Microsatellites or simple sequence repeats are motifs of 1 to 6 nucleotides in length present in both coding and non-coding regions of DNA. These are found widely distributed in the whole genome of prokaryotes, eukaryotes, bacteria, and viruses and are used as molecular markers in studying DNA variations, gene regulation, genetic diversity and evolutionary studies, etc. However, in vitro microsatellite identification proves to be time-consuming and expensive. Therefore, the present research has been focused on using an in-house built java pipeline to identify, analyse, design primers and find related statistics of perfect and compound microsatellites in the seven complete genome sequences of coronavirus, including the genome of coronavirus disease 2019, where the host is Homo sapiens. Based on search criteria among seven genomic sequences, it was revealed that the total number of perfect simple sequence repeats (SSRs) found to be in the range of 76 to 118 and compound SSRs from 01 to10, thus reflecting the low conversion of perfect simple sequence to compound repeats. Furthermore, the incidence of SSRs was insignificant but positively correlated with genome size (R2 = 0.45, p > 0.05), with simple sequence repeats relative abundance (R2 = 0.18, p > 0.05) and relative density (R2 = 0.23, p > 0.05). Dinucleotide repeats were the most abundant in the coding region of the genome, followed by tri, mono, and tetra. This comparative study would help us understand the evolutionary relationship, genetic diversity, and hypervariability in minimal time and cost.
We sequenced the whole mitochondrial genome of Dendronephthya gigantea (Anthozoa: Octocorallia: Nephteidae), the first mitochondrial genome sequence report in the Family Nephtheidae. The mitochondrial genome of D. gigantea was 18,842 bp in length, and contained 14 protein coding genes (atp6 and 8, cox1-3, cytb, nd1-6 and 4L, and msh1), two ribosomal RNAs, and only one transfer RNA. The gene content and gene order is identical to other octocorals sequenced to date. The portion of the noncoding regions is slightly larger than the other octocorals (5.08% compared to average 3.98%). We expect that the information of gene content, gene order, codon usage, noncoding region and protein coding gene sequence could be used in the further analysis of anthozoan phylogeny.
Besides single-nucleotide variants in the human genome, large-scale genomic variants, such as copy number variations (CNVs), are being increasingly discovered as a genetic source of human diversity and the pathogenic factors of diseases. Recent experimental findings have shed light on the links between different genome architectures and CNV mutagenesis. In this review, we summarize various genomic features and discuss their contributions to CNV formation. Genomic repeats, including both low-copy and high-copy repeats, play important roles in CNV instability, which was initially known as DNA recombination events. Furthermore, it has been found that human genomic repeats can also induce DNA replication errors and consequently result in CNV mutations. Some recent studies showed that DNA replication timing, which reflects the high-order information of genomic organization, is involved in human CNV mutations. Our review highlights that genome architecture, from DNA sequence to high-order genomic organization, is an important molecular factor in CNV mutagenesis and human genomic instability.
Pseudomonas amygdali is a hemibiotrophic phytopathogen that causes disease in woody and herbaceous plants. Complete genomes of four P. amygdali pathovars were comparatively analyzed to decipher the impact of genomic diversity on host colonization. The pan-genome indicated that 3,928 core genes are conserved among pathovars, while 504-1,009 are unique to specific pathovars. The unique genome contained many mobile elements and exhibited a functional distribution different from the core genome. Genes involved in O-antigen biosynthesis and antimicrobial peptide resistance were significantly enriched for adaptation to hostile environments. While the type III secretion system was distributed in the core genome, unique genomes revealed a different organization of secretion systems as follows: type I in pv. tabaci, type II in pv. japonicus, type IV in pv. morsprunorum, and type VI in pv. lachrymans. These findings provide genetic insight into the dynamic interactions of the bacteria with plant hosts.
Rumen microbiology research has undergone several evolutionary steps: the isolation and nutritional characterization of readily cultivated microbes; followed by the cloning and sequence analysis of individual genes relevant to key digestive processes; through to the use of small subunit ribosomal RNA (SSU rRNA) sequences for a cultivation-independent examination of microbial diversity. Our knowledge of rumen microbiology has expanded as a result, but the translation of this information into productive alterations of ruminal function has been rather limited. For instance, the cloning and characterization of cellulase genes in Escherichia coli has yielded some valuable information about this complex enzyme system in ruminal bacteria. SSU rRNA analyses have also confirmed that a considerable amount of the microbial diversity in the rumen is not represented in existing culture collections. However, we still have little idea of whether the key, and potentially rate-limiting, gene products and (or) microbial interactions have been identified. Technologies allowing high throughput nucleotide and protein sequence analysis have led to the emergence of two new fields of investigation, genomics and proteomics. Both disciplines can be further subdivided into functional and comparative lines of investigation. The massive accumulation of microbial DNA and protein sequence data, including complete genome sequences, is revolutionizing the way we examine microbial physiology and diversity. We describe here some examples of our use of genomics- and proteomics-based methods, to analyze the cellulase system of Ruminococcus flavefaciens FD-1 and explore the genome of Ruminococcus albus 8. At Illinois, we are using bacterial artificial chromosome (BAC) vectors to create libraries containing large (>75 kbases), contiguous segments of DNA from R. flavefaciens FD-1. Considering that every bacterium is not a candidate for whole genome sequencing, BAC libraries offer an attractive, alternative method to perform physical and functional analyses of a bacterium's genome. Our first plan is to use these BAC clones to determine whether or not cellulases and accessory genes in R. flavefaciens exist in clusters of orthologous genes (COGs). Proteomics is also being used to complement the BAC library/DNA sequencing approach. Proteins differentially expressed in response to carbon source are being identified by 2-D SDS-PAGE, followed by in-gel-digests and peptide mass mapping by MALDI-TOF Mass Spectrometry, as well as peptide sequencing by Edman degradation. At Ohio State, we have used a combination of functional proteomics, mutational analysis and differential display RT-PCR to obtain evidence suggesting that in addition to a cellulosome-like mechanism, R. albus 8 possesses other mechanisms for adhesion to plant surfaces. Genome walking on either side of these differentially expressed transcripts has also resulted in two interesting observations: i) a relatively large number of genes with no matches in the current databases and; ii) the identification of genes with a high level of sequence identity to those identified, until now, in the archaebacteria. Genomics and proteomics will also accelerate our understanding of microbial interactions, and allow a greater degree of in situ analyses in the future. The challenge is to utilize genomics and proteomics to improve our fundamental understanding of microbial physiology, diversity and ecology, and overcome constraints to ruminal function.
Revolutionary advancements, such as the reduction in DNA sequencing costs and genome editing, have transformed biotechnology, fostering progress in manipulating biomolecules, engineering cells, and computational biology. Agriculture and food production have significantly benefited from tools like high-throughput microarrays, accelerating the selection of desired traits. Genetic engineering, especially utilizing genome editing, facilitates precise alterations in plants and animals, harnessing microbiomes and fostering lab-grown meat production to alleviate environmental pressures. The emergence of new biotechnologies, notably genome editing, underscores the necessity for regulatory frameworks governing LM (living modified) organisms. Global regulations overseeing genetically engineered or genome-edited (GE) organisms, encompassing animals, exhibit considerable diversity. Nonetheless, prevailing international regulatory trends typically exclude genomeedited plants and animals, employing novel biotechnological techniques, from GMO/ LMO classification if they lack foreign genes and originate through natural mutations or traditional breeding programs. This comprehensive review scrutinizes ongoing risk and safety assessment cases, such as genome-edited beef cattle and fish in the USA and Japan. Furthermore, it investigates the limitations of existing regulations related to genome editing in Korea and evaluates newly proposed legislation, offering insights into the future trajectory of regulatory frameworks.
MUG1 is a MULE transposon-related domesticated gene in plants. We assessed the sequence diversity, neutrality, expression, and phylogenetics of the MUG1 gene among Oryza ssp. We found MUG1 expression in all tissues analyzed, with different levels in O. sativa. There were 408 variation sites in the 3886 bp of MUG1 locus. The nucleotide diversity of the MUG1 was higher than functionally known genes in rice. The nucleotide diversity (${\pi}$) in the domains was lower than the average nucleotide diversity in whole coding region. The ${\pi}$ values in nonsynonymous sites were lower than those of synonymous sites. Tajima D and Fu and Li $D^*$ values were mostly negative values, suggesting purifying selection in MUG1 sequences of Oryza ssp. Genome-specific variation and phylogenetic analyses show a general grouping of MUG1 sequences congruent with Oryza ssp. biogeography; however, our MUG1 phylogenetic results, in combination with separate B and D genome studies, might suggest an early divergence of the Oryza ssp. by continental drift of Gondwanaland. O. long-istaminata MUG1 divergence from other AA diploids suggests that it might not be a direct ancestor of the African rice species.
본 논문에서는 한국인 만성 치주염 환자의 치은연하치태에서 분리된 Veillonella atypica KHUD-V1의 유전체 서열을 보고한다. 다른 V. atypica 균주와 달리, KHUD-V1에서는 프로 파지 및 이와 관련된 것으로 추정되는 여러 병독성 인자가 확인되었다. V. atypica KHUD-V1 균주 및 이 균주의 유전체 서열정보는 Veillonella의 유전체 다양성을 진화론적 관점에서 이해하고, V. atypica의 병독성 및 유전적 다양성에 기여하는 프로파지의 역할을 연구하는데 유용할 것이다.
Kim, Inseo;Park, Jee Young;Lee, Yun Sun;Joh, Ho Jun;Kang, Shin Jae;Murukarthick, Jayakodi;Lee, Hyun Oh;Hur, Young-Jin;Kim, Yong;Kim, Kyung Hoon;Lee, Sang-Choon;Yang, Tae-Jin
Plant Breeding and Biotechnology
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제5권3호
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pp.243-251
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2017
Rhus chinensis is a shrub widely distributed in Asia. It has been used for traditional medicine and ecological restoration. Here, we report the complete chloroplast genome sequence of two R. chinensis genotypes collected from China and Korea. The assembled chloroplast genome of Chinese R. chinensis is 149,094 bp long, consisting of a large single copy (97,246 bp), a small single copy (18,644 bp) and a pair of inverted repeats (16,602 bp). Gene annotation revealed 77 protein coding genes, 30 tRNA genes, and 4 rRNA genes. A phylogenomic analysis of the chloroplast genomes with 11 known complete chloroplast genomes clarified the relationship of R. chinensis with the other plant species in the Sapindales order. A comparative chloroplast genome analysis identified 170 SNPs and 85 InDels at intra-species level of R. chinensis between Chinese and Korean collections. Based on the sequence diversity between Korea and Chinese R. chinensis plants, we developed three DNA markers useful for genetic diversity and authentication system. The chloroplast genome information obtained in this study will contribute to enriching genetic resources and conservation of endemic Rhus species.
The microbial diversity in soil ecosystems is higher than in any other microbial ecosystem. The majority of soil microorganisms has not been characterized, because the dominant members have not been readily culturable on standard cultivation media; therefore, the soil ecosystem is a great reservoir for the discovery of novel microbial enzymes and bioactivities. The soil metagenome, the collective microbial genome, could be cloned and sequenced directly from soils to search for novel microbial resources. This review summarizes the microbial diversity in soils and the efforts to search for microbial resources from the soil metagenome, with more emphasis on the potential of bioprospecting metagenomics and recent discoveries.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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