Bacterial infections in the female reproductive tract negatively affect ovarian function, follicular development, and embryo development, leading to the eventual failure of fertilization. Moreover, bacterial lipopolysaccharides (LPS) can interfere with the immune system and reproductive system of the host animal. Therefore, this study examined the effect of LPS on the in vitro maturation (IVM) of pig oocytes. Oocytes were matured in TCM199 medium in the presence of varying concentrations of LPS (0 - 50 ㎍·mL-1). The maturation rate, cortical granules (CGs) migration, and chromosome alignment were subsequently evaluated during the meiotic development of the oocytes. We observed a dose-dependent and significant decrease in the metaphase II (MII) rate with increasing concentrations of LPS (97.6% control [0 ㎍·mL-1 LPS] vs. 10.4-74.9% LPS [1 - 50 ㎍·mL-1], p < 0.05). In addition, compared to the control oocytes without LPS, higher levels of abnormal CGs distribution (18.1 - 50.0% LPS vs. 0% control), chromosome/spindle alignment (20.3 - 56.7% LPS vs. 0% control), and intracellular ROS generation were observed in oocytes matured with LPS (p < 0.05). Nitrite levels were also increased in the maturation medium derived from the oocytes matured with LPS (p < 0.05). These results indicate that LPS induces oxidative stress during IVM and affects oocyte maturation, including CGs migration and chromosome alignment of pig oocytes.
Background: Compared to medium containing 108 mM sodium chloride (NaCl), in vitro maturation (IVM) using a simple medium with reduced (61.6 mM) NaCl increases the cytoplasmic maturation and embryonic development of pig oocytes. Objectives: This study determines the effect of a complex medium containing reduced NaCl on the IVM and embryonic development of pig oocytes. Methods: Pig oocytes were matured in Minimum Essential Medium Eagle-alpha modification (αMEM) supplemented with 61.6 (61αMEM) or 108 (108αMEM) mM NaCl, and containing polyvinyl alcohol (PVA) (αMEMP) or pig follicular fluid (PFF) (αMEMF). Medium-199 (M199) served as the control for conventional IVM. Cumulus cell expansion, nuclear maturation, intra-oocyte glutathione (GSH) contents, size of perivitelline space (PVS), and embryonic development after parthenogenesis (PA) and somatic cell nuclear transfer (SCNT) were evaluated after IVM. Results: Regardless of PVA or PFF supplementation, oocytes matured in 61αMEM showed increased intra-oocyte GSH contents and width of PVS (p < 0.05), as well as increased blastocyst formation (p < 0.05) after PA and SCNT, as compared to oocytes matured in 108αMEMP and M199. Under conditions of PFF-enriched αMEM, SCNT oocytes matured in 61αMEMF showed higher blastocyst formation (p < 0.05), compared to maturation in 108αMEMF and M199, whereas PA cultured oocytes showed no significant difference. Conclusions: IVM in αMEM supplemented with reduced NaCl (61.6 mM) enhances the embryonic developmental competence subsequent to PA and SCNT, which attributes toward improved oocyte maturation.
In the present study, it was aimed to find the role of calcium on the maturation of mouse follicular oocytes as well as for the role of calcium inhibitors, $Ni^{2+}$ and $La^{3+}$. Mouse follicular oocytes were cultivated in different media at $37^{\circ}C$, in 100% humidified $CO_2$ incubator for 3 and 17 hrs. The results were as follows; 1. There was no differences in GVBD between the control and experimental groups during the 3 hr culture. 2. Mouse oocytes were matured to higher rate in MHBS rather than HTF for 17 hr culture. 3. Maturation rate was significantly lower in $Ca^{2+}$-free and $Ca^{2+}$ 0.4 mM which were tested, compared to other calcium concentration used in the present study. 4. Calcium inhibitor, $Ni^{2+}$, it showed highest degeneration rate at all calcium concentrations and additionally in $Ni^{2+}$$100{\mu}M$ treated group next. Maturation rate was significantly decrease as the $Ca^{2+}$ inhibitor concentration increased. 5. In all Lanthanum treated groups of calcium-free, degeneration were significantly high treated groups at 0.4 mM $Ca^{2+}$ concentrations degeneration rates of all group were significantly lower than that of the control but maturation rates were not significantly different in any group. In lanthanum $100{\mu}M$ treated group at 0.4 mM and 0.8 mM calcium concentration, its maturation rate was significantly higher than that of the control. Maturation rates of all groups of lanthanum treated at 1.71 mM calcium concentration were not significantly different among groups. 6. In the calcium treated group (0.4mM-1.7 mM), the presence of phosphate does not seem to be needed for oocyte maturation. However, the presence of phosphate at $Ca^{2+}$ 0.8 mM only seems to stimulated maturation.
It has been suggested that the presence of periovarian adhesions might impair the ovarian response to gonadotropins. Total 136 patients who underwent IVF-ET from February to June 1988(88-1 and 88-2 series) at SNUH were classified into three groups according to total ovarian access score, sum of each ovarian availability, estimated by diagnostic laparoscopy : group I(N=43,0%-50%), group II(N=49, 50%-150%) and group III(N=44, 150%-200%). To evaluate the effects of periovarian adhesions on follicular development in controlled ovarian yperstimulation for IVF-ET, serum E2 levels on the day of hCG dministration (Day 0) and the day after hCG administration (Day+1), the number of ovarian follicles with mean diameter${\geqq}$12mm on Day 0, and the number of oocytes retrieved by transvaginal aspiration were measured and compared among groups. There were no significant differences in age of patients, cancellation rate due to inadequate ovarian response, serum E2 levels, the number of ovarian follicles, the number of oocytes retrieved, and oocytes retrieval rate per follicle. In the same patients(N=31) in group II in whom the difference in ovarian availability between two ovaries is more than 50%, there was also no significant difference in the number of ovarian follicles between them. These data suggest that pelvic adhesions including periovarian adhesions have no adverse effects on the ovarian response to gonadotropins stimulation and the outcome of IVF-ET.
Follicular fluid(FF) prostaglandin $E_2$(PG$E_2$) and $PGF_{2{\alpha}}$ levels were compared in 3 groups of spontaneously ovulatory women undergoing ovulation induction with clomiphene citrate (CC) alone or with human menopausal gonadotropin(hMG) (14 patients), hMG(9 patients), or pure FSH/hMG(11 patients) for the purpose of in vitro fertilization. FF volume aspirated did not differ significantly according to the maturity of the oocyte. According to hyperstimulation regimens, the volume of FF from which preovulatory occytes were obtained was significantly less in the hMG-treated group than in the other groups. In follicles of preovulatory oocytes, FF PG$E_2$ values were significantly lower in the FSH treated group than in the Cc.treated or hMG-treated group, and FF $PGF_{2{\alpha}}$ values were significantly higher in the hMG-treated group than in the CC-treated or FSH-treated group. In follicles of immature or atretic oocytes, there was no significant difference in FF PG$E_2$ and PG$F_{2{\alpha}}$ concentrations of the similar morphology of the oocyte according to hyperstimulation regimens. In all cycles, FF PG$E_2$ and PG$F_{2{\alpha}}$ values of preovulatory oocytes were not significantly different from those of immature oocytes, but those of atretic oocytes were relatively lower than those of fertilizable oocytes and it was statistically signifincant in PG$E_2$ values of CC-treated group. In all treatment groups, FF PG$E_2$ and PG$F_{2{\alpha}}$ levels did not show and close relationship with the success of fertilization in vitro and of pregnancy after embryo transfer. Above results suggested that FF PG$E_2$ and PG$F_{2{\alpha}}$ be involved in oocyte maturation and ovulation, but their relationship with the success of in vitro fertilization was not found.
The studies were carried out to investigate the effects of co-culture with cumulus cells and oviduct epithelial cells on the in vitro fertilization and cleavage rate of bovine follicular cocytes and to determine the optimum thawing temperature and equilibration time on in vitro developmental rate of frozen bovine embryos. The ovaries were obtained from slaughtered Korean native cows. The follicular oocytes were cultured in TGM-199 medium containing 10 IU /ml의 PM SG, 10 IU /ml의 hCG, ip g/ml의 $\beta$-estradiol and 10% FCS for 24~48 hrs in incubator with 5% $CO_2$ in air at 38.5$^{\circ}C$. The bovine embryos following dehydration by cryoprotective agents and a various concentration of sucrose were directly plunged into liquld nitrogen and thawed in 3$0^{\circ}C$ water. Survival rate was defined as developmental rate on in vitro culture or FDA-test. The results are sunanarized as followes :1. The in vitro fertilization and in vitro developmental rates of bovine oocytes co-cultured with cumulus cells in TCM499 medium were 75.0~76.8% and 17.3~27.6%, respect-ively. And in-vitro fertilization rates of cumulus-enclosed oocytes(55.4%)were significantly(p<0.05) higher than cumulus-denuded oocytes (23.1%). 2. The in vitro fertilization and in vitro developmental rates of bovine oocytes co-cultured with l$\times$ l04cells /ml, 1 x l06cells /ml, lx l08cells /ml and 1 x l015cells /ml oviduct epithelial cells in TCM-199 medium were 74.5~77.8% and 15.7~21.20 respectively.3. The in-vitro fertilization and in vitro developmental rates of bovine oocytes cocultured in '1CM-199 media containing PMSG, hCG, PMSG+hCG. PMSG+$\beta$-estradiol, hCG+$\beta$-estradiol 0 to 40 hrs after insemination were 74.0~77.4% and l8.9~23.l%, re-spectiv ely.4.The survival rates of bovine embryos thawed after rapid freezing in the freezing medium containing a various concentration of sucrose added 1.5M and 2.OM glycerol,DMSO and propanediol were 23.5~31.4% and 20.6~34.l%, respectively. 5. The temperature thawed at 3$0^{\circ}C$ after rapid freezing of bovine embryos resulted in a significantly higher embryos survival rate than did at 2$0^{\circ}C$ and 35$^{\circ}C$.6. The equilibration time on the survival rates of bovine embryos was attained after short period of time(2.5~5 min.) in the freezing medium higher than long period of time (10~20min.). (Key words : bovine embryos, co-culture, freezing, in vitro development)
The present study was performed to investigate the effects of co-culture with granulosa cells on in vitro fertilization and cleavage of early bovine embryo development. Bovine oocytes were matured for 20-24 hrs in vitro with granulosa cells or without and then fertilized in vitro using frozen-thawed spermatozoa treated with BO-caffeine, BO-BSA(2OmM heparin added). At l8hrs after insemination, oocytes were fixed and examined or further cultured in TCM 199 for 48hrs. The fertilization rates between the control(70.4%) and the groups of co-cultured with granulosa cell(2.5$\times$106 cells/ml; 71.6%, 5.0$\times$ 106/ml; 71.9%, l.0$\times$ 107/ml; 71.1%) did not differ significantly. The cleavage rates in the groups co-cultured with granulosa cell(2.5$\times$ 106 cells/mi; 43.6%, 5.0$\times$ 106/ml; 46.8%. l.0$\times$ 107/ml; 45.0%)were significantly higher than that of without granulosa cell, respectively(P<0.05). However there were no significant differences between the groups co-cultured with granulosa cells. The result indicated that co-culture with granulosa cell was effective means to cleavage of bovine follicular oocytes but did not affect the in vitro fertilization.
Porcine follicular oocytes matured in culture were inseminated with frozen-thawed spermatozoa. When the oocytes were inseminated in the medium with oviductal epithelial cell monolayer, the penetration rates higher in those with (4.1, 31.7, 45.1, 54.5 and 69.4%) than without cells (0, 17.1, 34.8, 45.2 and 58.9%) at 4, 8, 12, 16 and 20 h after insemination. The proportions of polyspermy in penetrated oocytes in medium with or without cells increased with time of examine. In another experiment, the penetration rate was higher without (57.6%) than with (19.6~24.1%) preincubation of spermatozoa for 1~4 h in medium. However, when the oocytes were inseminated with spermatozoa preincubated for 1~2 h, the penetration rates significantly higher (P<0.05) in those with (65.6 and 55.9% for 1 and 2 h) than without (24.1 and 20.6% for 1 and 2 h) oviductal epithelial cell monolayer. On the other hand, the proportions of polyspermy decreased with time of spermatozoa preincubation. These results indicate the significant advantages of the spermatozoa preincubation with oviductal epithelial cell monolayer for 1 and 2 h to maintain penetration potential during in vitro fertilization in the porcine.
Ji, Mi-Ran;Cheong, Hee-Tae;Yang, Boo-Keun;Lee, Chae-Sik;Park, Choon-Keun
Reproductive and Developmental Biology
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v.34
no.3
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pp.217-221
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2010
When fully grown oocytes are removed from their follicles, they can resume meiosis and mature spontaneously under in vitro conditions. However, nuclear maturation under in vitro condition is not accompanied by complete cytoplasmic maturation, which is essential for successful fertilization and the initiation of zygotic development. This study analyzed change of proteins in follicular fluids during the porcine follicular development. Follicular fluids were collected from follicles of diameter 1~2 mm, 2~6 mm and 6~10 mm in ovary of slaughtered pigs. Total proteins were extracted from follicular fluids by M-PER Mammalian Protein Extraction Reagent. We confirmed totally 27 same spots, 1 spot from follicle fluid of 2~6 mm follicle and 5 spots from follicle fluid of 6~10 mm in diameter were analyzed by MALDI mass spectrometry and searched on NCBInr. In results, spot No. 28 from 2~6 mm follicle was Ig lambda chain C region, and spot No.32 and 33 from 6~10 mm was Apolipoprotein A-(APOA4). Spot No.29 and 31 were failed to analyze. These results indicate that the porcine oocyte during in vitro maturation depend on specific different expressed proteins may play an important roles in the sequence of molecular events in porcine oocyte maturation and follicular development.
In the mammalian ovary the follicular fluid contains proteins and peptides which play an important role in growth, development and maturation of oocytes. The gonadotropins and some other factors work synergistically and regulate ovarian functions. In the present study the effect of follicular fluid proteins (FFP) and gonadotropins on progesterone secretion by granulosa cells (GC) from buffalo ovary, was investigated during culture. The follicular fluid was collected from small (<5 mm), and medium (5-8 mm) follicles obtained from buffalo ovaries. The follicular fluid from medium follicles was fractionated with ammonium sulphate at 80% saturation. The precipitated protein fraction was further resolved in to minor (peaks I, III) and major (peak II) proteins using gel filtration (Sephadex G-200). The FFP from small follicles and major FFP (peak II) at a dose of 200 $\mu$g/well, significantly stimulated progesterone secretion by pooled GC (3${\times}10^{5}$ cells/2 ml medium/well). The minor FFP did not show any stimulatory effect. There was a significant increase in progesterone secretion by pooled GC in presence of FFP and LH (10 ng/well), however, FSH (20 ng/well) with FFP exhibited an inhibitory effect. The major FFP and gonadotropins were also studied for their effect on progesterone production by GC isolated from medium and large size follicles. The GC from medium follicles were more responsive to FSH and FFP whereas GC from large follicles exhibited enhanced progesterone secretion with LH and FFP. These results indicated that FFP have their own stimulatory effect and also act synergistically with gonadotropins. The significantly different response shown by GC, for steroid hormone secretion, is based on their stage of growth and differentiation. The purification and characterization of such steroidogenic proteins may help in elucidating their role in growth and differentiation of granulosa cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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