• 한국정보통신학회:학술대회논문집
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• 한국정보통신학회 2017년도 춘계학술대회
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• pp.700-703
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• 2017

베큘로바이러스 벡터가 uroplakin II promoter, polyhedron promoter, vesicular stomatitis virus G (VSVG), enhanced green fluorescent protein (EGFP), protein transduction domain (PTD) 등의 유전자로 재조합 되었다. 이렇게 재조합된 베큘로바이러스 벡터들은 여러가지 세포주에 감염을 시켰다. 우리는 이 재조합 벡터와 다른 대조 벡터를 비교하여 유전자 전달과 유전자 발현을 비교하였다. 그 결과 이 재조합 베큘로바이러스 벡터는 대조 벡터에 비하여 유전자 전달과 유전자 발현의 효율이 우수한 것으로 나타났다.

• 한국정보통신학회:학술대회논문집
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• 한국정보통신학회 2016년도 춘계학술대회
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• pp.711-714
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• 2016

재조합 베큘로바이러스는 cytomegalovirus (CMV) promoter, polyhedron promoter, vesicular stomatitis virus G (VSVG), enhanced green fluorescent protein (EGFP), protein transduction domain (PTD) 유전자로 구성된다. 본 재조합 베큘로바이러스 벡터는 세포주와 조직에 감염시켰고 그 결과 다른 벡터 시스템에 비교하여 재조합된 유전자의 전이와 유전자 발현에 있어서 새로운 가능성이 발견되었다. 본 재조합 베큘로바이러스 시스템의 유전자의 전이와 발현의 효율은 타 벡터시스템 보다 우수하였다.

• Animal Systematics, Evolution and Diversity
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• 제35권2호
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• pp.57-62
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• 2019

Eutima japonica Uchida, 1925, a bivalve-inhabiting hydrozoan was collected for the first time in Korea, associating with Mytilus galloprovincialis. The morphology of male medusae of this hydrozoan is clarified by culture and described as well as other developmental stages. As the present material from Korea is in good accord with that of the northern Japanese form of E. japonica, so the geographical distribution of the northern form of this species is widened, Japan, China and Korea. Green fluorescent protein distribution pattern of this medusa is also described and compared with that of the most related species Eutima sapinhoa Narchi and Hebling, 1975.

• 한국생물공학회:학술대회논문집
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• 한국생물공학회 2002년도 생물공학의 동향 (X)
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• pp.521-522
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• 2002

• 한국미생물생명공학회:학술대회논문집
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• 한국미생물생명공학회 2000년도 Proceedings of 2000 KSAM International Symposium and Spring Meeting
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• pp.172-177
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• 2000

• 한국정보통신학회논문지
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• 제18권8호
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• pp.2017-2022
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• 2014

폴리히드론 프로모터, 수포성구내염 바이러스G, 폴리A, 사이토메가바이러스 프로모터, 강화녹색형광단백질, 단백질전달부위 유전자 등을 포함한 새로운 베큘로바이러스 시스템이 제조되었다. 본 재조합벡터 시스템은 인간 섬유아세포에 적용하여 시험하였고 재조합된 유전자의 전달과 유전자 발현을 대조 벡터시스템과 비교하였다. 본 연구로부터 새롭게 제작된 본 베큘로바이러스 시스템이 유전자의 전이와 유전자 발현 면에서 대조 벡터시스템 보다 고효율을 나타내었다.

• Journal of Korean Neurosurgical Society
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• 제29권6호
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• pp.725-730
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• 2000

Purpose : The subcellular localization of E1B-19k has been known cytosol or nuclear membrane by immunohistochemical staining and could dimerize with Bax to regulate cell death also known by the in-vitro immunoprecipitation. We planed to confirm this dimerization of E1B-19k with Bax in vivo in Cos-7 cells by using green fluorescent protein. Material and Method : We cloned E1B-19k and Bax into C3-EGFP. C3-EGFP-E1B-19k, C3-EGFP-Bax, and C3-EGFP-E1B-19k and pcDNA3-Bax were transfected into Cos-7 cells. We explored location of E1B-19k and Bax, and confirmed its dimerization with Bax in transfected living healthy Cos-7 cells by following green fluorescent protein of E1B-19k on the confocal microscope. Results : E1B-19k was located diffusely in cytoplasm and in nucleus but not in mitochondria. It prevented cell death from the apoptosis by staurosporine but its location was not changed. GFP-E1B-19k is not changed its intracellular location with Bax even with staurosporine. Conclusion : These results support that E1B-19k does not localize in mitochondria nor dimerize with Bax even with staurosporine. We could anticipate E1B-19k prevent cell death via the other dimerizing partner or pathways.

• 한국수정란이식학회지
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• 제15권2호
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• pp.167-173
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• 2000

The principal objective of this study was to clone transgenic embryos in order to improve the efficiency of transgenic animal production by the combination of microinjection and nuclear transplantation techniques. Mature female New Zealand White rabbits were superovulated by eCG and hCG treatments, fllowed by natural mating. Zygotes were collected from the oviducts at 18∼22 h after hCG injection by flushing with D-PBS containing 5% fetal calf serum(FCS). Two to three picoliters of green fluorescent protein(GFP) gene wa microinjected into male pronucleus. The foreign gene-injected zygotes were cultured in TCM-199 or RD medium containing 10% FCS with a monolayer of rabbit oviductal epithelial cells in a 5% CO2 incubator. The morulae expressing GFP gene were selected and their blastomeres were separated for the use of nuclear donor. Following nuclear transplantation of fluorescence-positive morula stage blastomeres, 13 (21.3%) out of 61 fused oocytes developed to blastocyst stage and all of the cloned blastocysts expressed GFP. The results indicate that the screening of transgene in rabbit embryos by GFP detection could be a promisible method for the preselection of transgenic embryos. Also the cloning of preselected transgenic embryos by nuclear transplantatin could be efficiently applied to the multiple production of transgenic animals.

• 생명과학회지
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• 제28권12호
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• pp.1416-1423
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• 2018

Biotin에 강한 결합 친화력($K_D=10^{-14}M$)과 함께 streptavidin의 tetramer 특징은 VHH 항체를 streptavidin에 융합시키게 하여 biotinylated horseradish peroxidase를 사용하는ELISA 와Western blot analysis 등의 면역분석법에서 VHH 항체의 항원결합력을 증가시키는데 응용 가능하다. 이를 응용하기 위해 우리는 Streptomyces avidinii 염색체 DNA로부터 PCR을 통해 streptavidin유전자를 증폭하고 이를 green fluorescent protein항원에 특이적으로 결합하는 8B9 VHH 항체유전자에 융합시켰다. 대장균에서 수용성 융합단백질로 발현시키기 위해 pUC119 플라스미드에 기초한 발현시스템을 사용하였다. 즉 lacZ promoter를 사용하여 IPTG에 의해 단백질발현을 유도하게 하였으며, 아미노말단에 pelB leader를 두어 발현된 단백질의 periplasmic space로 이동하게 하여 수용성 단백질형태의 분비를 촉진하였으며 카르복시말단에 6개의 polyhistidine tags를 두어 $Ni^+$-NTA-agarose column을 사용하여 발현된 단백질을 정제하였다. Streptavidin이 biotin에 강하게 결합함으로 대장균에 독성을 나타냄에도 불구하고 본 수용성 융합단백질은 성공적으로 발현되었다. SDS-PAGE에서 가열하는 경우 변성되어 30.6 kDa를, 가열하지 않는 경우에는 자연 상태의 122.4 kDa을 나타내었다. 이는 8B9 VHH항체에 융합된 streptavidin moiety에 의해 monomer subunit가 비공유결합으로 tetramerization됨을 제시해준다. 또한 본 융합단백질은 ELISA와 Westernblot analysis에서 보여진 것처럼 parental streptavidin과 유사한 biotin결합력과 green fluorescent protein항원 결합력을 모두 나타내었다. 결론적으로 streptavidin에 융합된 8B9 VHH 항체형태의 융합단백질은 대장균에서 수용성 tetramer로 성공적으로 발현 및 정제되었으며 biotin과 green fluorescent protein 항원에 동시에 결합함으로써 tetrameric and bifunctional VHH 항체제조의 가능성을 제시해주었다.

• 한국잠사곤충학회지
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• 제51권2호
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• pp.153-158
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• 2013

본 연구의 목적은 누에형질전환 기술을 이용하여 녹색형광실크를 개발하는 것으로서, 본 실험에서는 피브로인 H-chain의 N-말단과 C-말단을 이용하여 피브로인 재조합 단백질 발현 시스템을 제작하였고, 종결코돈이 없는 EGFP 유전자를 위의 발현 시스템에 클로닝하여 녹색형광실크를 제작하였다. 누에형질전환체 선발을 위해서는 3xP3 promoter와 DsRed2를 이용하여 선발하였고, 1200 개의 누에알에 microinjection 하여 F1 세대에서 8 bloods의 형질전환체를 선발하였다. 선발된 누에형질전환체는 초기배 단계의 눈과 신경조직, 유충과 번데기 그리고 성충의 눈에서 DsRed2 형광단백질이 발현되는 것을 확인 할 수 있었다. 또한 실크의 피브로인에서 EGFP 단백질이 발현되는 것을 확인하기 위해, F2세대의 누에형질전환체 중에서 5령 3일 유충을 해부하여 견사선을 형광현미경으로 관찰하였고, 중부와 후부 견사선에서 형광단백질이 발현되는 것을 확인할 수 있었다. 그리고 F2 세대의 고치와 저온에서 정련한 실크에서도 녹색형광단백질의 발현을 확인할 수 있었고, Western blot 분석에서도 EGFP 재조합 단백질이 피브로인 H-chain과 융합된 형태로 존재하는 것이 확인되었다. 이상의 결과에서 녹색형광실크를 생산하는 누에형질전환체가 성공적으로 제작 되었음을 확인할 수 있었고 이러한 결과를 토대로 새로운 산업소재로서 실크를 활용할 수 있을 것으로 기대한다.