Encystation is an essential process for Acanthamoeba survival under nutrient-limiting conditions and exposure to drugs. The expression of several genes has been observed to increase or decrease during encystation. Epigenetic processes involved in regulation of gene expression have been shown to play a role in several pathogenic parasites. In the present study, we identified the protein arginine methyltransferase 5 (PRMT5), a known epigenetic regulator, in Acanthamoeba castellanii. PRMT5 of A. castellanii (AcPRMT5) contained domains found in S-adenosylmethionine-dependent methyltransferases and in PRMT5 arginine-N-methyltransferase. Expression levels of AcPRMT5 were increased during encystation of A. castellanii. The EGFP-PRMT5 fusion protein was mainly localized in the nucleus of trophozoites. A. castellanii transfected with siRNA designed against AcPRMT5 failed to form mature cysts. The findings of this study lead to a better understanding of epigenetic mechanisms behind the regulation of encystation in cyst-forming pathogenic protozoa.
Kim, Iljin;Choi, Sanga;Yoo, Seongkyeong;Lee, Mingyu;Park, Jong-Wan
BMB Reports
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v.55
no.6
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pp.287-292
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2022
The acute response to hypoxia is mainly driven by hypoxia-inducible factors, but their effects gradually subside with time. Hypoxia-specific histone modifications may be important for the stable maintenance of long-term adaptation to hypoxia. However, little is known about the molecular mechanisms underlying the dynamic alterations of histones under hypoxic conditions. We found that the phosphorylation of histone H3 at Ser-10 (H3S10) was noticeably attenuated after hypoxic challenge, which was mediated by the inhibition of aurora kinase B (AURKB). To understand the role of AURKB in epigenetic regulation, DNA microarray and transcription factor binding site analyses combined with proteomics analysis were performed. Under normoxia, phosphorylated AURKB, in concert with the repressor element-1 silencing transcription factor (REST), phosphorylates H3S10, which allows the AURKB-REST complex to access the MDM2 proto-oncogene. REST then acts as a transcriptional repressor of MDM2 and downregulates its expression. Under hypoxia, AURKB is dephosphorylated and the AURKB-REST complex fails to access MDM2, leading to the upregulation of its expression. In this study, we present a case of hypoxia-specific epigenetic regulation of the oxygen-sensitive AURKB signaling pathway. To better understand the cellular adaptation to hypoxia, it is worthwhile to further investigate the epigenetic regulation of genes under hypoxic conditions.
Tumor suppressor genes (TSGs) play a crucial role in maintaining cellular homeostasis. When the function of these genes is lost, it can lead to cellular plasticity that drives the development of various cancers, including small-cell lung cancer (SCLC), which is known for its aggressive nature. SCLC is primarily driven by numerous loss-of-function mutations in TSGs, often involving genes that encode epigenetic regulators. These mutations pose a significant therapeutic challenge as they are not directly targetable. However, understanding the molecular changes resulting from these mutations might provide insights for developing tumor intervention strategies. We propose that despite the heterogeneous genomic landscape of SCLC, the effects of mutations in patient tumors converge on a few critical pathways that drive malignancy. Specifically, alterations in epigenetic regulators lead to transcriptional dysregulation, pushing mutant cells toward a highly plastic state that makes them immune evasive and highly metastatic. This review will highlight studies showing how an imbalance of epigenetic regulators with opposing functions leads to the loss of immune recognition markers, effectively hiding tumor cells from the immune system. Additionally, we will discuss the role of epigenetic regulators in maintaining neuroendocrine features and how aberrant transcriptional control promotes epithelial-to-mesenchymal transition during tumor development. Although these pathways seem distinct, we emphasize that they often share common molecular drivers and mediators. Understanding the connection among frequently altered epigenetic regulators will provide valuable insights into the molecular mechanisms underlying SCLC development, potentially revealing preventive and therapeutic vulnerabilities for SCLC and other cancers with similar mutations.
Hox proteins containing DNA-binding homedomain act as transcription factors important for anteroposterior body patterning during vertebrate embryogenesis. However, the precise mechanisms by which signal pathways are transduced to regulate the Hox gene expression are not clear. In the course of an attempt to isolate an upstream regulatory factor(s) controlling Hox genes, protein kinase B alpha (Akt1) has been identified as a putative regulator of Hox genes through in silico analysis (GEO profile). In the Gene Expression Omnibus (GEO) dataset GDS1784 at the NCBI (National Center for Biotechnology Information) site, Hox genes were differentially expressed depending on the presence or absence of Akt1. Since it was not well known how Akt1 regulates the specific Hox genes, whose transcription was reported to be regulated by epigenetic modifications such as histone acetylation, methylation etc., the expression of Gcn5, a histone acetyltransferase (HAT), was analyzed in wild type (WT) as well as in $Akt1^{-/-}$ mouse embryonic fibroblast (MEF) cells. RT-PCR analysis revealed that the amount of Gcn5 mRNA was similar in both WT and $Akt1^{-/-}$ MEFs. However, the protein level of Gcn5 was significantly increased in $Akt1^{-/-}$ MEF cells. The half life of Gcn5 was 1 hour in wild type whereas 8 hours in $Akt1^{-/-}$ MEF. These data all together, indicate that Gcn5 is post-transcriptionally down-regulated and the protein stability is negatively regulated by Akt1 in MEF cells.
S6K1 is a key regulator of cell growth, cell size, and metabolism. Although the role of cytosolic S6K1 in cellular processes is well established, the function of S6K1 in the nucleus remains poorly understood. Our recent study has revealed that S6K1 is translocated into the nucleus upon adipogenic stimulus where it directly binds to and phosphorylates H2B at serine 36. Such phosphorylation promotes EZH2 recruitment and subsequent histone H3K27 trimethylation on the promoter of its target genes including Wnt6, Wnt10a, and Wnt10b, leading to repression of their expression. S6K1-mediated suppression of Wnt genes facilitates adipogenic differentiation through the expression of adipogenic transcription factors PPARγ and Cebpa. White adipose tissues from S6K1-deficient mice consistently exhibit marked reduction in H2BS36 phosphorylation (H2BS36p) and H3K27 trimethylation (H3K27me3), leading to enhanced expression of Wnt genes. In addition, expression levels of H2BS36p and H3K27me3 are highly elevated in white adipose tissues from mice fed on high-fat diet or from obese humans. These findings describe a novel role of S6K1 as a transcriptional regulator controlling an epigenetic network initiated by phosphorylation of H2B and trimethylation of H3, thus shutting off Wnt gene expression in early adipogenesis.
Objective: Altered regulation of many transcription factors has been shown to play important roles in the development of leukemia. hMSH2 can modulate the activity of some important transcription factors and is known to be a regulator of hematopoietic differentiation. Herein, we investigated epigenetic regulation of hMSH2 and its influence on cell growth and overall survival of acute lymphoblastic leukemia (ALL) patients. Methods: hMSH2 promoter methylation status was assessed by COBRA and pyrosequencing in 60 ALL patients and 30 healthy volunteers. mRNA and protein expression levels of hMSH2, PCNA, CyclinD1, Bcl-2 and Bax were determined by real time PCR and Western blotting, respectively. The influence of hMSH2 on cell proliferation and survival was assessed in transient and stable expression systems. Results: mRNA and protein expression of hMSH2 and Bcl-2 was decreased, and that of PCNA, CyclinD1 and Bax was increased in ALL patients as compared to healthy volunteers (P<0.05). hMSH2 was inactivated in ALL patients through promoter hypermethylation. Furthermore, hMSH2 hypermethylation was found in relapsed ALL patients (85.7% of all cases). The median survival of patients with hMSH2 methylation was shorter than that of patients without hMSH2 methylation (log-rank test, P=0.0035). Over-expression of hMSH2 in cell lines resulted in a significant reduction in growth and induction of apoptosis. Conclusions: This study suggests that aberrant DNA methylation and epigenetic inactivation of hMSH2 play an important role in the development of ALL through altering cell growth and survival.
Epigenetic processes in the development of skeletal muscle have been appreciated for over a decade. DNA methylation is a major epigenetic modification important for regulating gene expression and suppressing spurious transcription. Up to now, the importance of epigenetic marks in the regulation of Pax7 and myogenic regulatory factors (MRFs) expression is far less explored. In the present study, semi-quantitative the real-time polymerase chain reaction (RT-PCR) analyses showed MyoD and Myf5 were expressed in activated and quiescent C2C12 cells. MyoG was expressed in a later stage of myogenesis. Pax7 was weakly expressed in differentiated C2C12 cells. To further understand the regulation of expression of these genes, the DNA methylation status of Pax7, MyoD, and Myf5 was determined by bisulfite sequencing PCR. During the C2C12 myoblasts fusion process, the changes of promoter and exon 1 methylation of Pax7, MyoD, and Myf5 genes were observed. In addition, an inverse relationship of low methylation and high expression was found. These results suggest that DNA methylation may be an important mechanism regulating Pax7 and MRFs transcription in cell myogenic differentiation.
Induced pluripotent stem cells (iPSCs) show great promise for replacing current stem cell therapies in the field of regenerative medicine. However, the original method for cellular reprogramming, involving four exogenous transcription factors, is characterized by low efficiency. Here, we focused on using epigenetic modifications to enhance the reprogramming efficiency. We hypothesized that there would be a new reprogramming factor involved in DNA demethylation, acting on the promoters of pluripotency-related genes. We screened proteins that bind to the methylated promoter of Oct4 and identified Zinc finger protein 127 (Zfp127), the functions of which have not yet been identified. We found that Zfp127 binds to the Oct4 promoter. Overexpression of Zfp127 in fibroblasts induced demethylation of the Oct4 promoter, thus enhancing Oct4 promoter activity and gene expression. These results demonstrate that Zfp127 is a novel regulator of Oct4, and may become a potent target to improve cellular reprogramming.
ARF is an alternative reading frame product of the INK4a/ARF locus, inactivated in numerous human cancers. ARF is a key regulator of cellular senescence, an irreversible cell growth arrest that suppresses tumor cell growth. It functions by sequestering MDM2 (a p53 E3 ligase) in the nucleolus, thus activating p53. Besides MDM2, ARF has numerous other interacting partners that induce either cellular senescence or apoptosis in a p53-independent manner. This further complicates the dynamics of the ARF network. Expression of ARF is frequently disrupted in human cancers, mainly due to epigenetic and transcriptional regulation. Vigorous studies on various transcription factors that either positively or negatively regulate ARF transcription have been carried out. However, recent focus on posttranslational modifications, particularly ubiquitination, indicates wider dynamic controls of ARF than previously known. In this review, we discuss the role and dynamic regulation of ARF in senescence and cancer.
The clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR) system, a rapidly advancing genome editing technology, allows DNA alterations into the genome of organisms. Gene editing using the CRISPR system enables more precise and diverse editing, such as single nucleotide conversion, precise knock-in of target sequences or genes, chromosomal rearrangement, or gene disruption by simple cutting. Moreover, CRISPR systems comprising transcriptional activators/repressors can be used for epigenetic regulation without DNA damage. Stem cell DNA engineering based on gene editing tools has enormous potential to provide clues regarding the pathogenesis of diseases and to study the mechanisms and treatments of incurable diseases. Here, we review the latest trends in stem cell research using various CRISPR/Cas technologies and discuss their future prospects in treating various diseases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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