Recently, production of transgenic animal by nuclear transfer has been known as a useful method. The production of cloned offspring derived from nuclear transfer depends upon a variety of factors such as species, donor cells type and cell cycle, and source of recipient ova. Therefore, we attempted a different transgenic methods using follicular granulosa cells (GCs). In general, ovulated GCs undergoes lutenization and transformation in vitro which might defective effects on developmental potential. In order to avoid the GCs transformation in vitro culture system, we introduced a direct injection of retrovirus into the follicles and then collected them mechanically from ovaries of 6-8 week-old ICR mice. Retrovirus vector constructed with pLN $\beta$ EGFP was injected into the follicles. The follicles are cultured in $\alpha$ -MEM supplemented with human FSH, LH and ITS in Costar Transwell dish for 4 days. Survival rate of virus injected follicles was 52.1% (12/23) and expression rate of EGPP gene was 33.3% (4/12). In this study, we found GCs performed transgenesis in our culture system. In addition, the GCs in follicle may be developed in vivo like environment rather than in vitro environment. Thus, the use of GCs as donor cells may be useful in the nuclear transfer for cloning of genetic modification. Therefore, these results suggest that follicular GCs can be transfected by viral vector during folliculogenesis in vitro.
Objective: MicroRNAs (miRNAs) are the most abundant small RNAs. Approximately 2,000 annotated miRNAs genes have been found to be differentially expressed in ovarian follicles during the follicular development (FD). Many miRNAs exert their regulatory effects on the apoptosis of follicular granulosa cells (FGCs) and FD. However, accurate roles and mechanism of miRNAs regulating apoptosis of FGCs remain undetermined. Methods: In this review, we summarized the regulatory role of each miRNA or miRNA cluster on FGCs apoptosis and FD on the bases of 41 academic articles retrieved from PubMed and web of science and other databases. Results: Total of 30 miRNAs and 4 miRNAs clusters in 41 articles were reviewed and summarized in the present article. Twenty nine documents indicated explicitly that 24 miRNAs and miRNAs clusters in 29 articles promoted or induced FGCs apoptosis through their distinctive target genes. The remaining 10 miRNAs and miRNAs of 12 articles inhibited FGCs apoptosis. MiRNAs exerted modulation actions by at least 77 signal pathways during FGCs apoptosis and FD. Conclusion: We concluded that miRNAs or miRNAs clusters could modulate the apoptosis of GCs (including follicular GCs, mural GCs and cumulus cells) by targeting their specific genes. A great majority of miRNAs show a promoting role on apoptosis of FGCs in mammals. But the accurate mechanism of miRNAs and miRNA clusters has not been well understood. It is necessary to ascertain clearly the role and mechanism of each miRNA or miRNA cluster in the future. Understanding precise functions and mechanisms of miRNAs in FGCs apoptosis and FD will be beneficial in developing new diagnostic and treatment strategies for treating infertility and ovarian diseases in humans and animals.
In order to study the follicular atretic mechanism in mammalian ovary, the relationship between pyknotic index (PI) of granulosa cells and the steroid concentrations in the follicular fluid of atretic follicle was investigated. Follicles were isolated from porcine ovary according to their sizes and the reproductive phases. Steroid concentrations were quantified by high-performance liquid chromatography. As PI increased, the concentration of progesterone was significantly increased(p<0.05), whereas testosterone and estradiol showed no significant changes in their concentration. As follicular size was increased, PI of follicular GC in the luteal phase was increased significantly(p<0.05) and the molar ratio of progesterone to testosterone was increased in the follicles of follicular phase. It can be concluded that progesterone accumulated in the follicular fluid as atresia of the follicles was progressed, and that PI of granulosa cells could be used as one of convenient and pratical criteria for the identification of follicular atresia.
In mammal, lots of follicles start simultaneously their growth but only a few oocytes are ovulated in every sexual cycles. Most of matured and grown oocytes are destined to degenerate by atresia. However, the molecular and physiological mechanisms are not elucidated yet. The present study was designed to establish an induction method of follicular atresia with ketamine or pentobarbitone and evaluate the effect of these anesthetics on oocyte maturation and granulosa cell apoptosis of the mouse ovarian follicle. The percentages of degenerated oocyte and apoptotic granulosa cell in ketamine treated groups were significantly higher than that in controls (58.9% vs 33.5%, p<0.01, degeneration; 44.9% vs 26.6%, p<0.01, apotosis). Futhermore, it was revealed that the concentrations of progesterone in both groups were markedly higher than that in control. In cunclusion, it is considered that ketamine induce an atresia as pentobarbitone, and may be useful for inducing follicular atresia.
Endothelin 2 (EDN2) induces follicular rupture by constricting periovulatory follicles. In this study, it was investigated the mechanisms of EDN2 action on follicular rupture with respect of receptor using the conditionally granulosa cell specific EDN2 receptor type A (ETa) KO mice (gcETaKO; $ETa^{flox/-}{\cdot}Amhr2^{Cre}$). It was generated the gcETaKO mice by breeding with $ETa^{flox/-}$ mice after mono-alleic ETa knockout by $ZP3^{Cre}$ and $Amhr2^{Cre}$ mice. Fertility, ovulation and maturation rates of ovulated oocytes after super ovulation were investigated in the gcETaKO mice compared with wild-type mice ($ETa^{flox/flox}$ and $ETa^{flox/-}$) as a control group. In the gcETaKO mice, normal fertility after breeding with male mice was shown compared with wild-type mice. And, there was no significant differences in ovulation rates after super ovulation, however its maturation rates was lower than that of wild type mice. These findings show that EDN2 in follicular rupture for ovulation is related with an other ETa not in granulosa cells. Further studies are needed to investigate how EDN2 is acted in ovarian follicular rupture for ovulation.
생쥐 난소에서 glucosamine-6-phosphate deaminase (GNPDA)의 발현을 조사하였다. Western blot상에서 Mr. 31 kDa의 항원을 검출하였으며 출생 후2주에 급격한 발현의 증가가 확인되었다. 난소절편의 면역염색 결과 협막세포와 간충조직에서는 균질한 발현을 보인 반면 난포내 발현양상은 난포의 발달에 따라 다르게 나타났다. 일부 1차 난포의 난자에서 GNPDA의 발현이 관찰되었으나 강소형성 난포의 난자에서는 관찰되지 않았다. 황체화 과립세포에서의 발현은 황체발달에 따라 증가하였으며 황체퇴화 부위에서 강한 신호가 검출되었다. 난포발달에 따른 GNPDA발현의 차이는 GNPDA가 생쥐 난소 조직 재구성에 관여하고 있음을 암시한다.
Objective: Mammalian follicle cells are the most important somatic cells which help oocytes grow, mature and ovulate and thus are believed to provide oocytes with various functional and structural components. In the present study we have examined whether cumulus or granulosa cells might playa role in establishing the plasma membrane structure of mouse oocytes during meiotic maturation. Design: In particular the differential resistances of mouse oocytes against chymotrypsin treatment were examined following culture with or without cumulus or granulosa cells, or in these cell-conditioned media. Results: When mouse denuded oocytes, freed from their surrounding cumulus cells, were cultured in vitro for $17{\sim}18hr$ and then treated with 1% chymotrypsin, half of the oocytes underwent degeneration within 37.5 min ($t_{50}=37.5{\pm}7.5min$) after the treatment. In contrast cumulus-enclosed oocytes showed $t_{50}=207.0$. Similarly, when oocytes were co-cultured with cumulus cells which were not associated with the oocytes but present in the same medium, the $t_{50}$ of co-cultured oocytes was $177.5{\pm}13.1min$. Furthermore, when oocytes were cultured in the cumulus cell-conditioned medium, $t_{50}$ of these oocytes was $190.0{\pm}10.8min$ whereas $t_{50}$ of the oocytes cultured in M16 alone was $25.5{\pm}2.9min$. Granulosa cell-conditioned medium also increased the resistance of oocytes against chymotrypsin treatment such that $t_{50}$ of oocytes cultured in granulosa cell-conditioned medium was $152.5{\pm}19.0min$ while that of oocytes cultured in M16 alone was $70.0{\pm}8.2min$. To see what molecular components of follicle cell-conditioned medium are involved in the above effects, the granulosa cell-conditioned medium was separated into two fractions by using Microcon-10 membrane filter having a 10 kDa cut-off range. When denuded oocytes were cultured in medium containing the retentate, $t_{50}$ of the oocytes was $70.0{\pm}10.5min$. In contrast, $t_{50}$ of the denuded oocytes cultured in medium containing the filtrate was $142.0{\pm}26.5min$. $T_{50}$ of denuded oocytes cultured in medium containing both retentate and filtrate was $188.0{\pm}13.6min$. However, $t_{50}$ of denuded oocytes cultured in M16 alone was $70.0{\pm}11.0min$ and that of oocytes cultured in whole granulosa cell-conditioned medium was $156.0{\pm}27.9min$. When surface membrane proteins of oocytes were electrophoretically analyzed, no difference was found between the protein profiles of oocytes cultured in M16 alone and of those cultured in the filtrate. Conclusions: Based upon these results, it is concluded that mouse follicle cells secrete a factor(s) which enhance the resistance of mouse oocytes against a proteolytic enzyme treatment. The factor appears to be a small molecules having a molecular weight less than 10 kDa.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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