Two functional modified-butterfats (MF668 and MF866) were synthesized with two blends (6:6:8 and 8:6:6, w/w%) of anhydrous butterfat (ABF), palm stearin (PS) and flaxseed oil (FSO, omega-3) via lipase-catalyzed interesterification reaction. Their flavor characteristic was investigated using electronic nose and SPME-GC/MS analysis. Each flavor pattern of ABF, FSO, MF668 and MF866 was significantly discriminated with first principal component score of 95.16% in PCA plot. In functional modified-butterfats analyzed with SPME-GC/MS, various volatile compounds such as aldehydes, ketones, acids, and alkanes were detected.
The kinetics of the interesterification of triolein and stearic acid catalyzed by immobilized Rhizopus delemar lipase were studied in a batch operation. In order to clarify the mechanisms of this reaction, three models are discussed under various conditions in terms of the ratio of triolein and stearic acid. The rate constants involved in the proposed model were determined by combining the numerical Gauss-elemination method, and the trial-and-error method so as to fit the calculated results with the experimental data. The accuracy of the obtained rate constants was confirmed after they were substituted for simultaneous differential equations and the equations simulated using an adaptive step-size Runge-Kutta method. Finally, the model which agrees with the calculated results and the experimental data was selected.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.43
no.7
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pp.1025-1035
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2014
This study assessed the effect of immobilized lipase on weak base styrene resin using polyethyleneimine (PEI) with cross-linking. Two procedures were used in this study. The first one, "mono-layer" lipase immobilization, involves washing PEI after adsorption. The second procedure, "multi-layer" lipase immobilization, has no washing before the cross-linking step. Treverlite XS-100200 (weak base styrene resin) was immersed with PEI solution (2.2 mg/mL). Lipase AH (from Burkholderia cepacia) was adsorbed onto the support coated with PEI before cross-linking with glutaraldehyde. Structured lipid was synthesized by immobilized lipase-catalyzed interesterification using canola oil, palmitic ethyl ester (PEE), and stearic ethyl ester (StEE). Total fatty acid contents of triacylglycerol (TAG) in structured lipids were analyzed to investigate activity, properties, and reusability of immobilized lipases. Activities of immobilized lipases on the multi-layer and mono-layer increased at a high concentration (8 mg/mL) of lipase solution used for immobilization. The results show that immobilized lipase with the mono-layer method at pH 8.0 on resin had the highest total saturated fatty acid content (26.17 area%). Activity of immobilized lipase with the multi-layer method at pH 7.5 on support was lower than that of the mono-layer, but total saturated fatty acid content was 16.79 area% higher than that of lipase AH (15.01 area%).
Structured lipid (SL) was synthesized by enzymatic interesterification of algae oil and corn oil in stirred tank batch reactor, The reaction, performed for 15hr at $65^{\circ}C$, was catalyzed by sn-1,3-specific lipase RM IM from Rhizonucor miehei without organic solvent. DHA, oleic acid, and linoleic acid contents of SL were 14.9, 17.3, and 31.8 mol%, respectively. ${\alpha}-,\;{\gamma}-,\;and\;{\delta}-tocopherol$ contents and physiochemical property of SL were evaluated. During 15 hr reaction, most reaction occurred within 6 hr, and highest relative production rate was observed between 3 to 6 hr.
Lipase (triacylglycerol hydrolase, EC 3.1.1.3) is able to catalyze the hydrolysis of ester bonds of triacylglycerols at the interface between aqueous phase and organic phase containing substrate. With the rapid development of lipid biotechnology, lipase-catalyzed hydrolysis of lipids has a great concern from the industrial point of view. Owing to the reversible nature of the lipase, the reactions are also applied for glyceride synthesis, interesterification and resolution of racemic mixtures into optically active alcohols or acids. For all applications of the lipases, a reliable method for the determination of enzyme activity is required. Precise quantitative determination of its activity is essential as the basis of research and development of the bioprocess involving the enzyme. This article reviews the existing literature on the detection and determination of lipase activity from microbial, mammalian and plant sources.
This study explored the solid fat index (SFI) of structured lipids (SLs) synthesized by lipase-catalyzed (Lipozyme TLIM) interesterification using hydrogenated coconut oil (HCO), palm oil (PO) and palm stearin solid (PSS). SLs were produced using three blends of HCO/PO (60:40, w/w), HCO/PSS (40:60 and 60:40, w/w), and HCO/PO/PSS (32:48:18, w/w/w) to find a desirable confectionary fat by monitoring melting and crystallization behaviors of SFI of SLs using differential scanning calorimetry (DSC). SFI of HCO/PSS (60:40) and HCO/PO/PSS (32:48:18) at $25^{\circ}C$ were 70% and 68%, respectively. These results suggest that HCO/PSS (60:40) and HCO/PO/PSS (32:48:18) may be useful as potential SLs of a confectionary fat.
1(3)-palmitoyl-2-oleoyl-3(1)-stearoyl-(POS)-glycerol-enriched reaction products were synthesized from camellia oil, palmitic ethyl ester, and stearic ethyl ester via lipase-catalyzed interesterification. Response surface methodology (RSM) was employed to optimize the production of the POS-enriched reaction product (Y1, %) and the stearicand palmitic-acid contents at the sn-2 position due to acyl migration (Y2, %). The reaction factors were the enzyme amount (X1, 2-6%), reaction time (X2, 60-360 min), and substrate molar ratio of camellia oil to palmitic ethyl ester and stearic ethyl ester (X3, 1-3 mol). The predictive models for Y1 and Y2 were adequate and reproducible as no lack of fit was signified (0.128 and 0.237) and as there were satisfactory levels of R2 (0.968 and 0.990, respectively). The optimal conditions for the reaction product for maximizing Y1 while minimizing Y2 were predicted at the reaction combination of 5.86% enzyme amount, 60 min reaction time, and 1:3 substrate molar ratio (3 moles of palmitic ethyl ester and 3 moles of stearic ethyl ester). Actual reaction was performed under the same conditions as above, and the resulting product contained 20.19% TAG-P/O/S and 12.71% saturated fatty acids at the sn-2 position.
Structured triacylglycerol (SL-TAG) was synthesized by enzymatic interesterification with algae oil and soybean oil in solvent-free system. Structured di- and monoacylglycerol (SL-DAG/MAG) were produced by glycerolysis with SL-TAG and glycerol catalyzed by lipase. Reactions were performed by sn-1.3 specific Lipozyme RM IM lipase from Rhizomucor miehei (interesterification, 11%; glycerolysis 5% by weight of total substrates) in solvent-free system using stirred-batch type reactor. SL-DAG/MAG contained TAG (42,3 area%), 1,3-DAG (19.2 area%), 1,2-DAG (22.2 area%), MAG (16.0 area%), and free fatty acid (0.2 area%). Iodine and saponification values of SL-DAG/MAG were 208.8 and 179.6, respectively. SL-DAG/MAG appeared yellowish in color.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.39
no.10
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pp.1487-1494
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2010
Structured lipid (SL) for cocoa butter alternative was synthesized by interesterification of coconut oil fraction and palm stearin (6:4 and 8:2, by weight) in a shaking water bath at $60^{\circ}C$ and 180 rpm. It was performed for various reaction times (1, 2, 3, and 6 hr). The reaction was catalyzed by sn-1,3 specific Lipozyme TLIM (immobilized lipase from Thermomyces lanuginosus). SL-solid part was obtained from acetone fractionation at $0^{\circ}C$. SL-solid part was blended with other palm oils and fractions for desirable property of cocoa butter alternative (SL-solid part : palm middle fraction : palm stearin solid : palm oil, 70.4:18.4:2.9:8.3, by weight). In reversed-phase HPLC analysis, triacylglycerol species of cocoa butter alternative had partition number of 40 (10.77%), 42 (13.06%), 44~46 (17.38%) and 48 (51.88%). Major fatty acids of cocoa butter alternative were lauric acid (16.5%), myristic acid (12.28%), palmitic acid (46.03%), and linoleic acid (14.75%). Solid fat content (SFC) and polymorphic form (${\beta}'$ form) of cocoa butter alternative prepared were similar to those of commercial cocoa butter replacer (CBR).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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