A new heat shock protein 70 was identified in red-spotted grouper (Epinephelus akaara) based on an expression analysis. The cDNA of red-spotted grouper Hsp70 (designated RgHsp70) was cloned by the rapid amplification of cDNA ends (RACE) techniques. The full-length of RgHsp70 cDNA was 2,152 bp, consisting of a 5'-terminal untranslated region (UTR) of 105 bp, a 3'-terminal UTR of 274 bp, and an open reading frame (ORF) of 1,773 bp that encode a polypeptide of 590 amino acids with a theoretical molecular weight of 64.9 kDa and an estimated isoelectric point of 5.2. Multiple alignment and phylogenetic analyses revealed that the RgHsp70 gene shares a high similarity with other Hsp70 fish genes. RgHsp70 contained all three classical Hsp70 family signatures. The results indicated the RgHsp70 is a member of the heat shock protein 70 family. RgHsp70 mRNA was predominately expressed in the liver, with reduced expression noted in the head-kidney tissues. The expression analysis of different water temperatures (21, 18, 15 and $12^{\circ}C$) for sampled livers revealed that expression gradually increased at $12^{\circ}C$ compared to $21^{\circ}C$. In this study, the effects of water temperature lowering on the physiological conditions were investigated, and the results revealed that novel RgHsp70 may be an important molecule involved in stress responses.
Liu, Ya-Qi;Park, Nam Sook;Kim, Yong Gyun;Kim, Keun Ki;Park, Hyun Chul;Son, Hong Joo;Hong, Chang Ho;Lee, Sang Mong
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.28
no.2
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pp.71-84
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2014
The full-length heat shock protein 88 (HSP88) complementary DNA (cDNA) of Paecilomyces tenuipes Jocheon-1 was obtained by screening the Paecilomyces tenuipes (P. tenuipes) Jocheon-1 Uni-Zap cDNA library and performing 5' RACE polymerase chain reaction (PCR). The P. tenuipes Jocheon-1 HSP88 cDNA contained an open reading frame (ORF) of 2,139-basepair encoding 713 amino acid residues. The deduced amino acid sequence of the P. tenuipe s Jocheon-1 HSP88 cDNA showed 77% identity to Nectria haematococca HSP88 and 45-76% identity to other fungal homologous HSP88s. Phylogenetic analysis and BLAST program analysis confirmed that the deduced amino acid sequences of the P. tenuipes Jocheon-1 HSP88 gene belonged to the ascomycetes group within the fungal clade. The P. tenuipes Jocheon-1 HSP88 also contained the conserved ATPase domain at the N-terminal region. The cDNA encoding P. tenuipes Jocheon-1 HSP88 was expressed as an 88 kilodalton (kDa) polypeptide in baculovirus-infected insect Sf9 cells. Under higher temperature conditions for the growth of the entomopathogenic fungus, mRNA expression of P. tenuipes Jocheon-1 HSP88 was quantified by real time PCR (qPCR). The results showed that heat shock stress induced a higher level of mRNA expression compared to normal growth conditions.
Variations in water temperature are known to affect almost every part of fish physiology. The rise in water temperature due to climate change can physically damage fish. This study was conducted to evaluate the health status of the Atlantic salmon (Salmo salar) at high water temperature (20℃) than the optimum water temperature (15℃). Liver tissue exerts important metabolic functions in thermal adaptation. Therefore, liver tissue was used in this study. The evaluation method is to develop the biomarker gene using NGS RNAseq analysis and to examine the expression pattern using RT-qPCR analysis. The NGS RNAseq analysis revealed 1,366 differentially expressed genes, among which 880 genes were increase expressed and 486 genes were decrease expressed. The biomarker genes are such as heat shock protein 90 alpha (Hsp90α), heat shock protein 90 beta (Hsp90β) and cytochrome P450 1A (CYP1A). The selected genes are sensitive to changes in water temperature through NGS RNAseq analysis. Expression patterns of these genes through RT-qPCR were similar to those of NGS RNAseq analysis. The results of this study can be applied to other fish species and it is considered to be useful industrially.
Choi, Hee Chan;Choi, Yoon Seok;Kang, Han Seung;Lee, Yoon
Journal of Marine Life Science
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v.3
no.2
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pp.59-66
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2018
The assessment of level of health of the tidal flats can be evaluate by health of organisms inhabit the tidal flats. It is possible to evaluate the precise health level of organisms inhabit the tidal flats using analysis of expression of biomarker genes. The purpose of this research is to evaluate the health of the tidal flats on the west coast using biomarker genes such as heat shock protein 70 (Hsp70), heat shock protein 90 (Hsp90), glutathione S-transferases (GST) and thioredoxin (TRX). These genes are stress, immune, and antioxidant related genes that can be used to look at the health of an organism through gene expression. In this study, we collected manila clam (Ruditapes philippinarum) in 8 analysis areas on the west coast. Expression of the genes was analyzed by RT-qPCR method. Results showed that, the expression of Hsp70, Hsp90, GST and TRX genes were differentially expressed in the 8 analysis areas. In particular, the expression of Hsp90 and GST or the expression of Hsp70 and TRX were similar. This means that there is a substance that reacts specifically to each gene. Therefore, I think suggest that the based on the results of physicochemical analysis, it can be selected genes suitable for analysis. These results suggest that Hsp70, Hsp90, GST and TRX were played roles in biomarker for assessment of the health of tidal flats.
Previous studies have demonstrated that oxidative stress involving generation of reactive oxygen species (ROS) is responsible for the cytotoxic action of $TNF{\alpha}$. Protective effect of small heat shock proteins (small HSP) against diverse oxidative stress conditions has been suggeted. Although overexpression of small hsp was shown to provide an enhanced survival of $TNF{\alpha}$-sensitive cells when challenged with $TNF{\alpha}$, neither the nature of $TNF{\alpha}$-induced cytotoxicity nor the protective mechanism of small HSP has not been completely understood. In this study, we have attempted to determine whether $TNF{\alpha}$ induces oxidative DNA damage in $TNF{\alpha}$-sensitive L929 cells. We chose to measure the level of 8-hydroxy-2'-deoxyguanosine (8 ohdG), which has been increasingly recognized as one of the most sensitive markers of oxidative DNA damage. Our results clearly demonstrated that the level of 8 ohdG increased in L929 cells in a $TNF{\alpha}$ dose-dependent manner. Subsequently, we asked whether small HSP has a protective effect on $TNF{\alpha}$-induced oxidative DNA damage. To accomplish this goal, we have stably transfected L929 cells with mouse small hsp cDNA (hsp25) since these cells are devoid of endogenous small hsps. We found that $TNF{\alpha}$-induced 8 ohdG was decreased in cells overexpressing exogenous small hsp. We also found that the cell killing activity of $TNF{\alpha}$ was decreased in these cells as measured by clonogenic survival. Taken together, results from the current study show that cytotoxic mechanism of $TNF{\alpha}$ involves oxidative damage of DNA and that overexpression of the small hsp reduces this oxidative damage. We suggest that the reduction of oxidative DNA damage is one of the most important protective mechanisms of small HSP against $TNF{\alpha}$.
Kim, Yong-Gyun;Son, Ye-Rim;Seo, Sam-Yeol;Park, Bok-Ri;Park, Jung-A
Korean journal of applied entomology
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v.51
no.3
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pp.255-263
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2012
High frequency sounds disrupt physiological processes, such as feeding behavior, development and immune responses of Spodoptera exigua. We analyzed high frequency sounds with respect to biochemical changes in S. exigua. High frequency sound (5,000 Hz, 95 dB) suppressed protein synthesis and secretion of midgut epithelium. It also significantly inhibited a digestive enzyme activity of phospholipase $A_2$. The gene expression of three different heat shock proteins and apolipophorin III was altered, particularly in midgut tissue in response to high frequency sound treatments. High frequency sound treatments significantly increased sugar and lipid levels in hemolymph plasma. These results suggest that high frequency sounds are a physiological stress that induces biochemical changes in S. exigua.
Sevoflurane postconditioning (SPostC) has been proved effective in cardioprotection against myocardial ischemia/reperfusion injury. It was also reported that heat shock protein 70 (HSP70) could be induced by sevoflurane, which played a crucial role in hypoxic/reoxygenation (HR) injury of cardiomyocytes. However, the mechanism by which sevoflurane protects cardiomyocytes via HSP70 is still not understood. Here, we aimed to investigate the related mechanisms of SPostC inducing HSP70 expression to reduce the HR injury of cardiomyocytes. After the HR cardiomyocytes model was established, the cells transfected with siRNA for HSP70 (siHSP70) or not were treated with sevoflurane during reoxygenation. The lactate dehydrogenase (LDH) level was detected by colorimetry while cell viability and apoptosis were detected by MTT and flow cytometry. Reverse transcription-quantitative polymerase chain reaction (RT-qPCR) and Western blotting were used to detect HSP70, apoptosis-, cell cycle-associated factors, iNOS, and Cox-2 expressions. Enzyme-linked immuno sorbent assay (ELISA) was used to measure malondialdehyde (MDA) and superoxide dismutase (SOD). SPostC decreased apoptosis, cell injury, oxidative stress and inflammation and increased viability of HR-induced cardiomyocytes. In addition, SPostC downregulated Bax and cleaved caspase-3 levels, while SPostC upregulated Bcl-2, CDK-4, Cyclin D1, and HSP70 levels. SiHSP70 had the opposite effect that SPostC had on HR-induced cardiomyocytes. Moreover, siHSP70 further reversed the effect of SPostC on apoptosis, cell injury, oxidative stress, inflammation, viability and the expressions of HSP70, apoptosis-, and cell cycle-associated factors in HR-induced cardiomyocytes. In conclusion, this study demonstrates that SPostC can reduce the HR injury of cardiomyocytes by inducing HSP70 expression.
Thirteen transcriptionally-fused carbon starvation mutants, derived from Pseudomonas putida ATCC 12633, were analyzed for their survivability and transcriptional induction profiles upon carbon starvation. One of these mutants, MK114, which exhibited the lowest survivability and the highest induction rate, was selected and further examined under different starvation (nitrogen and phosphate) and stress (osmolarity, H2O2, salts, alcohol, and heat) conditions. Under all tested conditions MK114 induced ${\beta}$-galactosidase activity, implying that the interrupted gene (cst114) is a general starvation and stress response gene. The rate of induction ranged from 2.6-fold for phosphate starvation to 3.7-fold for osmotic shock. The mini-Tn5 flanking DNA was cloned from the chromosome of MK114. The cloned DNA fragment exhibited carbon starvation activity, indicating that this fragment contains a carbon starvation-related promoter region. This region was partially sequenced. Possible physiological roles of Cst114 in a carbon sensing mechanism and in other stress responses are also discussed.
Objective: Present study explores the effect of hot summer period on the glycolytic rate of early post-mortem meat quality of Ghungroo and Large White Yorkshire (LWY) pig and comparative adaptability to high temperature between above breeds by shifting the expression of stress related genes like mono-carboxylate transporters (MCTs) and heat shock proteins (HSPs). Methods: Healthy pigs of two different breeds, viz., LYW and Ghungroo (20 from each) were maintained during hot summer period (May to June) with a mean temperature of about $38^{\circ}C$. The pigs were slaughtered and meat samples from the longissimus dorsi (LD) muscles were analyzed for pH, glycogen and lactate content and mRNA expression. Following 24 h of chilling, LD muscle was also taken from the carcasses to evaluate protein solubility and different meat quality measurements. Results: LWY exhibited significantly (p<0.01) higher plasma cortisol and lactate dehydrogenase concentration than Ghungroo indicating their higher sensitivity to high temperature. LD muscle from LWY pigs revealed lower initial and ultimate pH values and higher drip loss compared to Ghungroo, indicating a faster rate of pH fall. LD muscle of Ghungroo had significantly lower lactate content at 45 min postmortem indicating normal postmortem glycolysis and much slower glycolytic rate at early postmortem. LD muscle of LWY showed rapid postmortem glycolysis, higher drip loss and higher degrees of protein denaturation. Ghungroo exhibited slightly better water holding capacity, lower cooking loss and higher protein solubility. All HSPs (HSP27, HSP70, and HSP90) and MCTs (MCT1, MCT2, and MCT4) in the LD muscle of pigs inclined to increase more in Ghungroo than LWY when exposed to high temperature. Conclusion: Effect of high temperature on the variation of HSPs and MCTs may play a crucial role in thermal tolerance and adaptation to different climatic conditions, pH regulation, muscle acidification, drip loss, protein denaturation and also in postmortem meat quality development.
Heat shock proteins (HSPs) were induced in cells in the thermal stress, and the HSP90 family is one of the major classes of HSPs. Gene encoding HSPs have been characterized from various mammals and piscine. We have cloned and sequenced the HSP90 cDNA from a brain cDNA library constructed from flounder (Paralichthys oliThe result of sequence analysis shows it to be the HSP90~. The nucleotide sequence of the HSP90$\beta$ was composed of 2791 long, encoding 726 amino acid residues. The flounder hsp90$\beta$ gene showed very high sequence homology with hsp90f3 of European sea bass (96.6%), zebrafish (92.9%), Atlantic salmon (92.0%) and human (89.5%). We also constructed a phylogenetic tree based on HSP90 amino acid sequences from vertebrate species. Gene-specific primers were selected and used in RT-PCR reactions to measure the basal hsp90$\beta$ mRNA. The hsp90f3 gene is constitutively expressed at a fairly high level in all examined tissues (brain, liver, kidney, muscle, and spleen). In order to express protein of flounder hsp90$\beta$ in E. coli, we used the His-tagged pETvector. Then, the expression of flounder HSP90$\beta$ was confirmed by Western blot analysis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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