Background: In general, after Panax ginseng is administered orally, intestinal microbes play a crucial role in its degradation and metabolization process. Studies on the metabolism of P. ginseng by microflora are important for obtaining a better understanding of their biological effects. Methods: In vitro biotransformation of P. ginseng extract by rat intestinal microflora was investigated at $37^{\circ}C$ for 24 h, and the simultaneous determination of the metabolites and metabolic profile of P. ginseng saponins by rat intestinal microflora was achieved using LC-MS/MS. Results: A total of seven ginsenosides were detected in the P. ginseng extract, including ginsenosides Rg1, Re, Rf, Rb1, Rc, Rb2, and Rd. In the transformed P. ginseng samples, considerable amounts of deglycosylated metabolite compound K and Rh1 were detected. In addition, minimal amounts of deglycosylated metabolites (ginsenosides Rg2, F1, F2, Rg3, and protopanaxatriol-type ginsenosides) and untransformed ginsenosides Re, Rg1, and Rd were detected at 24 h. The results indicated that the primary metabolites are compound K and Rh1, and the protopanaxadiol-type ginsenosides were more easily metabolized than protopanaxatriol-type ginsenosides. Conclusion: This is the first report of the identification and quantification of the metabolism and metabolic profile of P. ginseng extract in rat intestinal microflora using LC-MS/MS. The current study provided new insights for studying the metabolism and active metabolites of P. ginseng.
BACKGROUND/OBJECTIVES: Indole-3-propionic acid (IPA) is a tryptophan-derived microbial metabolite that has been associated with protective effects against inflammatory and metabolic diseases. However, there is a lack of knowledge regarding the effects of IPA under physiological conditions and at the intestinal level. MATERIALS/METHODS: Human intestinal epithelial Caco-2 cells were treated for 2, 24, and/or 72 h with IPA or its precursors - indole, tryptophan, and propionate - at 1, 10, 100, 250, or 500 μM to assess cell viability, integrity, differentiation, and proliferation. RESULTS: IPA induced cell proliferation and this effect was associated with a higher expression of extracellular signal-regulated kinase 2 (ERK2) and a lower expression of c-Jun. Although indole and propionate also induced cell proliferation, this involved ERK2 and c-Jun independent mechanisms. On the other hand, both tryptophan and propionate increased cell integrity and reduced the expression of claudin-1, whereas propionate decreased cell differentiation. CONCLUSIONS: In conclusion, these findings suggested that IPA and its precursors distinctly contribute to the proliferation, differentiation, and barrier function properties of human intestinal epithelial cells. Moreover, the pro-proliferative effect of IPA in intestinal epithelial cells was not explained by its precursors and is rather related to its whole chemical structure. Maintaining IPA at physiological levels, e.g., through IPA-producing commensal bacteria, may be important to preserve the integrity of the intestinal barrier and play an integral role in maintaining metabolic homeostasis.
Ekong-san(EKS) was expected to have inhibitory effects on angiogenesis, considering the fact that its constituents such as Ginseng Radix, Glycyrrhizae Radix and Citri Pericarpium were reported to inhibit angiogenesis. Moreover, recently several metabolites transformed by the human intestinal microflora were reported to enhance effectiveness compared to their crude drugs. Based on these data, this study was designed to confirm whether the EKS metabolites (EKS-M) can significantly exert the anti-angiogenic and anti-metastatic activites. Hence, with EKS and EKS-M, viability assay, proliferation assay, in vitro tube formation assay, gelatin zymogram assay, in vitro invasion assay were carried out. EKS showed less toxicity in ECV304 and HT1080 cells than EKS-M. EKS-M inhibited the proliferation of HT1080 cells by 30% at 200㎍/㎖ and 42% at 400 ㎍/㎖ respectively. Also, EKS-M degraded the tube network at 200㎍/㎖. EKS and EKS-M inhibited the expression of MMP-9 at 200 and 400㎍/㎖ in HT1080 cells. EKS reduced the invasive activity of HT1080 cells through matrigel coated transfilter atthe concentration of 200㎍/㎖ more effectively than EKS-M. These data suggest that EKS and EKS-M has anti-angiogenic and anti-metastatic activities.
Purpose: Panaxadiols are more potent than panaxatriols as far as insulin secretory activity is concerned. In this study, we examined insulin secretory activity and mechanism of compound K (CK), a major intestinal bacterial metabolite of ginsenosides. Method: Insulin secretory activity of CK was examined using pancreatic beta cells and in Oral Glucose Tolerance Test assay. In addition, insulin secretory mechanism was studied in terms of calcium dependent or independent pathways. Results: In vitro, CK enhanced the insulin secretion concentration-dependently when compared to glucose-stimulated control cells. Insulin secretory mechanism of CK seems to block ATP sensitive K channels, which was confirmed by diazoxide (K channel opener) but, insulin resistance ameliorating activity of CK can't be ruled out. In vivo, CK showed hypoglycemic effect in OGTT.
Park, Hae-Young;Park, Sung-Hwan;Yoon, Hae-Kyung;Han, Myung-Joo;Kim, Dong-Hyun
Archives of Pharmacal Research
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제27권1호
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pp.57-60
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2004
Glycyrrhizin (18$\beta$-glycyrrhetinic acid-3-O-$\beta$-D-glucuronopyranosyl-(1$\rightarrow2)-\beta$-D-glucuronide, GL) was transformed to 18$\beta$-glycyrrhetinic acid-3-O-$\beta$-D-glucuronide (GAMG) by Streptococcus LJ-22. The antiallergic activities of GL and GAMG was measured using a RBL cell assay system and contact hypersensitivity model mice. GAMG exhibited anti-allergic activity with $IC_{50}$ values of 0.28 mM. GAMG, which is sweeter than GL, and 18$\beta$-glycyrrhetinic acid, which is a GAMG metabolite by human intestinal bacteria, also inhibited the passive cutaneous anaphylaxis and skin contact inflammation. In conclusion, GAMG may be useful as a new sweet food additive and an anti-allergic agent.
In order to elucidate the influence of intestinal and hepatic first-pass effect on the pharmacokinetics of triflusal, the biotransformation of triflusal in the gastrointestinal tract and liver was designed. Moreover, we tried to establish an HPLC method applicable for bioassay and available to pharmacokinetics, not only with the simultaneous determination of triflusal and its active metabolite, 2-hydroxy-4-trifluoromethyl benzoic acid (HTB), but also with improving sensitivity. After the administration of triflusal (10 mg/kg) and HTB (10 mg/kg) into femoral vein, portal vein (only triflusal) and oral route (only triflusal), pharmacokinetic parameters were investigated from the plasma concentration-time profiles of triflusal and HTB in rats. An HPLC method was developed for the simultaneous determination of triflusal and HTB in rat plasma, urine and bile. The HPLC analysis was carried out using a C18 column and acetonitrile-methanol-water (25:10:65, v/v/v) as the mobile phase and UV detection at 234 nm. Furosemide was used as the internal standard. The calibration curves were linear over the concentration range $0.05-5.0\;{\mu}g/ml$ for triflusal and $0.2-200.0\;{\mu}g/ml$ for HTB with correlation coefficients greater than 0.999 and with intra-day or inter-day coefficients of variation not exceeding 10.0%. This assay procedure was applied to the study of metabolite pharmacokinetics of triflusal and HTB in rats. It was supposed that triflusal was almost metabolized in vivo because urinary and biliary excreted amounts of triflusal could be ignored as it was lower than 1.2% of the administered dose. According to the gastrointestinal and hepatic biotransformation pathways of triflusal, it was found that triflusal was hydrolyzed by about 5% in intestine and metabolized by about 53% in liver, and that the bioavailability of triflusal after oral administration of triflusal was 0.44, and also that the fraction of total elimination rate of triflusal which formed HTB in liver $(F_{mi},\;%)$ was about 98%. These results showed that triflusal was almost metabolized in liver, and the total elimination of triflusal in the body was dependent to the formation rate of HTB from triflusal in liver.
To search for cytotoxic components from Allium victoriallis , MTT assays on each extract and an isolated component, gitogenin 3-O-lycotetroside, were performed against cancer cell lines. Cytotoxicities of most extract were shown to be comparatively weak, though $IC_50$ values of $CHCl_3$fraction was found to be <31.3-368.4 $\mu\textrm{g}/ml$. From the incubated methanol extract at $36^{\circ}C, eleven kinds of organosulfuric flavours were predictable by CG-MS performance. The most abundant peak was revealed to be 2-vinyl-4H-1,3-dithiin(1) by its mass spectrum. Further, this extract showed significant cytotoxicities toward cancer cell lies. Silica gel column chromatography of the n-butanol fraction led to the isolation of gitogenin 3-O-lycotetroside (3) along with astragalin (4) and kaempferol 3, 4'-di-O-$\beta$-D-glycoside (5). This steroidal saponin exhibited significant cytotoxic activities ($IC_50$, 6.51-36.5 $\mu\textrm{g}/ml$) over several cancer cell lines. When compound 3 was incubated for 24 h with human intestinal bacteria, a major metabolite was produced and then isolated by silica gel column chromatography. By examining parent and prominent ion peak in FAB-MS spectrum of the metabolite, the structure was speculated not to be any of prosapogenins of 3, suggesting that spiroketal ring were labile to the bacterial reaction. These suggest that disulfides produced secondarily are the antitumor principles.
We found that the main bacterial metabolite M1 is an active component of orally administered protopanxadiol-type ginsenosides, and that the anti-metastatic effect by oral administration of ginsenosides may be primarily mediated through the inhibition of tumor invasion, migration and growth of tumor cells by their metabolite M1. Pharmacokinetic study after oral administration of ginsenoside Rb1 revealed that M1 was detected in serum for 24 h by HPLC analysis but Rb1 was not detected. M1, with anti-metastatic property, inhibited the proliferation of murine and human tumor cells in a time- and concentration-dependent manner in vitro, and also induced apoptotic cell death (the ladder fragmentation of the extracted DNA). The induction of apoptosis by M1 involved the up-regulation of the cyclin-dependent kinase(CDK) inhibitor $p27^{Kip1}$ as well as the down-regulation of a proto-oncogene product c-Myc and cyclin D1 in a time-dependent manner. Thus, M1 might cause the cell-cycle arrest (G1 phase arrest) in honor cells through the up/down-regulation of these cell-growth related molecules, and consequently induce apoptosis. The nucleosomal distribution of fluorescence-labeled M1 suggests that the modification of these molecules is induced by transcriptional regulation. Tumor-induced angiogenesis (neovascularization) is one of the most important events concerning tumor growth and metastasis. Neovascularization toward and into tumor is a crucial step for the delivery of nutrition and oxygen to tumors, and also functions as the metastatic pathway to distant organs. M1 inhibited the tube-like formation of hepatic sinusoidal endothelial (HSE) cells induced by the conditioned medium of colon 26-L5 cells in a concentration-dependent manner. However, M1 at the concentrations used in this study did not affect the growth of HSE cells in vitro.
The purpose of this study was to investigate the effect of morin, a flavonoid, on the pharmacokinetics of diltiazem and one of its metabolites, desacetyldiltiazem in rats. Pharmacokinetic parameters of diltiazem and desacetyldiltiazem were determined after oral administration of diltiazem (15 mg/kg) in rats pretreated with morin (1.5, 7.5, and 15 mg/kg). Compared with the control group (given diltiazem alone), pretreatment of morin significantly increased the absorption rate constant $(K_a)$ and peak concentration $(C_{max})$ of diltiazem (p<0.05, p<0.01). Area under the plasma concentration-time curve (AUC) of diltiazem in rats pretreated with morin were significantly higher than that in the control group (p<0.05, p<0.01), hence the absolute bioavailability $(AB\%)$ of diltiazem was significantly higher than that of the control group (p<0.05, p<0.01). Relative bioavailability $(RB\%)$ of diltiazem in rats pretreated with morin was increased by 1.36- to 2.03-fold. The terminal half-life $(t_{1/2})$ and time to reach the peak concentration $(T_{max})$ of diltiazem were not altered significantly with morin pretreatment. AUC of desacetyldiltiazem was increased significantly (p<0.05) in rats pretreated with morin at doses of 7.5 and 15 mg/kg, but metabolite-parent ratio (MR) of desacetyldiltiazem was decreased significantly (p<0.05), implying that pretreatment of morin could be effective to inhibit the CYP 3A4-mediated metabolism of diltiazem. There were no apparent changes of $T_{max}$ and $t_{1/2}$ of desacetyldiltiazem with morin pretreatment. Collectively, the pretreatment of morin significantly altered pharmacokinetics of diltiazem, which can be attributed to increased intestinal absorption as well as reduced first-pass metabolism. Based on these results, dose modification should be taken into consideration when diltiazem is used concomitantly with morin or morin-containing dietary supplements in clinical setting.
The purpose of the present study was to formulate the aqueous solution of $20-O-{\beta}-D-glucopyranosyl-20(S)-protopanaxadiol\;(IH-901)$, an intestinal bacterial metabolic derivative from Ginseng protopanaxadiol saponin. For this purpose, the effects of various solubilization agents such as cosolvents [ethanol, propylene glycol (PG), polyethylene glycol 300 (PEG 300), polyethylene glycol 400 (PEG 400), glycerin], surfactants $(Tween\;80,\;Cremophor^{\circledR}\;RH40,\;Cremophor^{\circledR}\;EL,\;Poloxamer\;407,\;Poloxamer\;188)$ and a complexation agent $[hydroxypropyl-{\beta}-cyclodextrin\;(HPBCD)]$, on the solubility of IH-90l in aqueous solution were evaluated. The solubility of IH-901 in water was under $1\;{\mu}g/ml\;at\;20^{\circ}C$. Cosolvents such as ethanol, PG, PEG 300, PEG 400 and glycerin did not enhance the solubility of IH-901 at the 0 - 40% concentration range. The solubility of IH-901 was significantly elevated by the addition of cosolvents over the 80% concentration range. On the other hand, tween 80, $Cremophor^{\circledR}\;EL,\;Cremophor^{\circledR}\;RH40$ and HPBCD showed enhanced effects on the solubility of IH-901. The enhanced effects of Poloxamer 407 or Poloxamer 188 on the IH-901 solubility were less pronounced compared with $Cremophor^{\circledR}\;EL\;or\;Cremophor^{\circledR}\;RH40$. As a results, $Cremophor^{\circledR}$ aqueous solution was selected as an optimum solvent system. The aqueous solutions containing 10% $Cremophor^{\circledR}\;EL$ and 7% $Cremophor^{\circledR}\;RH40$ were formulated as dosing solutions containing 5.0 mg/ml of IH-901 for its intravenous and oral administration, respectively. The formular showed physical stability after stored for 7 days at $4^{\circ}C$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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