Park, Ji-Hyun;Kim, Nam-Hyung;Hosup Shim;Kim, Teoan
Proceedings of the Korean Society of Embryo Transfer Conference
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2002.11a
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pp.100-100
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2002
As an preliminary experiment for making transgenic animals producing human follicle stimulating hormone (hFSH), we tried to express recombinant hFSH gene in vitro. hFSH is a heterodimeric glycoprotein hormone produced in the anterior pituitary gland. The hormone is essential in the regulation of reproductive processes, such as follicular development and ovulation. Genes encoding the common gonadotrophin alpha subunit and FSH-specific beta subunit were inserted into retroviral vectors under the control of the rat beta actin promoter. Gene transfer to the Chinese hamster ovary (CHO) cells was done by infection of the retroviruses harvested from PT67 packaging cells transfected with recombinant retrovirus vector DNA. After selection with G4l8, PCR and RT-PCR analyses of the G4l8-resistant CHO cells showed successful transfer and expression of both ${\alpha}$ and ${\beta}$ fragments of the FSH gene.
Kim, Eun-Ju;Kim, Dong-Jun;Hwang, Hye-Yeon;Yoon, Jae-Seung;Yoon, Ye-Up;Baek, Kwang-Hee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.14
no.4
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pp.810-815
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2004
Many biological properties and the clinical potential of human interleukin-2 (hIL-2) draw much attention to its high-level expression in mammalian cells. Recombinant human IL-2 (rhIL-2) was expressed in Chinese hamster ovary (CHO) cells, using the recently developed expression system which confers position-independent expression. Stable CHO cell lines carrying several hundred amplified copies of the rhIL-2 gene were easily obtained and rhIL-2 was expressed at high levels after selection with increasing concentrations of methotrexate. Interestingly, the insertion of the transcription terminator of the human gastrin gene into the downstream region of the gene for rhIL-2 considerably increased rhIL-2 expression. Using the expression system with the transcription terminator, it was possible to get a CHO cell line expressing the rhIL-2 at a very high level, about $11.4\mug/10^6$ cell/day, which is about 6 times higher than that previously reported. The biological activity of the rhIL-2 protein purified from the cell line was also confirmed by the cell proliferation assay.
Proceedings of the Korean Society of Toxicology Conference
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2001.10a
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pp.188-188
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2001
Human cytochrome B5 (CYB5) was coexpressed with cytochrome P450 1A2 (CYP1A2), NADPH-CYP450 reductase (CYPR) and Ν-acetyltransferase 2 (NAT2) in Chinese hamster ovary (CHO) cells. The expression of four proteins was determined by Western blot analyses. The introduction of cDNAs to CHO cells were transduced via retroviral vectors. The cytotoxicity assay of 2-aminoanthracene (2-AA) and aflatoxin B$_1$were approximately 4-fold more sensitive than CYB5 free cells.(omitted)
Although the sera used in animal cell culture media provide the macromolecules, nutrients, hormones, and growth factors necessary to support cell growth, it could also be an obstacle to the production of recombinant proteins in animal cell culture systems used in many sectors of the biotechnology industry. For this reason, many research groups, including our laboratory, have been trying to develop serum-free media (SFM) or serum-supplemented media (SSM) for special or multi-purpose cell lines. The Chinese hamster ovary (CHO) cell, for example, is frequently used to produce proteins and is especially valuable in the large-scale production of pharmaceutically important proteins, yet information about its genome is lacking. Also, SFMs have only been evaluated by comparing growth patterns for cells grown in SFMs with those grown in SSM or by measuring the titer of the target protein obtained from cells grown in each type of medium. These are not reliable methods of obtaining the type of information needed to determine whether an SFM should be replaced with an SSM. We carried out a cDNA microarray analysis to evaluate MED-3, an SFM developed in our laboratory, as a CHO culture medium When CHO cells were cultured in MED-3 instead of an SSM, several genes associated with cell growth were down-regulated, although this change diminished over time. We found that the insulin-like growth factor (IGF) gene was representative of the proteins that were down-regulated in cells cultured in MED-3. When several key supplements - including insulin, transferrin, ethanolamine, and selenium - were removed from MED-3, the IGF expression was consistently down- regulated and cell growth decreased proportionately. Based on these results, we concluded that when an SFM is used as a culture medium, it is important to supplement it with substances that can help the cells maintain a high level of IGF expression. The data presented in this study, therefore, might provide useful information for the design and development of SFM or SSM, as well as for the design of genome-based studies of CHO cells to determine how they can be used optimally for protein production in pharmaceutical and biomedical research.
Park Se-Cheol;Lee Jae-Sun;Lee Byung-Kyu;Kang Heui-Il
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.34
no.1
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pp.47-51
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2006
Sodium butyrate (NaBu) is used as an enhancer for the production of recombinant proteins in Chinese hamster ovary (CHO) cells. However, NaBu is well-known for its cytotoxic effect, thereby inducing apoptosis. CHO cells which had been engineered to express a humanised anti-HBV antibody were cultured using serum-free medium, Ex-cell 301. From a seeding density of $2{\times}10^5$ cells/ml, CHO cells grown with serum-free medium reached a maximum cell density of $1.3{\times}10^6$ cells/ml after 9 days in culture and produced a maximal antibody concentration of 130 mg/l after 13 days in culture. In the perfusion culture system, CHO cells producing anti-HBV antibody grown in an 7.5 1 bioreactor seeded with $2{\times}10^5$ cells/ml reached a maximal antibody concentration of 85 mg/1 after 720 h in culture. The addition of 0.3 mM NaBu and lowering culture temperature to $33^{\circ}C$ elongated the culture period to 60 days and increased the production yield by 2-fold, compared to control culture.
Kim, Gyoo-Cheon;Lee, Dong-Wook;Shin, Eun-Joo;Um, Kyung-Il
Environmental Mutagens and Carcinogens
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v.16
no.1
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pp.19-23
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1996
This study was performed by the sister chromatid exchanges (SCEs) and micronuclei (MN) assays to investigate the adaptive response to ultraviolet light (UV) or ethyl methanesulfonate (EMS) in Chinese hamster ovary (CHO) and Sarcoma 180 (S180) cells. The pretreatment with 1 J/m$^2$ UV or 2 mM EMS decreased the frequency of SCEs induced by the treatment with 5 J/m$^2$ UV or 8 mM EMS in CHO cells. The pretreatment with UV (1 or 2 J/m$^2$) or EMS (1, 2 or 3 mM) did not affect the SCEs induced by the treatment with 7 J/m$^2$ UV or 10 mM EMS in S180 cells. On the other hand, the pretreatment with 1 J/m$^2$ UV or 2 mM EMS decreased the frequency of MN induced by the treatment with 5 J/m$^2$ UV or 8 mM EMS in CHO cells. The pretreatment with UV (1 or 2 J/m$^2$) or EMS (1, 2 or 3 mM) did not affect the frequency of MN induced by the treatment with 7 J/m$^2$ UV or 10 mM EMS in S180 cells. It is suggested that there are adaptive responses at the level of chromosome and micronuclei to UV and EMS in CHO cells.
Cell line development is the most critical and also the most time-consuming step in the production of recombinant therapeutic proteins. In this regard, a variety of vector and cell engineering strategies have been developed for generating high-producing mammalian cells; however, the cell line engineering approach seems to show various results on different recombinant protein producer cells. In order to improve the secretory capacity of a recombinant tissue plasminogen activator (t-PA)-producing Chinese hamster ovary (CHO) cell line, we developed cell line engineering approaches based on the ceramide transfer protein (CERT) and X-box binding protein 1 (XBP1) genes. For this purpose, CERT S132A, a mutant form of CERT that is resistant to phosphorylation, and XBP1s were overexpressed in a recombinant t-PA-producing CHO cell line. Overexpression of CERT S132A increased the specific productivity of t-PA-producing CHO cells up to 35%. In contrast, the heterologous expression of XBP1s did not affect the t-PA expression rate. Our results suggest that CERT-S132A-based secretion engineering could be an effective strategy for enhancing recombinant t-PA production in CHO cells.
Vascular endothelial growth factors (VEGFs) are a family of proteins that mediate angiogenesis. $VEGF_{165}$ is a VEGF-A isoform and has been extensively studied owing to its potential use in therapeutic angiogenesis. This study established Chinese hamster ovary (CHO) cells overexpressing recombinant human $VEGF_{165}$$(rhVEGF_{165})$ protein. The production rate of the established CHO cells was over 80mg/l of $rhVEGF_{165}$ protein from a 7-day batch culture process using a 7.5-l bioreactor with a 5-l working volume and serum-free medium. The $rhVEGF_{165}$ protein was purified to homogeneity from the culture supernatant using a two-step chromatographic procedure that resulted in a 48% recovery rate. The purified $rhVEGF_{165}$ protein was a glycosylated homodimeric protein with a higher molecular weight (MW) than the protein expressed from insect cells, suggesting that the glycosylation of the $rhVEGF_{165}$ protein in CHO cells differed from that in insect cells. The purified $rhVEGF_{165}$ protein in this study was functionally active with a half-maximal effective concentration of 3.8ng/ml and specific activity of $2.5{\times}10^5U/mg$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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