A pair of designed primers (sequences from Gene Bank) amplified 16S fRNA gene of V. vulnificus within polymerase chain reaction (PCR) machine. This PCR product is about 1.3kb DNA fragment. Six enzymes (BamH I, Alu I, Sau3A I, Hind III, Sal I, Sma I) were used for restriction pattern analysis of amplified 16S rRNA gene of V. vulnificus ATCC 27562. Digested fragments are resolved by 3% agarose gel. BamH I did not show digested fragment so, there was no cutting site of BamH I in PCR product. Alu I produced three small fragments from 400 bp to 200 bp. Sau3A I produced three fragments larger than Alu I from 70 bp and 500 bp. One of fragments of Sal I was same with 500 bp of Hind III fragment and the other was 750 bp. Sma I showed two fragments of 800 bp and 470 bp. The profile of digested fragments of 16S rRNA of V.vulnificus ATCC 27562 will may be able to use standard profile for identification of V. vulnificus.
This study was performed to investigate the biological characteristics of twenty isolates of extended spectnlm $\beta$-lactamase (ESBL) producing Klebsiellapnezm~onia collected kom the various clinical specimens of three hospitals in Pusan. Isoelectric focusing (IEF) and PCR were used to determine the types of $\beta$-lactamase gene in this study. Twenty isolates of ESBL producing Klebsiellnp~ieun~or~iae could be divided by PCR, such as TEM type (I1 strains), SHV type (8 strains); non TEM non SHV type (1 strain). In the isoelechic focusing test, the PI of TEM type was 5.2-6.0 and that of SHV type was 6.9-7.4. According to the pI value and PCR bands, twenty strains of ESBL Klebsiellapneumoniae were divided into 5 types: TEM type @I 5.2-6.0; 1080 bp on PCR band), TEM + SHV type (pI 5.2-6.0; andpI 7.0-7.4; 1080 bp and 599 bp on PCR band), SHV type (pl7.0-7.4; 599 bp on PCR band), non TEM non SHV type, and otber type (PCR result was SHV type but pI was not detected).
A polymerase chain reaction (PCR)-restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis was applied to detect and identify ten Weissella spp. frequently found in kimchi. The previously reported genus-specific primers designed from 16S rDNA sequences of Weissella spp. were adopted but PCR was performed at the increased annealing temperature by $4^{\circ}C$. The sizes of amplified PCR products and restricted fragments produced by AluI, MseI, and BceAI endonucleases were well correspond with the expected sizes. W. kandleri, W. koreensis, W. confusa, W. minor, W. viridescens, W. cibaria, and W. soli were distinguished by AluI and MseI and W. hellenica and W. paramesenteroides were identified by BceAI. W. thailandensis was distinguished when restriction pattern of other species was compared but identified by the single use of MspI.
Reverse transcription and polymerase chain reaction (RT-PCR) techiniques were used to identification and differentiation of cucumber mosaic virus isolated from Forsythia koreana (CMV-Fk). RT-PCT used by two set of 20-mer primers one was CMV-common primers and another was CMV subgroup I-specific primers designed in a conserved region of the 3' end of CMV RNA3, amplified about 490 bp and 200 bp DNA fragments from CMV-Fk, respectively. CMV could be detected by RT-PCR at a dilution as low as 10-4 in forsythia crude sap extracts. Restriction enzyme analysis of RT-PCR products using EcoRI and MspI showed that CMV-Fk belonged to CMV subgroup I. But, analysis of RNA fingerprinting by arbitrarily primed polymerase chain reaction (RAP-PCR) showed heterogeneity of RNA3 between CMV-Fk and CMV-Y as a member of subgroup I.
Kim, Jae-Hwan;Ahn, Ji-Hye;Song, Hee-Sung;Kim, Kyung-Hwan;Kim, Dong-Hern;Kim, Hae-Yeong
Applied Biological Chemistry
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v.49
no.3
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pp.192-195
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2006
For the development of a qualitative PCR detection method for genetically modified perilla (Perilla frutescens), perilla species-specific gene, KAS-I (Beta-ketoacyl-ACP synthase I), was selected and validated as suitable for the use as an endogenous reference gene in perilla. Primer specificity was first tested by the means of qualitative PCR analysis. The primer pair Pfru3-F/R amplifying the perilla endogenous gene, KAS-I, gave rise to an amplicon 95 bp. No amplified product was observed when DNA samples from 15 different plants were used as templates. Qualitative PCR detection method was assayed with vitamin E-enriched GM Perilla developed in Korea. For the qualitative PCR detection method, the construct-specific detection primer pairs were constructed. The primer pair TMTO-F/R amplifying the junction region of TMT (${\gamma}$-tocopherol methyltransferase) gene and OCS (Octopine synthase) terminator introduced in GM perilla gave rise to an amplicon 148 bp.
Escherichia coli K-12 (E. coli K-12) is a representative indicator globally used for distinguishing and monitoring dynamic fates of pathogenic microorganisms in the environment. This study investigated how to most critically quantify lacZ ($\beta$-galactosidase) gene in E. coli K-12 by two different real-time polymerase chain reaction (real-time PCR) in association with three different DNA extraction practices. Three DNA extractions, i.e., sodium dodecyl sulfate (SDS)/proteinase K, magnetic beads and guanidium thiocyanate (GTC)/silica matrix were each compared for extracting total genomic DNA from E. coli K-12. Among them, GTC/silica matrix and magnetic beads beating similarly worked out to have the highest (22-23 ng/${\mu}L$) concentration of DNA extracted, but employing SDS/proteinase K had the lowest (10 ng/${\mu}L$) concentration of DNA retrieved. There were no significant differences in the quantification of the copy numbers of lacZ gene between SYBR Green I qPCR and QProbe-qPCR. However, SYBR Green I qPCR obtained somewhat higher copy number as $1{\times}10^8$ copies. It was decided that GTC/silica matrix extraction or magnetic beads beating in combination with SYBR Green I qPCR can be preferably applied for more effectively quantifying specific gene from a pure culture of microorganism.
Mesophilic Crenarchaeota have been known to be predominant among ammonia-oxidizing microorganisms in terrestrial and marine environments. In this study, we determined the archaeal phylotypes carrying specific amoA by combining digital PCR and multiplex-nested PCR. Analysis of samples in which amoA and 16S rRNA gene were amplified showed that amoA gene diversity was relatively higher than that of 16S rRNA gene. Nitrifying archaeal group I.1a was dominant over I.1b group of crenarchaota and euryarchaeota. This approach could be applied for interrelating a functional gene to a specific phylotype in natural environments.
Virus infections of apples result in lowered commercial qualities such as low sugar content, weakened tree vigor, and malformed fruits. An effective way to control viruses is to produce virus-free plants based on the development of an accurate and sensitive diagnostic method. In this study, real-time PCR assays based on SYBR Green I and TaqMan probes were developed for detecting ASGV, ASPV, and ApMV viruses. These methods can detect and quantify 103 to 1011 RNA copies/μL of each virus separately. Compared with methods with two different dyes, the SYBR Green I-based method was efficient for virus detection as well as for assay using the TaqMan probe. Field tests demonstrated that real-time PCR methods developed in this study were applicable to high-throughput diagnoses for virus research and plant quarantine.
A multiplex PCR method was designed by employing primers specific for the eaeA gene, conserved sequences of Shiga-like toxins (SLT-I.II), and the 60-MDa plasmid of enterohemorrhagic E. coli (EHEC) O157:H7 strain. A set of six synthetic oligonucleotide primers derived from sequences of the SLT-I.II, eaeA, and 60-MDa plasmid genes of E. coli O157:H7 were used in a multiplex PCR amplification procedure to detect these genes in the same enteric pathogens. In two enterohemorrhagic E. coli O157:H7 (ATCC 35150, ATCC 43894) reference strains, PCR products of 317bps (eaeA), 228bps (SLT-I.II), and 167bps (60-MDa plasmid) were successfully amplified simultaneously in a single reaction. However, the specific PCR products were not amplified in control strains of other enteric bacteria. The sensitivity of the multiplex PCR assay for detection of the SLT-I.II, eaeA, and 60-MDa plasmid genes of E. coli O157:H7 was found to be 2.5$\times$10$^{6}$ of bacteria in diarrheal stool to amplify all three bands. The multiplex PCR technology will allow large-scale screening of many clinical specimens or contaminated foods, and will be a very useful method for the detection of a wide range of microorganisms present in the environment, including EHEC O157:H7 in various types of specimens. The multiplex PCR assay has the potential to be used as a specific and rapid method for clinical diagnosis of disease caused by EHEC O157:H7.
An isolate of Cucumber mosaic cucumovirus(CMV) was isolated from Hydrangea macrophylla for. otaksa(Sieb. et Zucc. ) Wils. showing mosaic symptoms, and designated as Hm-CMV. Hm-CMV was characterized by the tests of host range, physical properties, serological properties, RNA and coat protein compositions, and reverse transcription and polymerase chain reaction (RT-PCR) analysis. Twelve species in 4 families were used in the host range test of Hm-CMV and could be differentiated from Y-CMV used as a control CMV by the ringspot and line pattern on inoculated leaves of several tobacco plants. Thevirus produced local lesions on inoculated leaves of Chenopodium amarticolor, C. quinoa and Vigna unguiculata. The physical properties of the virus were as follows; thermal inactivation point(TIP) was 60$\^{C}$, dilution end point (DEP) was 10$\^$-3/, and longevity in vitro (LIP) was 3∼4 days. Hm-CMV was serologically identical to Y-CMV. SDS-polyaciylamide gel electrophoresis(SDS-PAGE) showed one major protein band of about 28 kDa. In RNA or dsRNA analysis, Hm-CMV consisted of four RNA or dsRNA species, but satellite RNA was not detected. In RT-PCR using CMV-common primer and CMV subgroup I-specific primer, bothe amplified expected size of about 490 bp and 200 bp DNA fragments from Hm-CMV, respectively. Restriction enzyme analysis of the 490 bp RT-PCR products using EcoR I and Msp I showed that Hm-CMV belonged to CMV subgroup I. However, Hm-CMV could be differentiated from other CMV subgroup I isolates by RNA fingerprinting by arbitrarily primed polymerase chain reaction (RAP-PCR).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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