We report the construction of two Bacillus subtilis expression vectors, pBNS1/pBNS2. Both vectors are based on the strong promoter P43 and the ampicillin resistance gene expression cassette. Additionally, a fragment with the Shine-Dalgarno sequence and a multiple cloning site (BamHI, SalI, SacI, XhoI, PstI, SphI) were inserted. The coding region for the amyQ (encoding an amylase) signal peptide was fused to the promoter P43 of pBNS1 to construct the secreted expression vector pBNS2. The applicability of vectors was tested by first generating the expression vectors pBNS1-GFP/pBNS2-GFP and then detecting for green fluorescent protein gene expression. Next, the mannanase gene from B. pumilus Nsic-2 was fused to vector pBNS2 and we measured the mannanase activity in the supernatant. The mannanase total enzyme activity was 8.65 U/ml, which was 6 times higher than that of the parent strain. Our work provides a feasible way to achieve an effective transformation system for gene expression in B. subtilis and is the first report to achieve B. pumilus mannanase secretory expression in B. subtilis.
The acid-bible subunit (ALS) associates with the insulinlike growth factor (IGF)-I or II, and the IGF binding protein-3 (IGFBP-3) in order to form a 150-kD complex in the circulation. This complex may regulate the serum IGFs by restricting them in the vascular system and promoting their endocrine actions. Little is known about how ALS binds to IGFBP3, which connects the IGFs to ALS. Xenopus oocyte was utilized to study the function of ALS in assembling IGFs into the ternary complexes. Xenopus oocyte was shown to correctly translate in vitro transcribed mRNAs of ALS and IGFBP3. IGFBP3 and ALS mRNAs were injected in a mixture, and their products were immunoprecipitated by antisera against ALS and IGFBP3. Contrary to traditional reports that ALS interacts only with IGF-bound IGFBP3, this study shows that ALS is capable of forming a binary complex with IGFBP3 in the absence of IGF When cross-linked by disuccinimidyl suberate, the band that represents the ALS-IGFBP3 complex was evident on the PAGE. IGFBP3 movement was monitored according to the distribution between the hemispheres. Following a localized translation in the vegetal hemisphere, IGFBP3 remained in the vegetal half in the presence of ALS. However, the mutant IGFBP3 freely diffused into the animal half, despite the presence of ALS, which is different from the wild type IGFBP3. This study, therefore, suggests that ALS may play an important role in sequestering IGFBP3 polypeptides via the intermolecular aggregation. Studies using this heterologous model will lead to a better understanding of the IGFBP3 and ALS that assemble into the ternary structure and circulate the IGF system.
Litchi (Litchi chinensis Sonn.) is an important subtropical fruit crop with high commercial value due to its high nutritional values and favorable tastes. However, irregular bearing attributed to unstable flowering is a major ongoing problem for litchi producers. Previous studies indicate that low-temperature is a key factor in litchi floral induction. In order to reveal the genetic and molecular mechanisms underlying the reproductive process in litchi, we had analyzed the transcriptome of buds before and after low-temperature induction using RNA-seq technology. A key flower bud differentiation associated gene, a homologue of FLORICAULA/LEAFY, was identified and named LcLFY (GenBank Accession No. KF008435). The cDNA sequence of LcLFY encodes a putative protein of 388 amino acids. To gain insight into the role of LcLFY, the temporal expression level of this gene was measured by real-time RT-PCR. LcLFY was highly expressed in flower buds and its expression correlated with the floral developmental stage. Heterologous expression of LcLFY in transgenic tobacco plants induced precocious flowering. Meantime, we investigated the sub-cellular localization of LcLFY. The LcLFY-Green fluorescent protein (GFP) fusion protein was found in the nucleus. The results suggest that LcLFY plays a pivotal role as a transcription factor in controlling the transition to flowering and in the development of floral organs in litchi.
Background: Cytochrome P450 enzymes catalyze a wide range of reactions in plant metabolism. Besides their physiological functions on primary and secondary metabolites, P450s are also involved in herbicide detoxification via hydroxylation or dealkylation. Ginseng as a perennial plant offers more sustainable solutions to herbicide resistance. Methods: Tissue-specific gene expression and differentially modulated transcripts were monitored by quantitative real-time polymerase chain reaction. As a tool to evaluate the function of PgCYP736A12, the 35S promoter was used to overexpress the gene in Arabidopsis. Protein localization was visualized using confocal microscopy by tagging the fluorescent protein. Tolerance to herbicides was analyzed by growing seeds and seedlings on Murashige and Skoog medium containing chlorotoluron. Results: The expression of PgCYP736A12 was three-fold more in leaves compared with other tissues from two-year-old ginseng plants. Transcript levels were similarly upregulated by treatment with abscisic acid, hydrogen peroxide, and NaCl, the highest being with salicylic acid. Jasmonic acid treatment did not alter the mRNA levels of PgCYP736A12. Transgenic lines displayed slightly reduced plant height and were able to tolerate the herbicide chlorotoluron. Reduced stem elongation might be correlated with increased expression of genes involved in bioconversion of gibberellin to inactive forms. PgCYP736A12 protein localized to the cytoplasm and nucleus. Conclusion: PgCYP736A12 does not respond to the well-known secondary metabolite elicitor jasmonic acid, which suggests that it may not function in ginsenoside biosynthesis. Heterologous overexpression of PgCYP736A12 reveals that this gene is actually involved in herbicide metabolism.
The expression of Aspergillus nidulans glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (gpdA) and trpC promoters in A. oryzae were compared using E. coli lacZ gents fusions. The specific activities of the expressed E. coli $\beta$-galactosidase in A. oryzae transformants containing the A. nidulans gpdA promoter were around 2,000 units per ug of protein. The specific activities of transformants containing the A. nidulans trpC promoter were very low, ranging from 10.5 to 52.3 units per ug of protein. These results showed that the expression of the A. nidulans gpdA promoter in A. oryzae was approximately 70 times greater than the A. nidulans trpC promoter. In western blot analysis, immunoreactive bands of a imlilar molecular weight as the E. coli $\beta$-galactosidase were observed in A. oryzae carrying the gpdA-lacZ fusion and to a lesser intensity in those carrying the tvpC-lacZ fusion. Southern analysis showed that the higher expression of the gpdA-lacZ fusion as compared to the trpC-lacZ fusion was not due a greater number of integrated plasmids.
Meilina, Lita;Budiarti, Sri;Mustopa, Apon Zaenal;Darusman, Huda Shalahudin;Triratna, Lita;Nugraha, Muhammad Ajietuta;Bilhaq, Muhammad Sabiq;Ningrum, Ratih Asmana
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.49
no.1
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pp.75-87
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2021
Type I Interferons (IFNα) are known for their role as biological anticancer agents owing to their cell-apoptosis inducing properties. Development of an appropriate, cost-effective host expression system is crucial for meeting the increasing demand for proteins. Therefore, this study aims to develop codon-optimized IFNα-2b in L. lactis NZ3900. These cells express extracellular protein using the NICE system and Usp45 signal peptide. To validate the mature form of the expressed protein, the recombinant IFNα-2b was screened in a human colorectal cancer cell line using the cytotoxicity assay. The IFNα-2b was successfully cloned into the pNZ8148 vector, thereby generating recombinant L. lactis pNZ8148-SPUsp45-IFNα-2b. The computational analysis of codon-optimized IFNα-2b revealed no mutation and amino acid changes; additionally, the codon-optimized IFNα-2b showed 100% similarity with native human IFNα-2b, in the BLAST analysis. The partial size exclusion chromatography (SEC) of extracellular protein yielded a 19 kDa protein, which was further confirmed by its positive binding to anti-IFNα-2b in the western blot analysis. The crude protein and SEC-purified partial fraction showed IC50 values of 33.22 ㎍/ml and 127.2 ㎍/ml, respectively, which indicated better activity than the metabolites of L. lactis NZ3900 (231.8 ㎍/ml). These values were also comparable with those of the regular anticancer drug tamoxifen (105.5 ㎍/ml). These results demonstrated L. lactis as a promising host system that functions by utilizing the pNZ8148 NICE system. Meanwhile, codon-optimized usage of the inserted gene increased the optimal protein expression levels, which could be beneficial for its large-scale production. Taken together, the recombinant L. lactis IFNα-2b is a potential alternative treatment for colorectal cancer. Furthermore, its activity was analyzed in the WiDr cell line, to assess its colorectal anticancer activities in vivo.
Streptomyces setonii (ATCC 39116) is a Gram-positive thermophilic soil actinomycetes capable of degrading single aromatic compounds including phenol and benzoate via ortho-cleavage pathway. we isolated approximately 6.3-kb S. setonii DNA fragment containing a thermophilic catechol 1,2-dioxygenase(C12O) gene. Here we further revealed that the 6.3-kb S. setonii DNA fragment was organized into two putative divergently-transcribed clusters with 6 complete and one incomplete open reading frames (ORFs). The first cluster with 3 ORFs showed significant homologies to previously known benA, benB, and benC, implying a part of benzoate catabolic operon. The second cluster revealed an ortho-cleavage catechol catabolic operon with three translationally-coupled ORFs (catR, catB, catA). Each of these individually-cloned ORFs was expressed in E. coli and identified as a distinct protein band with a theoretical molecular weight in SDS-PAGE. The expression of the cloned S. setonii catechol operon was induced in a heterologous S. lividans by specific single aromatic compounds including catechol, phenol, and 4-chlorophenol. The simitar induction pattern was also observed using a luciferase gene-fused reporter system, implying that S. setonii employs an inducer-specific regulatory mechanism for aromatic compound metabolism.
HONG, SOON-DUCK;JONG-GUK KIM;TAKUYA NAGAMATSU;JOO-HYUN NAM;DONG-SUN LEE;SANG-YONG LEE;SUN-HWA HA
Journal of Microbiology and Biotechnology
/
v.3
no.1
/
pp.6-11
/
1993
An autonomously replicating sequence (Kf-ARS1) of Kluyveromyces fragilis was cloned from the genomic library which was constructed using pHN134 as a cloning vector to make a new host-vector system for the production of heterologous protein from K. fragilis as a host. The cloning vector pHN134 was composed of $Km^r, Ap^r$ and multiple cloning site in LacZ . A clone carrying Kf-ARS1 was isolated and the recombinant plasmid was designated as pIKD102. The cloned fragment was 2.3 kb (EcoRI/EcoRI) in length. Subcloning experiment showed that the region for ARS activity was 1.5 kb (SalI/EcoRI) fragment. It was shown that the Kf-ARS1 was active in Saccharomyces cerevisiae and Kluyveromyces fragilis.
Flock House virus (FHV), an insect RNA virus, has a bipartite genome. FHV RNA1 can be packaged in turnip yellow mosaic virus (TYMV) as long as the FHV RNA has a TYMV sequence at the 3'-end. The encapsidated FHV RNA1 has four additional nucleotides at the 5'-end. We investigated whether the recombinant FHV RNA1 could replicate in mammalian cells. To address this issue, we prepared in vitro transcribed FHV RNAs that mimicked the recombinant FHV RNA1, and introduced them into baby hamster kidney (BHK) cells. The result showed that the recombinant FHV RNA1 was capable of replication. An eGFP gene inserted into the frame with B2 gene of the FHV RNA1 was also successfully expressed. We also observed that eGFP expression at the protein level was strong at 28℃ but weak at 30℃. Sequence analysis showed that the 3'-ends of the RNA1 and RNA3 replication products were identical to those of the authentic FHV RNAs. This indicates that FHV replicase correctly recognized an internally-located replication signal. In contrast, the 5'-ends of recombinant FHV RNA1 frequently had deletions, indicating random initiation of (+)-strand synthesis.
Toxoplasmosis is an opportunistic infection caused by the protozoan parasite Toxoplasma gondii. T. gondii is widespread globally and causes severe diseases in individuals with impaired immune defences as well as congenitally infected infants. The high prevalence rate in some parts of the world such as South America and Africa, coupled with the current drug treatments that trigger hypersensitivity reactions, makes the development of immunotherapeutics intervention a highly important research priority. Immunotherapeutics strategies could either be a vaccine which would confer a pre-emptive immunity to infection, or passive immunization in cases of disease recrudescence or recurrent clinical diseases. As the severity of clinical manifestations is often greater in developing nations, the development of well-tolerated and safe immunotherapeutics becomes not only a scientific pursuit, but a humanitarian enterprise. In the last few years, much progress has been made in vaccine research with new antigens, novel adjuvants, and innovative vaccine delivery such as nanoparticles and antigen encapsulations. A literature search over the past 5 years showed that most experimental studies were focused on DNA vaccination at 52%, followed by protein vaccination which formed 36% of the studies, live attenuated vaccinations at 9%, and heterologous vaccination at 3%; while there were few on passive immunization. Recent progress in studies on vaccination, passive immunization, as well as insights gained from these immunotherapeutics is highlighted in this review.
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