Reverse gyrase is a hyperthermophile specific protein which introduces positive supercoils into DNA molecules. Reverse gyrase consists of an N-terminal helicase-like domain and a C-terminal topoisomerase domain. The helicase-like domain shares the three-dimensional structure with two tandem RecA-folds (H1 and H2), in which the subdomain H2 is interrupted by the latch domain (H3). To understand the physical property of the hyperthermophile-specific protein, two subdomains af_H1 and af_H23 have been cloned into E. coli expression vector, pET28a. The $^{15}N$-labeled af_H1 and af_H23 proteins were expressed and purified for heteronuclear NMR study. The af_H1 protein exhibits the well-dispersion of amide signals in its $^1H/^{15}N$-HSQC spectra and thus further NMR study continues to be progressed.
We investigated the cold shock sensitivity of DEAD-box RNA helicase gene deleted strains of in Bacillus subtilis CU1065. To understand cold shock effects, cells were cultivated at $37^{\circ}C$ to log phase ($O.D_{600}$=0.5-0.6) and then temperature was shifted to $15^{\circ}C$. Cold shock slow down the growth rate of wild type and deleted strains of DEAD-box RNA helicase gene (ydbR, yfmL, yqfR, deaD). The growth rate of ydbR deleted strain is 5 times severely reduced compared to that of wild type strain (CU1065). But the growth rate of other three (yfmL, yqfR, deaD) deleted strains is nearly equal to the growth rate of wild type. Compared to $37^{\circ}C$, the amount of ydbR and yqfR mRNA transcripts are increased at the growth temperature of $15^{\circ}C$. On the other hands the mRNA transcripts of yfmL and deaD are not changed at both conditions of $37^{\circ}C$ and $15^{\circ}C$. Upon cold shock treatment ydbR mRNA transcript is clearly increased. After treatment of rifampicin (bacteria transcription inhibitor) the amount of ydbR mRNA was measured. Temperature shift from $37^{\circ}C$ to $15^{\circ}C$ and rifampicin treatment showed slowly decay of ydbR mRNA. But at $37^{\circ}C$ and rifampicin treatment ydbR mRNA is rapidly reduced. These results showed that cold shock induction of ydbR mRNA resulted from the stability of ydbR mRNA and not from the transcription induction of ydbR. In relation to these results, we found the cold box element of csp (cold shock protein gene) in 5' untranslated region of ydbR gene. Cold shock induction of ydbR is caused by the stability of ydbR mRNA like the stability of csp mRNA.
Yong Hwan Jin;Eung Jae Yoo;Yeun Kyu Jang;Seung Hae Kim;Chee-Gun Lee;Rho Hyun Seong;Seung Hwan Hong;Sang Dai Park
Animal cells and systems
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v.2
no.4
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pp.539-543
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1998
Hrp1, of Schizosaccharomyces pombe, is a new member of the SW12/SNF2 protein family that contains a chromodomain and a DNA binding domain as well as ATPase/7 helicase domains. This configuration suggests that Hrp1 could be a homolog of mouse CHD1, which is thought to function in altering the chromatin structure to facilitate gene expression. To understand the enzymatic nature of Hrp1 we purified the 6-Histidine-tagged Hrp1 protein (6$\times$His-Hrp1) to homogeneity from a S. pombe Hrp1-overexpressing strain and hen examined its biochemical properties. We demonstrate that the purified 6$\times$His-Hrp1 protein exhibited a DNA-binding activity with a moderate preference to the (A+T)-rich tract in double-stranded NA via a minor groove interaction. However, we failed to detect any intrinsic DNA helicase activity from the purified Hrp1 like other SW12/SNF2 proteins. These observations suggest that the DNA binding activities of Hrp1 may be involved in the remodeling of the chromatin structure with DNA-dependent ATPase. We propose that Hrp1 may function in heterochromatins as other proteins with a chromo- or ATPase/helicase domain and play an important role in the determination of chromatin architecture.
This study was designed to clone the SNF2/SW12 helicase-related genes from the fission yeast Schizosaccha-romyces pombe and thereafter to elucidate the common functions of the proteins in this family. The $hrp^{2+}$gene was cloned by polymerase chain reaction amplification using degenerative primers from conserved SNF2 motifs within the ERCC6 gene, which encodes a protein involved in DNA excision repair. Like other SNF2/SW12 family proteins, the deduced amino acid sequence of Hrp2 contains DNA-dependent ATPase/7 helicase domains as well as the chromodomain and the DNA binding domain. This configuration is similar to that of mCHD1 (mouse chromo-ATPase/helicase-DNA-dinding protein 1), suggesting that Hrp2 is a S. pombe homolog of mCHD1, which is thought to function in altering the chromatin structure to control the gene expression. To characterize the function of Hrp2, 4 Uracil-Hrp2 fusion protein, it was purified near homogeneity by affinity chromatography on $Ni^{2+}$-NTA agarose, DEAE-Sepharose ion exchange arid Sephacryl S-200 gel filtration chromatographies. The purified fusion protein exhibited DNA-dependent ATPase activity, which was stimulated by both double-stranded and single-stranded DNA. To determine the steady-state level of $hrp^{2+}$ transcripts during growth, cells were cultured in medium and collected at every 2hr to prepare total RNAs. The northern blot analysis showed that the level of $hrp^{2+}$ transcripts reached its maximum before the cells entered the exponential growth phase and then decreased gradually, This result implies that Hrp2 may be required at early stages of cell growth.h.
Kim, Jung-il;Do, Thinh Dinh;Choi, Tae-June;Yeo, Yonggu;Kim, Chang-Bae
Korean Journal of Environmental Biology
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v.38
no.3
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pp.350-354
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2020
Many parrots are considered endangered species due to threats from human activities. Gender determination is of great importance for biological studies and the conservation of endangered parrots. However, like other birds, gender determination in parrots is hindered due to the lack of external dimorphism between males and females. A molecular approach using the chromo-helicase-DNA binding protein 1 (CHD1) gene is commonly used for sexing birds. This study aimed to determine the gender of parrots from Korean zoos based on amplification and visualization of the partial CHD1 gene. The samples of 13 parrot species were collected from three different zoos in Korea and the extracted DNA templates were amplified using CHD1 gene primers. The gender of 27 samples of 13 species was determined by visualizing the PCR products on an agarose gel. While male parrots were indicated by a single band, female parrots were indicated by double bands. The findings provide additional information, which might be helpful for the management and care of parrots in Korean zoos.
Invading pathogens are recognized by diverse germline-encoded pattern-recognition receptors (PRRs) which are distributed in three different cellular compartments: extracellular, membrane, and cytoplasmic. In mammals, the major extracellular PRRs such as complements may first encounter the invading pathogens and opsonize them for clearance by phagocytosis which is mediated by membrane-associated phagocytic receptors including complement receptors. The major membrane-associated PRRs, Toll-like receptors, recognize diverse pathogens and generate inflammatory signals to coordinate innate immune responses and shape adaptive immune responses. Furthemore, certain membrane-associated PRRs such as Dectin-1 can mediate phagocytosis and also induce inflammatory response. When these more forefront detection systems are avoided by the pathogens, cytoplasmic PRRs may play major roles. Cytoplasmic caspase-recruiting domain (CARD) helicases such as retinoic acid-inducible protein I (RIG-I)/melanoma differentiation-associated gene 5 (MDA5), mediate antiviral immunity by inducing the production of type I interferons. Certain members of nucleotide-binding oligomerization domain (NOD)-like receptors such as NALP3 present in the cytosol form inflammasomes to induce inflammatory responses upon ligand recognition. Thus, diverse families of PRRs coordinately mediate immune responses against diverse types of pathogens.
Proceedings of the Korean Society of Sericultural Science Conference
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1997.06a
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pp.73-101
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1997
Baculoviruses are characterized by large double-stranded circular DNA genomes and rod-shaped enveloped virions. Bombyx mori nucleopolyhedrovirus(BmNPV) is a major pathogen, which causes severe damage in sericulture. Currently, BmNPV is recogtnized as an improtant tool in molecular biology, especially for expression of useful genes in B.mori cells and silkworm larvae. Our laboratories have focused on the studies of the molecular mechanisms of BmNPV replication and the application of BmNPV to agriculture and medicine. The entire nucleotide sequence of the BmNPV genome has recently determined. The BmNPV genome possessed 135 putative genes and 7 homologous repeated sequence (hrs) regions. Relatively little space, a few to a few hundred base-pairs, was observed between the open reading frames and hrs. Termination codons often overlapped. These results showed a compactly packde BmNPV genome. Based on comparative sequence analyses, we speculated that the ancestor of BmNPV was a baculovirus similar to Autographa californica NPV(AcNPV). The function of the BmNPV genes were characterized by gene deletion analysis; p35 was found to be involved in blocking apoptosis and cysteine proteinase was found to be involved in horizontal virus transmission by degrading viral-infected larval host. By AcNPV and BmNPV coinfection experiments, we identified a BmNPV gene involved in expanding host specificity of AcNPV. The identified gene was likely encoded a DNA helicase based on the amino acid sequence analysis; a few amino acid substitutions in the putative DNA helicase gene resulted in the expansion of host range of AcNPV. These findings indicate that BmNPV evolved within a short period from an AcNPV-like ancestral virus due to rapid evolution including specific amino acid substitutions and gene deletions/insertions.
A mutant library of Cordyceps militaris was constructed by improved Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation and screened for degradation features. Six mutants with altered characters in in vitro and in vivo fruiting body production, and cordycepin formation were found to contain a single copy T-DNA. T-DNA flanking sequences of these mutants were identified by thermal asymmetric interlaced-PCR approach. ATP-dependent helicase, cytochrome oxidase subunit I and ubiquitin-like activating enzyme were involved in in vitro fruiting body production, serine/threonine phosphatase involved in in vivo fruiting body production, while glucose-methanol-choline oxidoreductase and telomerase reverse transcriptase involved in cordycepin formation. These genes were analyzed by bioinformatics methods, and their molecular function and biology process were speculated by Gene Ontology (GO) analysis. The results provided useful information for the control of culture degeneration in commercial production of C. militaris.
The multifunctional triple gene block protein 1 (TGB1) of the Potexvirus Alternanthera mosaic virus (AltMV) has been reported to have silencing suppressor, cell-to-cell movement, and helicase functions. Yeast two hybrid screening using an Arabidopsis thaliana cDNA library with TGB1 as bait, and co-purification with TGB1 inclusion bodies identified several host proteins which interact with AltMV TGB1. Host protein interactions with TGB1 were confirmed by biomolecular fluorescence complementation, which showed positive TGB1 interaction with mitochondrial ATP synthase delta' chain subunit (ATP synthase delta'), light harvesting chlorophyll-protein complex I subunit A4 (LHCA4), chlorophyll a/b binding protein 1 (LHB1B2), chloroplast-localized IscA-like protein (ATCPISCA), and chloroplast ${\beta}$-ATPase. However, chloroplast ${\beta}$-ATPase interacts only with $TGB1_{L88}$, and not with weak silencing suppressor $TGB1_{L88}$. This selective interaction indicates that chloroplast ${\beta}$-ATPase is not required for AltMV movement and replication; however, TRV silencing of chloroplast ${\beta}$-ATPase in Nicotiana benthamiana induced severe tissue necrosis when plants were infected by AltMV $TGB1_{L88}$ but not AltMV $TGB1_{L88}$, suggesting that ${\beta}$-ATPase selectively responded to $TGB1_{L88}$ to induce defense responses.
The Rqh1 gene is essential for vegetative growth in fission Yeast. The rqh1 mutant showed that sensitivity of DNA damaging agent, a wild range of phenotype including abnormal gene expression and cell elongation. This result showed that the rqhl-overexpression cell was sensitivity to DNA damaging agent like rqhl mutant. When Rqh1 have an over-expression by $nmt1^+$ promoter of pREP vector, rqh1 mutant DNA damaging agent sensitivity could be compensated. We isolated two strong mutant containing complementation gene, rqh156 and rqh172, respectively. This result observed that the DNA damaging agent sensitivity of rqhl mutant was complemented by the expression of rqh156 and rqh172. They induced mRNA expression in a dose-dependent manner HU, MMS and UV. The HU sensitivity of the rqhl was complemented by the expression of rqh156 and rqh172. The mRNA expression of rqh156 decreased on HU dose dependent but the mRNA expression of rqh172 did not decrease on HU dose dependent. The MMS and W sensitivity of the rqhl was complemented by the expression of rqh156 and rqh172. These results indicate that the isolated rqhl gene may play an important role in DNA metabolism.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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