In the bovine embryo transfer industry, sexing preimplantation embryos is an important management tool. Several methods for bovine embryo sexing utilizing polymerase chain reaction (PCR) have been developed. However, they were not popularized because the methods requiretechnical skills and expensive instruments, and are time consuming. PCR also has the risk of false positives due to DNA contamination during the electrophoresis. (omitted)
Zhang, Xuzhi;Ji, Xinming;Cui, Zhengguo;Yang, Bing;Huang, Jie
Bulletin of the Korean Chemical Society
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제33권1호
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pp.69-75
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2012
Five-channel electrochemical chips were fabricated based on the Micro-electromechanical System (MEMS) technology and were used as platforms to develop DNA arrays. Different kinds of thiolated DNA strands, whose sequences were related to white spot syndrome virus (WSSV) gene, were separately immobilized onto different working electrodes to fabricate a combinatorial biosensor system. As a result, different kinds of target DNA could be analyzed on one chip via a simultaneous recognition process using potassium ferricyanide as an indicator. To perform quantitative target DNA detection, a limit of 70 nM (S/N=3) was found in the presence of 600 nM coexisting noncomplementary ssDNA. The real samples of loop-mediated isothermal amplification (LAMP) products were detected by the proposed method with satisfactory result, suggesting that the multichannel chips had the potential for a high effective microdevice to recognize specific gene sequence for pointof-care applications.
폐암은 전 세계적으로 높은 사망률 때문에 죽음에 이르게 되는 암이다. 폐암은 소세포암과 비소 세포암 두 종류로 나누어 지는데 비소세포암 환자에게서 EGFR 돌연변이가 발견되었고 이 EGFR 돌연변이는 방사선치료와 EGFR tyrosin kinase의 저해제인 gefitinib과 erlotinib의 반응에도 연관되어진다. 이와 같이 EGFR 돌연변이의 검출은 효과적인 치료방법을 제시해 줄 수 있을 것이다. 본 연구에서는 간단하고 값이 싸며, 반응시간이 더 빠르게 유전자 다형성을 검출 할 수 있는 칩-기반 등온증폭반응을 수행하였다. 그 결과, 이 등온증폭 방법은 빠른 증폭 시간과 높은 민감성, 특이성을 가지고 있었으며 현증 검증에서 EGFR 돌연변이를 빠르고 정확하게 진단할 수 있는 유용한 방법이 될 것이다.
Loop-mediated isothermal amplification (LAMP) developed by Notomi et al. (2000) has made it possible to amplify DNA with high specificity, efficiency and rapidity under isothermal conditions. The ultimate products of LAMP are stem-loop structures with several inverted repeats of the target sequence and cauliflower-like patterns with multiple loops shaped by annealing between every other inverted repeats of the amplified target in the similar strand. Because the amplification process in LAMP is achieved by using four to six distinct primers, it is expected to amplify the target region with high selectivity. However, evaluation of reaction accuracy or quantitative inspection make it necessary to append other procedures to scrutinize the amplified products. Hitherto, various techniques such as turbidity assessment in the reaction vessel, post-reaction agarose gel electrophoresis, use of intercalating fluorescent dyes, real-time turbidimetry, addition of cationic polymers to the reaction mixture, polyacrylamide gel-based microchambers, lateral flow dipsticks, fluorescence resonance energy transfer (FRET), enzyme-linked immunosorbent assays and nanoparticle-based colorimetric tests have been utilized for this purpose. In this paper, we reviewed the best-known techniques for evaluation of LAMP amplicons and their applications in molecular biology beside their advantages and deficiencies. Regarding the properties of each technique, the development of innovative prompt, cost-effective and precise molecular detection methods for application in the broad field of cancer research may be feasible.
Conventional molecular detection methods cannot distinguish between viable and dead Escherichia coli O157 cells. In this study, the loop-mediated isothermal amplification (LAMP) method combined with propidium monoazide (PMA) treatment was developed to selectively detect viable E. coli O157 cells. Four primers, including outer primers and inner primers, were specially designed for the recognition of six distinct sequences on the serogroups (O157) of the specific rfbE gene of the E. coli O157 genome. PMA selectively penetrated through the compromised cell membranes and intercalated into DNA. Amplification of DNA from dead cells was completely inhibited by $3.0{\mu}g/ml$ PMA, whereas the DNA derived from viable cells was amplified remarkably within 1 h by PMA-LAMP. Exhibiting high sensitivity and specificity, PMA-LAMP is a suitable method for evaluating the inactivation efficacy of slightly acidic electrolyzed water in broth. PMA-LAMP can selectively detect viable E. coli O157 cells. This study offers a novel molecular detection method to distinguish between viable and dead E. coli O157 cells.
The Lily mottle virus (LMoV) impedes the growth and quality of lily crops in Lanzhou, China. Recently Arabis mosaic virus (ArMV) has been detected in LMoV-infected plants in this region, causing plant stunting as well as severe foliar symptoms, and likely posing a threat to lily production. Consequently, there is a need to develop simple, sensitive, and reliable detection methods for these two viruses to prevent them from spreading. Reverse transcription (RT) loop-mediated isothermal amplification (LAMP) assays have been developed to detect LMoV and ArMV using two primer pairs that match six conserved sequences of LMoV and ArMV coat proteins, respectively. RT-LAMP assay results were visually assessed in reaction tubes using green fluorescence and gel electrophoresis. Our assays successfully detected both LMoV and ArMV in lily plants without the occurrence of viral cross-reactivity from other lily viruses. Optimal conditions for LAMP reactions were 65℃ and 60℃ for 60 min for LMoV and ArMV, respectively. Detection sensitivity for both RT-LAMP assays was a hundredfold greater than that of our comparative RT-polymerase chain reaction assays. We have also found this relatively rapid, target specific and sensitive method can also be used for samples collected in the field and may be especially useful in regions with limited or no laboratory facilities.
Avian influenza (AIV) outbreaks can induce fatal human pulmonary infections in addition to economic losses to the poultry industry. In this study, we aimed to develop a rapid and sensitive point-of-care AIV test using loop-mediated isothermal amplification (LAMP) technology. We designed three sets of reverse transcription LAMP (RT-LAMP) primers targeting the matrix (M) and hemagglutinin (HA) genes of the H5 and H9 subtypes. RT-LAMP targeting the universal M gene was designed to screen for the presence of AIV and RT-LAMP assays targeting H5-HA and H9-HA were designed to discriminate between the H5 and H9 subtypes. All three RT-LAMP assays showed specific amplification results without nonspecific reactions. In terms of sensitivity, the detection limits of our RT-LAMP assays were 100 to 1,000 RNA copies per reaction, which were 10 times more sensitive than the detection limits of the reference reverse-transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) (1,000 to 10,000 RNA copies per reaction). The reaction time of our RT-LAMP assays was less than 30 min, which was approximately four times quicker than that of conventional RT-PCR. Altogether, these assays successfully detected the existence of AIV and discriminated between the H5 or H9 subtypes with higher sensitivity and less time than the conventional RT-PCR assay.
Kim, Na-Kyeong;Lee, Hyo-Jeong;Kim, Sang-Min;Jeong, Rae-Dong
The Plant Pathology Journal
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제38권2호
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pp.159-166
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2022
Barley yellow dwarf virus (BYDV) has been a major viral pathogen causing significant losses of cereal crops including oats worldwide. It spreads naturally through aphids, and a rapid, specific, and reliable diagnostic method is imperative for disease monitoring and management. Here, we established a rapid and reliable method for isothermal reverse transcription recombinase polymerase amplification (RT-RPA) combined with a lateral flow strips (LFS) assay for the detection of BYDV-infected oat samples based on the conserved sequences of the BYDV coat protein gene. Specific primers and a probe for RT-RPA reacted and optimally incubated at 42℃ for 10 min, and the end-labeled amplification products were visualized on LFS within 10 min. The RT-RPA-LFS assay showed no cross-reactivity with other major cereal viruses, including barley mild mosaic virus, barley yellow mosaic virus, and rice black streaked dwarf virus, indicating high specificity of the assay. The sensitivity of the RT-RPA-LFS assay was similar to that of reverse transcription polymerase chain reaction, and it was successfully validated to detect BYDV in oat samples from six different regions and in individual aphids. These results confirm the outstanding potential of the RT-RPA-LFS assay for rapid detection of BYDV.
In this study, we developed a loop-mediated isothermal amplification (LAMP) with hydroxynaphtol blue dye (HNB) for rapid and direct visual detection of porcine circovirus 2 DNA with high sensitivity and specificity. The LAMP was completed in 40 min at $63^{\circ}C$, and the results of the LAMP can be confirmed by naked eye without any detection process. The sensitivity of the LAMP was 10-fold higher than that of the commercial PCR (cPCR) and real time PCR (rPCR) previously reported. In clinical application, the PCV2 detection rate of the LAMP was the same on porcine tissue samples (75.0%, 36/48) between porcine blood samples (75.0%, 39/52). The PCV2 detection rate (75.0%) of LAMP was higher than those of the cPCR and rPCR (67.3%, 35/52) in blood samples. In conclusion, the LAMP developed in the study could be an useful alternative method for the detection of PCV2 in the swine disease diagnostic laboratories.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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