A cDNA clone encoding the ribosomal protein S20 has been isolated from the Schizosaccharomyces pombe cDNA library by colony hybridization. The insert contained in the original plasmid pYJ10 was transferred intro shuttle vector pRS316 generate plasmid pYJll. The dDNA insert of plasmid pYJll, contains 484 nucleotides and encodes a protein of 118 amino acids with a calculated mass of 13,544 daltons. The deduced amino acid sequence of S. pombe ribosomal protein S20 is very homologous with fruit fly, rat, and budding yeast counterparts. It is also homologous with Xenopus S22 ribosomal protein. S. pombe ribosomal protein S20 appears to be relatively hydruphobic except the C-terminal region. The 728 bp upstream region of the S20 gene was amplified from chromosomal DNA and transferred into the BamHI/EcoRI site of the promoterles $\beta$-galactosidase gene of the vector YEp357R, which resulted in fusion plasmid pYS20. The synthesis of $\beta$-galactosidase from the fusion plasmid appeared to be the highest in the mid-exponential phase. The S. pombe cells with the fusion plasmid grown at 35$\^{C}$ gave lower $\beta$-galactosidase activity than the cells grown at 30$\^{C}$. Computer analysis showed the consensus sequence CAGTCACA in the upstream regions of various ribosomal protein genes in S. pombe, which would be involved in the coordinated expression of small ribosomal proteins.
Kim, Hong-Gyum;Lee, Jin-Joo;Park, Eun-Hee;Sa, Jae-Hoon;Ahn, Ki-Sup;Lim, Chang-Jin
BMB Reports
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v.34
no.4
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pp.379-384
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2001
The cDNA encoding ribosomal protein was identified from a cDNA library of Schizosaccharomyces pombe. The nucleotide sequence of the 548 by cDNA clone reveals an open reading frame, which encodes a putative protein of 166 amino acids with a molecular mass of 18.3 kDa. The amino acid sequence of the S. pombe L11 protein is highly homologous with those of rat and fruit, while it is clearly less similar to those of prokaryotic counterparts. The 1,044 by upstream sequence, and the region encoding N-terminal 7 amino acids of the genomic DNA were fused into the promoterless $\beta$-galactosidase gene of the shuttle vector YEp357 in order to generate the fusion plasmid pHY L11. Synthesis of $\beta$-galactosidase from the fusion plasmid varied according to the growth curve. It decreased significantly in the growth-arrested yeast cells that were treated with aluminum chloride and mercuric chloride. However, it was enhanced by treatments with cadmium chloride ($2.5\;{\mu}M$), zinc chloride ($2.5\;{\mu}M$), and hydrogen peroxide (0.5 mM). This indicates that the expression of the L,11 gene could be induced by oxidative stress.
We constructed the null mutants of fission yeast Schizosaccharomyces pombe spDbp5 gene that is homologous to DEAD-box RNA helicase DBP5 in budding yeast Saccharomyces cerevisiae, which plays important roles in mRNA export out of nucleus. A null mutant in an $h^+/h^+$ diploid strain was constructed by replacing the spDbp5-coding region with an $ura4^+$ gene using one-step gene disruption method. Tetrad analysis showed that the spDbp5 is essential for vegetative growth. The haploid spDbp5 null mutants harboring pREP81X-spDbp5 plasmid showed extensive $poly(A)^+$ RNA accumulation in the nucleus and decrease in the cytoplasm after repression of spDbp5 expression. These results suggest that spDbp5 is also involved in mRNA export from the nucleus.
Six unrecorded yeasts, Cryptococcus festucosus 41-3, Cryptococcus heveanensis 56-4, Debaryomyces nepalensis 95-4, Issatchenkia occidentalis 142-1, Dioszegia zsoltii 39-1, and Kwoniella europala 47-2 were screened from 108 yeasts isolated from flowers and fruits in orchards of Yesan-gun, Chungcheongnam-do, Korea. The morphological and cultural characteristics of these unrecorded yeasts were investigated. They had various shapes, including ellipsoidal, globose, and oval, and also had budding mode in vegetable reproduction, except I. occidentalis 142-1 (fission mode). K. europaea 47-2 only formed pseudomycelium. D. zsoliti 39-1 did not grow in yeast extract-malt extract medium, potato dextrose medium, and vitamin-free medium. C. festucosus 41-3 grew well in 5% NaCl-containing yeast extract-peptone-dextrose medium and had a growth pH range of 7.0~10.0. Three unrecorded yeasts Ogataea polymorpha HB45-1, Rhodotonula hinnulla HB62-2, and Cryptococcus rajasthanensis HB80-4 were screened from 51 yeasts isolated from flowers in Hanbat arboretum in Daejeon city, Korea. They were globose in shape and did not form pseudomycelium. In addition, O. polymorpha HB45-1 and C. rajasthanensis HB80-4 had budding mode in vegetable reproduction. All of them grew well in vitamin-free medium and C. rajasthanesis HB80-4 also grew in 50% glucose and 5% NaCl-containing YPD medium.
We constructed the deletion mutants of fission yeast Schizosaccharomyces pombe spNab2 gene that is homologous to poly(A)-binding protein NAB2 in budding yeast Saccharomyces cerevisiae, which plays crucial roles in mRNA 3' end formation and mRNA export from nucleus into the cytoplasm. A null mutant in an $h^+$/ $h^+$ diploid strain was constructed by replacing the spNab2-coding region with an $ura4^+$ gene using one-step gene disruption method. Tetrad analysis showed that the spNab2 is not essential for vegetative growth and mRNA export. However, over-expression of spNab2 cause the severe growth defects and intensive accumulation of poly(A) RNA in the nucleus. Also, the spNab2-GFP fusions were localized mainly in the nucleus. These results suggest that spNab2 is also involved in mRNA export out of the nucleus.
The present study intends to characterize the DNA damage-inducible responses in yeast. The fission yeast, Schizosaccharomyces pombe was used in this study as a model system for higher eukaryotes. To study UV-inducible responses in S. pombe, five UV-inducible cDNA clones were isolated from S. pombe by using subtration hybridization method. To investigate the expression of isolated genes, UVI-155, the cellular levels of the transcripts were determined by Northern blot analysis after UV-irradiation. The transcripts of isolated gene (UVI-155) increased rapidly and reached maximum accumulation after UV-irradiation. Compared to the message levels of control, the levels of maximal increase were approximately 5 fold to UV-irradiation. In order to investigation whether the increase of UVI-l55 trascripts was a specific results of UV-irradiation, UVI-155 transcript levels were examined after treating the cells to mthylmethane sulfonate (MMS). The transcripts of UVI-155 were not induced by treatment of $0.25\%$ MMS. These results implied that the effects of damaging agents are complex and different regulatory pathways exist for the induction of these genes. To characterize the UVI-155 gene, gene deletion experiments were analyzed. The deleted strain was not well grown. This result indicated that the UVI-155 gene is essential for cell viability.
This study was designed to clone the SNF2/SW12 helicase-related genes from the fission yeast Schizosaccha-romyces pombe and thereafter to elucidate the common functions of the proteins in this family. The $hrp^{2+}$gene was cloned by polymerase chain reaction amplification using degenerative primers from conserved SNF2 motifs within the ERCC6 gene, which encodes a protein involved in DNA excision repair. Like other SNF2/SW12 family proteins, the deduced amino acid sequence of Hrp2 contains DNA-dependent ATPase/7 helicase domains as well as the chromodomain and the DNA binding domain. This configuration is similar to that of mCHD1 (mouse chromo-ATPase/helicase-DNA-dinding protein 1), suggesting that Hrp2 is a S. pombe homolog of mCHD1, which is thought to function in altering the chromatin structure to control the gene expression. To characterize the function of Hrp2, 4 Uracil-Hrp2 fusion protein, it was purified near homogeneity by affinity chromatography on $Ni^{2+}$-NTA agarose, DEAE-Sepharose ion exchange arid Sephacryl S-200 gel filtration chromatographies. The purified fusion protein exhibited DNA-dependent ATPase activity, which was stimulated by both double-stranded and single-stranded DNA. To determine the steady-state level of $hrp^{2+}$ transcripts during growth, cells were cultured in medium and collected at every 2hr to prepare total RNAs. The northern blot analysis showed that the level of $hrp^{2+}$ transcripts reached its maximum before the cells entered the exponential growth phase and then decreased gradually, This result implies that Hrp2 may be required at early stages of cell growth.h.
The fission yeast Schizosaccharomyces pombe contains two distinct superoxide dismutase (SOD) activities, one in the cytosol encoded by the $sod2^{+}$ gene and the other in mitochondria. The $sod2^{+}$ gene encoding putative mitochondrial manganese superoxide dismutase (MnSOD) was isolated from the S. pombe genomic library using a PCR fragment as the probe. The nucleotide sequence of the $sod2^{+}$ gene and its flanking region (4051 bp HindIII fragment) was determined. An intron of 123 nt in size was predicted and confirmed by sequencing the cDNA following reverse transcription PCR. The predicted Sod2p consists of 218 amino acid residues with a molecular mass of 24,346 Da. The deduced amino acid sequence showed a high degree of homology with other MnSODs, especially in the metal binding residues at the active site and their relative positions. The transcriptional start site was mapped by primer extension at 231 at upstream from the ATG codon. A putative TATA box(TATAAAA) was located 58 nt upstream from the transcriptional start site and putative polyadenylation sites were located at 1000, 1062, and 1074 nt downstream from the ATG start codon.
Although extensively characterized in human cells, no heterogeneous nuclear ribonucleoprotein(hnRNP) has been found in the fission yeast Schizosaccharomyces pombe which is amenable to genetic studies and more similar to mammals than Saccharomyces cerevisiae is in terms of RNA processing. As a first step to characterize hnRNPs from S. pombe, attempt was made to find human hnRNP A1 homologs from S. pombe. The RNA molecule (A1 winner) containing the consensus high-affinity hnRNP A1 binding site (UAGGGA/U) was synthesized in vitro and used in an ultraviolet(UV) light-induced protein-RNA cross-linking assay. A number of S, pombe proteins bound to the A1 winner RNA. An approximately 50-kDa protein(p50) cross-linked more efficiently to the A1 winner RNA than other proteins. The p50 protein did not cross-link to a nonspecific RNA, but rather to the A1-5’ SS RNA in which the consensus 5’ splice junction sites of S. pombe introns were abolished. This suggests that the p50 protein, however, did not bind to the single-stranded DNA to shich the human hnRNP A1 could bind and be eluted with 0.5M NaCl. Further analysis should reveal more features of this RNA-binding protein.
To screen chaperone proteins from Schizosaccharomyce pombe (S. pombe), we prepared recombinant citrate synthase of the fission yeast as a substrate of anti-aggregation assay. Purified recombinant citrate synthase showed citrate synthase activity and was suitable for the substrate of chaperone assay. Several heat stable proteins including aspartyl aminopeptidase (AAP) for candidates of chaperone were screened from the supernatant fraction of heat-treated crude extract of S. pombe. The purified AAP migrated as a single band of 47 kDa on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The native size of AAP was estimated as 200 kDa by a HPLC gel permeation chromatography. This enzyme can remove the aspartyl residue at N-terminus of angiotensin I. In addition, AAP showed the heat stability and protected the aggregation of citrate synthase caused by thermal denaturation. This study showed that S. pombe AAP is a moonlight protein that has aspartyl aminopeptidase and chaperone activities.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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