MS with electrospray ionization (ESI) mode. The precursor ion for L-carnitine was m/z 162, and product ions were m/z 103 (quantitative) and m/z 85 (qualitative), respectively. The results for spiked recovery test were in the range of 93.18-95.64% and the result for certified reference material (SRM 1849a) was within the range of the certificated values. This method could be implemented in many laboratories that require time and labor saving.
An isotope dilution-liquid chromatography/tandem mass spectrometric method was developed as a candidate reference method for the accurate determination of folic acid in infant milk formula. Sample was spiked with 13C5-folic acid and then extracted with phosphate buffer (pH 6) solution. The extract was further cleaned up by deproteinization followed by a C18 solid-phase extraction cartridge. The extract was analyzed by using LC/ ESI/MS/MS with selectively monitoring the collisionally induced dissociation channels of m/z 442 → m/z 295 and m/z 447 → m/z 295, which are the neutral glutamyl loss from the [M+H]+ ions of folic acid and 13C5-folic acid, respectively. LC/MS/MS chromatograms showed substantially reduced background from chemical noises compared to LC/MS chromatograms. Repeatability and reproducibility studies showed that the LC/MS/ MS method is a reliable and reproducible method which can provide less than 1.5 relative percentage of method precision.
Patel, A.;Ditiatkovski, M.;Kennedy, L.;Oglobline, A.;Choi, N.;Richardson, G.
Mass Spectrometry Letters
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v.7
no.1
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pp.12-15
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2016
Results of free and bound myo-inositol in infant formula (IF) are presented. Inositol was analyzed by HILIC ultra-performance liquid chromatography coupled with mass spectrometer. The levels of free myo-inositol in 27 Australian and 4 EU originated IF samples were 300-600 mg/kg of powder or 1.6-3.1 mg/100 kJ. The amount of bound inositol in lipid fraction of IF was, on average, 10% of free myo-inositol.
Herein, a novel analytical method using a high-performance liquid chromatography-fluorescence detector (HPLC/FLD) is developed for rapidly measuring an L-carnitine ester derivative in infant powdered milk. In this study, solid-phase extraction cartridges filled with derivatized methanol and distilled water were used to effectively separate L-carnitine. Protein precipitation pretreatment was carried out to remove the protein and recover the analyte extract with a high recovery (97.16%-106.56%), following which carnitine in the formula was derivatized to its ester form. Precolumn derivation with 1-aminoanthracene (1AA) was carried out in a phosphate buffer using 1-(3-dimethylaminopropyl)-3-ethylcarbodiimide hydrochloride (EDC) as the catalyst. Method validation was performed following the AOAC guidelines. The calibration curves were linear in the L-carnitine concentration range of 0.1-2.5 mg/L. The lower limit of quantitation and limit of detection of L-carnitine were 0.076 and 0.024 mg/L, respectively. The intra- and interday precision and recovery results were within the allowable limits. The results showed that our method helped reduce the sample preparation time. It also afforded higher resolution and better reproducibility than those obtained by traditional methods. Our method is suitable for detecting the quantity of L-carnitine in infant powdered milk containing a large amount of protein or starch.
Seo, Chan Won;Hong, Shik;Shin, Yong Kook;Kang, Shin Ho
Food Science of Animal Resources
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v.38
no.5
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pp.995-1007
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2018
Changes in the physicochemical properties of ready-to-feed liquid infant formula (LIF) stored at different temperatures (10, 20, 30, and $40^{\circ}C$) for 6 mon, focusing on 5-hydroxymethylfurfural (HMF) content, color, pH, fat globule size distribution, and rheological properties were determined. The HMF content increased with storage time, and LIF stored at $40^{\circ}C$ had a higher HMF content than that of LIF stored at $10^{\circ}C$. The lightness ($L^*$) decreased while redness ($a^*$) and yellowness ($b^*$) increased with increasing HMF content. The fat globule size and pH of LIF stored at $10^{\circ}C$ did not change. However, in the case of LIF stored at $30^{\circ}C$ and $40^{\circ}C$, the fat globule size increased and the pH decreased during storage for 6 mon. LIF stored at $40^{\circ}C$ had a higher apparent viscosity (${\eta}_{a,10}$) than that of LIF stored at $10^{\circ}C$, and the shear-thinning behavior of LIF stored at higher temperature was stronger than that of LIF stored at low temperature. The physicochemical changes of LIF during storage were accelerated by Maillard reaction (MR) at higher storage temperatures. Therefore, even if LIF is aseptically manufactured, we recommend that sterilized LIF should be stored at low temperature in order to minimize quality changes during storage.
The development of a sample preparation method and optimization of the analytical instrumentation conditions were performed for the determination of the vitamin B12 content in emulsified baby foods sold on the Korea market. After removal of the milk protein and fats by chloroform extraction and centrifugation, the vitamin B12 was water extracted from the sample. Following filtration of the solution through a nylon filter, the water-soluble extract was purified by solid-phase extraction using a Liquid Chromatography Tandem Mass Spectrometry (LC-MS/MS). The solution eluted from the cartridge was dried under a stream of nitrogen gas and reconstituted with 1 mL of water. The sample solution was injected into an LC-MS/MS system after optimizing the mobile phase for vitamin B12 detection. The calibration curve showed good linearity with the coefficient of correlation (r2) value of 0.9999. The limit of detection was 0.03 µg/L and the limit of quantitation was 0.1 µg/L. The method of detection limit was 0.02 µg/kg. The vitamin B12 recovery from a spiking test was 99.62% for infant formula and 99.46% for cereal-based baby food. The sample preparation method developed in this study would be appropriate for the rapid determination of the vitamin B12 content in infant formula and baby foods with emulsified milk characteristics. The ability to obtain stable results more quickly and efficiently would also allow governments to exercise a more extensive quality control inspection and monitoring of products expected to contain vitamin B12. This method could be implemented in laboratories that require time and labor saving.
The objective of this study was to develop a method to simultaneously quantify vitamins A and E in infant formula. To determine the vitamin A and E content, vitamin A and four different vitamin E isomers (${\alpha}$-, ${\beta}$-, ${\gamma}$-, and ${\delta}$-tocopherol) were separated by high performance liquid chromatography with a photodiode array detector using a Develosil RPAQUEOUS RP-$C_{30}$ column ($4.6{\times}250$ mm, 5 ${\mu}M$). The vitamin A and E contents in the certified reference material determined using this method were within the certified range of standard values. The limits of detection (LODs) and limits of quantitation (LOQs) for vitamin A were 0.02 and 0.06 ${\mu}g/L$, respectively. LODs and LOQs for the vitamin E isomers ranged from 0.20 to 0.55 and from 0.67 to 1.81 ${\mu}g/L$, respectively. Linear analyses indicated that the square of the correlation coefficient for the vitamin A and E isomers was 0.9997-0.9999. The recovery of vitamins ranged from 96.69 to 97.79%. The results demonstrate that this novel method could be used to reliably analyze vitamin A and E content in infant formula.
This study was carried out to develop an analytical method for the determination of vitamin D in infant formula. Vitamin D was determined by column-switching high-performance liquid chromatography (HPLC) equipped with a reversed phase column and UV detector after saponification and extraction of the formula with an organic solvent. A preseparation column ($C_8$), focusing column ($C_{18}$), analytical column ($C_{18}$) and UV-Vis detector (254 nm) were used. The limits of detection (LOD) and the limits of quantification (LOQ) for vitamin D were estimated to be $1.51{\mu}g/kg$ and $4.95{\mu}g/kg$, respectively. The linearity, recovery, precision and accuracy of the analytical method for vitamin D were evaluated through the application of a SRM (Standard Reference Material) 1846 (National Institute of Standard & Technology, USA). The linearity of this method was calculated with a value of the coefficient of determination ($r^2$) ${\geq}0.9999$. The recovery of vitamin D was $85.20{\pm}3.00%$. The intra-assay precision for vitamin D was between $1.68{\pm}0.03%$ and $5.75{\pm}0.33%$, and the inter-assay precision for vitamin D ranged from $1.73{\pm}0.03%$ to $2.96{\pm}0.09%$. The intra-assay accuracy for vitamin D was between $100.03{\pm}2.77%$ and $102.01{\pm}0.59%$, and the inter-assay accuracy for vitamin D ranged from $99.00{\pm}1.53%$ to $102.01{\pm}3.04%$. The proposed method is optimal for the separation and quantification of vitamin D from infant formula.
To analyze aflatoxin $M_1$ ($AFM_1$), we dissolved infant formula in warm water and cleaned it by using an immunoaffinity column (IAC). The amount of $AFM_1$ was determined by high-performance liquid chromatography coupled with fluorescence detection. $AFM_1$ was detected in 281 of 439 samples. Thus, the detection rate of $AFM_1$ was 64.0%. The average concentration of $AFM_1$ in positive samples was 2.6 ng/kg (of prepared formula). The estimated daily intake (EDI) of $AFM_1$ through infant formula was 0.087-0.646 ng/kg body weight/day and the additional number of cases of liver cancer associated with exposure to $AFM_1$ would be 0.003-0.020 cancer cases/1,000,000. Because there is less than 1 cancer case/1,000,000 per year, the exposure to $AFM_1$ through infant formula in Korea is considered to be an unlikely human health concern.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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