Thirty seven species of Fusarium were evaluated for their ability of producing extracellular enzymes using chromogenic medium containing substrates such as starch, cellobiose, CM-cellulose, xylan, and pectin. Among the tested species Fusarium mesoamericanum, F. graminearum, F. asiaticum, and F. acuminatum showed high ${\beta}$-glucosidase acitivity. Xylanase activity was strongly detected in F. proliferatum and F. oxysporum. Strong pectinase activity was also found in F. oxysporum and F. proliferatum. Amylase activity was apparent in F. oxysporum. No clear activity in cellulase was found from all the Fusarium species tested.
To obtain basic information on the biochemical property of basidiospores of shiitake mushroom (Lentinula edodes), the ability of producing extracellular enzyme was assessed using a chromogenic plate-based assay. For the aim, amylase, avicelase, $\beta$-glucosidase, CM-cellulase, pectinase, proteinase, and xylanase were tested against monokaryotic strains generated from forty basidiospores of two different parental dikaryotic strains of shiitake mushroom, Sanjo-101Ho and Sanjo-108Ho. These two parental strains showed different degree of extracellular enzyme activity. No identical patterns of the degree of enzyme activity were observed between monokaryotic strains and parental strains of the two shiitake cultivars. The degree of extracellular enzyme activity also varied among monokaryotic strains of the two shiitake cultivars. Our results showed that dikaryotic parental strains of shiitake mushroom produce monokaryotic basidiospores having very diverse biochemical properties.
A strain YB914 was isolated from soil as a producer of the extracellular xylanase, which catalyzes the hydrolysis of oat spelt xylan. The strain YB914 was identified as Streptomyces sp. on the basis of its morphological, cultural and biochemical properties. The xylanase of culture filtrate was the most active at $55^{\circ}C$ and pH 5.5, and retained 80% of its maximum activity at the range of pH 4.5~7.0. In order to optimize the culture medium for xylanase production, ingredients of G.S.S medium were replaced by several carbohydrates. The carbohydrates such as oat spelt xylan, corn cob xylan, wheat bran and lactose increased the xylanase productivity of Streptomyces sp. YB914. However, xylanase production was greatly repressed by galactose or arabinose. The maximum xylanase productivity was reached to 48 U/mL in the modified medium containing 1% oat spelt xylan and 1.5% lactose.
An extracellular xylanase was purified to homogeneity by sequential chromatography of Fomitopsis pinicola culture supernatants on a DEAE-Sepharose column, a gel filtration column, and then on a MonoQ column with fast protein liquid chromatography. The relative molecular mass of the F. pinicola xylanase was determined to be 58 kDa by sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis and by size-exclusion chromatography, indicating that the enzyme is a monomer. The hydrolytic activity of the xylanase had a pH optimum of 4.5 and a temperature optimum of $70^{\circ}C$. The enzyme showed a $t_{1/2}$ value of 33 h at $70^{\circ}C$ and catalytic efficiency ($k_{cat}=77.4\;s^{-1}$, $k_{cat}/K_m$=22.7 mg/ml/s) for oatspelt xylan. Its internal amino acid sequences showed a significant homology with hydrolases from glycoside hydrolase (GH) family 10, indicating that the F. pinicola xylanase is a member of GH family 10.
A gene coding for a xylanase of thermophilic alkalophilic Bacillus sp. K-17 was cloned in Escherichia coli C600 with pBR322. Plasmid pAXl13 was isolated from a transformant producing xylanase, and the xylanase gene was located in a 4.3 Kb HindIII fragment. Biotinylated pAXl13 hybridized to a 4.3 Kb HindIII fragment from chromosomal DNA of thermophilic alkalophilic Bacillus sp. K-17. The xylanase activity was observed in the extracellular curture fluid of E. coli carrying pAXl13. The pAXl13-encoded xylanase had the same enzymatic properties as those of xylanase I produced by thermophilic alkalophilic Bacillus sp. K-17.
A strain WL-2 was isolated from soil as a producer of the extracellular xylanase, which catalyzes the hydrolysis of oat spelt xylan. The strain WL-2 was identified as Streptomyces sp. on the basis of its 16S rRNA sequence, morphology, cultural and physiological properties. The xylanase of culture filtrate was the most active at $60^{\circ}C$ and pH 6.0, and retained $90{\%}$ of its maximum activity at range of pH $4.5{\~}6.5$. In order to optimize the culture medium for xylanase production, ingredients of G.S.S medium were replaced by several carbohydrates. The carbohydrates such as ${\alpha}-cellulose$, oat spelt xylan and maltose increased dramatically the xylanase productivity of Streptomyces sp. WL-2. The maximum xylanase productivity was reached to 120 U/ml in the modified medium containing $1{\%}\;\alpha-cellulose$ and $1\%}$ maltose.
The marine bacterium isolated from Porphyra dentata showing green spot rot disease was identified as Pseudomonas sp. the strain have CNCase activity, xylanase activity and protease activity as well as agarase activity. But the strain has no pectate lyase activity. Porphyra dentata tissue inoculated this isolate was macerated after 1 week incubation. The characteristics of extracellular crude agarase of this isolate were examined, the optimal pH and temperature were pH7 and 3$0^{\circ}C$, respectively.
Kwon, Hyuk Woo;Kim, Jun Young;Min, Sung Hwan;Choi, Min Ah;Oh, Youn-Lee;Kong, Won-Sik;Kim, Seong Hwan
The Korean Journal of Mycology
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v.42
no.1
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pp.86-90
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2014
Button mushroom (Agaricus bisporus) strains from diverse origins were compared in this study to obtain basic information on their growth and biochemical properties that are helpful for breeding. Among 31 dikaryotic strains tested, most strains showed better mycelial growth on oatmeal agar than on MEA and PDA. Mycelia of the mushroom strains revealed ${\beta}$-glucosidase activity the most clearly among the seven extracellular enzymes tested. All the strains showed protease activity, but ${\beta}$-glucosidase activity was found in 27 strains and xylanase activity was found in 30 strains. The activity of avicelase, CM-cellulase, amylase, and pectinase was detected in less than 20 strains. These results implied that enzymatic characteristics could be used as a criterion of strain selection for breeding study.
The marine microorganism PX-1, which can hydrolyze xylan, was isolated from coastal sea water of Jeju Island, Korea. Based on the 16S rRNA gene sequence and chemotaxonomy analysis, PX-1 was identified as a species of the genus Aestuariibacter and named Aestuariibacter sp PX-1. From the culture broth of PX-1, an extracellular xylanase was purified to homogeneity through ammonium sulfate precipitation and subsequent adsorption chromatography using insoluble xylan. Sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis and gel filtration chromatography estimated the molecular weight of the purified putative xylanase (XylA) as approximately 64 kDa. XylA showed xylanase activity toward beechwood xylan, with a maximum enzymatic activity at pH 6.0 and 45℃. Through thin-layer chromatographic analysis of the xylan hydrolysate produced by XylA, it was confirmed that XylA is an endo-type xylanase that decomposes xylan into xylose and xyloligosaccharides of various lengths. The Km and Vmax values of XylA for beechwood xylan were 27.78 mM and 78.13 μM/min, respectively.
An extracellular xylanase from the brown-rot fungus Fomitopsis palustris grown on rice straw culture was purified to a single protein band. On SDS-PAGE, the molecular mass of purified enzyme was estimated to be about 43 kDa. The amino acid sequence of the proteolytic fragments showed high homology with fungal glycoside hydrolase family 10 xylanases. The $K_m$, $K_{cat}$ and $V_{max}$ for birch xylan were $31mg/m{\ell}$, $2.3{\times}10^4/min$ and 252.3 U/mg, respectively. The optimal activity of the purified xylanase from F palustris was observed at pH 4.0~5.0 and $70^{\circ}C$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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