E. coli에서 글루타치온 생산 증가를 위해서 E. coli에서 분리한 gehI과 gshII유전자를 함유하고 있는 여러 재조합 플라스미드를 구성하여 도입하였다.pBR325 벡터에 gehI 유전자를 각각 1-3개를 포함한 재조합 플라스미드 및 gehI과 gehII 유전자를 동시에 갖는 재조합 플라스미드를 구성하였다. 계속적으로 반복된 gehI 유전자가 증폭된 E. colidml $\gamma $-gluramylcysteine synthetase의 효소활성은 삽입된 gehI 유전자의 부에 따라 증가하였다. 구성된 재조합 플라스미드를 함유한 E.coli의 글루타치온 생산능을 accetate kinase반응을 ATP재생계로 사용하여 조사한 결과 반복된 gehI 유전자를 함유한 E.coli의 글루타치온 생산능력은 삽입된 gehI 유전자의 수에 비례한여 증가하였으며, gehI 유전자의 추가적인 도입에 의해 글루타치온 생산능력은 2배 증가하였다. E.coli에서 글루타치온의 효소적 생산은 주로 \gamma $-gluramylcysteine synthetase의 효소활성에 의해 영향을 받았다. 가장 높은 글루타치온 생산능은 pGH501 (pUC8-gsh.I.II.III) 플라스미드를 갖는 균주에서 관찰되었다.
To explore the effect of monosodium-L-glutamate(MSG) on CCI$_{4}$-damaged liver in Wister male rat, 5% MSG solution as drink water were administered after S.C. injection of 0.1 mg/kg CC1$_{4}$ twice a week for 4 weeks. After last administration of MSG, heptic glutathione(GSH) dependent system was assayed. It showed that MSG increased significanly hepatic glutathione(GSH) and glutathione peroxidase(GSH$_{px}$), but decreased glutathione-S-transferase(GST) acivity in normal rats. MSG increased significantly the GSH$_{px}$ and GST activities in rats with CCI$_{4}$-induced liver damage. These results indicate that decrease of GSH dependent systems in CC1$_{4}$ liver injury might be partially elevated by coadministration of MSG.
에탄올의 급성적 및 만성적 투여가 흰쥐의 간 및 소뇌 중의 glutathione(GSH) 양상과 지질과산화물 수준에 미치는 영향을 알아 본 결과는 다음과 같다. 간조직에서는, 만성적 에탄을 투여 (6~9g/kg, per day, 10% 음료수로서, 4주간)에 의해 총 GSH 농도가 14. 5% 저하되었고, 산화형 GSH(GSSG)는 변화가 없었으며, 따라서 GSSG/총 GSH 비율은 증가하였다. 그러나 지질과산화 수준은 변함이 없었다. 급성적 에탄올 투여에 의해 간 조직 중 지질과산화 수준이 상승되고 총 GSH 농도가 감소함은 이미 보고되고 있다. 본 실험에서는 이와 관련시켜 급성적 에탄을 투여 (50mmole/kg, i.p.)후 post-hepatic 혈장 중의 총 GSH 수준을 측정한 결과 현저히 상승하였다. 이러한 GSH의 간에서 혈액으로의 유출은, GSH의 항산화적 소모 이외에도, 급성적 그리고 아마도 만성적인 에탄을 투여에 의한 간 조직 중의 총 GSH의 감소의 한 가능한 원인으로서 간접적으로나마 추정될 수 있겠다. 소뇌에서 는 급성적 에탄을 투여는 지질과산화 수준을 증가시켰으나 GSH 양상은 변화시키지 않았으면, 만성적인 경우엔 모두 변동시키지 못하였다.
It has been reported that hepatic glutathione (GSH) levels are decreased in diabetic patients, and glucagon increases hepatic efflux of GSH into blood. The signaling pathways responsible for mediating the glucagon effects on GSH efflux, however, are unknown. The signaling pathways involved in the regulation of GSH efflux in response to glucagon and insulin were examined in primary cultured rat hepatocytes. The GSH concentrations in the culture medium were markedly increased by the addition of glucagon, although cellular GSH levels are significantly decreased by glucagon. Insulin was also increased the GSH concentrations in the culture medium, but which is reflected in elevations of both cellular GSH and protein. Treatment of cells with 8-bromo-cAMP or dibutyryl-cAMP also resulted in elevation of the GSH concentrations in the culture medium. Pretreatment with H89, a selective inhibitor of protein kinase A, before glucagon addition markedly attenuated the glucagon effect. These results suggest that glucagon changes GSH homeostasis via elevation of GSH efflux, which may be responsible for decrease in hepatic GSH levels observed in diabetic condition. Furthermore, the present study implicates cAMP and protein kinase A in mediating the effect of glucagon on GSH efflux in primary cultured rat hepatocytes.
Kim, Choong-Yong;Yun, Choong-Soon;Park, Dae-Hun;Choi, Woo-Sung;Kim, Jin-Suk
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제1권2호
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pp.221-224
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1997
Effects of melatonin on hepatic glutathione-peroxidase (GSH-Px) and glutathione-reductase (GSH-reductase) activities were studied in Sprague-Dawley (SD) rats administered i.p. (10 mg/kg body weight) with melatonin during 15 days. The activity of cytosolic GSH-reductase in the liver was not changed by melatonin. However, melatonin injection increased significantly the activity of liver cytosolic GSH-Px activity compared with those in saline-treated rats. At the same time, plasma GSH-Px was also increased significantly in melatonin-treated rats. Since GSH-Px, a major antioxidative enzyme, removes $H_2O_2$ and lipid peroxides which are formed during lipid peroxidation from cellular membrane, such elevation of heptatic GSH-Px activity may contribute to the improvement of antioxidative effects under oxidative damage in the liver.
The treatmene of V79 cells with diethyl maleate (DEM) led to decrease in glutathione (GSH) level as increasing DEM concentration. Mercuric chloride, treated for 6 hrs with 2ng/ml, affected the GSH metabolizing enzymes glutathione S-transferase (GST) and glutathione peroxidase (GSP), dropping their activities to 60% and 75%, respectively, though not so much in GSH level(80%). However, the toxic effects of mercuric chloride on those enzymes and GSH level were both amplified when the Hg2+ treatment was combined with the preceding DEM treatment.
In this paper, we describe a new method for the selective extraction and quantification of glutathione (GSH) using matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry (MALDI-TOF MS) and maleimide-presenting gold nanoparticles (Mal-AuNPs). Our strategy utilizes the Michael addition to selectively extract GSH, from chosen samples, onto the maleimide of Mal-AuNPs. After the extraction step, the GSH bound to the AuNPs was analyzed by MALDI-TOF MS in the presence of an internal standard which was prepared by reacting Mal-AuNPs with isotope-labeled GSH ($GSH^*$). The $GSH^*$ has the same structure as GSH but a higher molecular weight, and therefore, enables absolute quantification of GSH by comparing the mass signal intensities of the GSH- and $GSH^*$-conjugated alkanethiols. Our strategy was verified by analyzing GSH-spiked fetal bovine serum and NIH 3T3 cells.
Glutathione (GSH) is an important factor in determining tolerance against oxidative stress in living organisms. It is synthesized in two sequential reactions catalyzed by ${\gamma}$-glutamylcysteine synthetase (GCS) and glutathione synthetase (GS) in the presence of ATP. In this work, the effects of three different oxidative stresses were examined on GSH content and GSH-related enzyme activities in the fission yeast Schizosaccharomyces pombe. GSH content in S. pombe was significantly enhanced by treatment with hydrogen peroxide, ${\beta}$-naphthoflavone (BNF) and tert-butylhydroquinone (BHQ). Simultaneously, they greatly induced GCS and GS activity. However, they did not have any effects on glutathione reductase activity. These results suggest that GCS and GS activities in S. pombe are up-regulated by oxidative stress.
Glutathione (GSH)은 직접적으로 활성산소종을 제거하거나 GSH peroxidase와 같은 활성산소종 제거 효소의 조효소로써, 산화적 스트레스로부터 세포를 방어하는 데 중요한 역할을 한다. GSH peroxidase는 두 분자의 GSH을 이용해 세포 내 과산화수소를 물로 전환한다. $N$-acetyl-L cysteine (NAC)는 항산화제 중 하나로 세포 내 GSH의 전구물질로 이용된다. 본 연구는, 0mM에서 20mM의 NAC 단독 처리 또는 100 Gy 감마선과 복합 처리한 효모세포에서 GSH peroxidase를 코드화(encoding)하는 유전자인 $GPX1$과 $GPX2$의 전사적 발현을 통해 GSH, NAC와 GSH peroxidase의 연관성을 알아보았다. $GPX1$과 $GPX2$의 전사적 발현은 NAC와 100 Gy 감마선에 의해 유도되었다. 조사된 효모세포에서 NAC의 증가 농도에 따라 GSH peroxidase 두 유전자의 발현은 감소되었다. 이러한 결과로, NAC에 의해 증가된 세포 내 GSH는 GSH peroxidase 유전자의 전사적 발현을 유도하며, NAC는 감마선으로부터 생성된 활성산소종 직접적 제거와 GSH peroxidase 유전자의 전사적 발현을 유도함으로써 세포를 보호할 수 있다는 것이 밝혀졌다.
식물배양세포의 항산화기구를 이해하기 위하여 다양한 유도조건에서 확립된 24종의 세포주를 대상으로 환원형 (GSH)과 산화형 (GSSG)의 glutathione 함량을 조사하였다. 배양세포의 전체 glutathione 함량 ($\mu$g/g cell fresh wt)은 98$\pm$27로 식물종에 따라 큰 차이가 없었다. 배양세포의 환원형 GSH과 산화형 GSSG의 평균함량 ($\mu$g/g fr wt)은 각각 72$\pm$20와 26$\pm$10을 나타내었다. 배양세포의 전체 glutathione 중에서 평균 환원형 GSH는 약 73%를 차지하였다. 황금 (Scutellaria baicalensis)배양세포의 현탁배양에 따른 GSH 함량 ($\mu$g/g cell fresh wt)은 계대배양부터 대수증식기까지는 계속하여 감소하여 세포생장 정지기인 배양후 13일에는 84까지 감소한 후 다시 증가하였다가 배양후기에는 크게 감소하였다. 한편 GSSG의 함량 ($\mu$g/g cell fresh wt)은 오히려 대수증식기까지는 증가하여 배양후 13일에는 31을 나타내었고 배양후기인 25일에는 48로 오히려 산화형 GSSG의 비율이 높았다. 이러한 결과는 GSH와 GSSG의 비율이 배양세포의 생장과 항산화기구에 주요하게 관여하고 있음을 시사한다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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